Un metodo avanzato di immunoprecipitazione reticolante per l'identificazione efficiente dell'RNA legato alle proteine nei testicoli di topo

0 views • 5:07 min • July 8th, 2025

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Prendi un testicolo di topo appena raccolto in un tampone refrigerato. Rimuovere la tunica albuginea, lo strato di tessuto fibroso.

Triturare il testicolo per rilasciare tubuli seminiferi contenenti cellule germinali e di Sertoli.

Aggiungere tampone e sottoporre i tubuli a radiazioni UV per la reticolazione irreversibile dell'RNA con le proteine associate, preservando le interazioni.

Centrifugare ed eliminare il surnatante.

Risospendere i tubuli in un tampone di lisi contenente inibitori della RNasi e della proteasi.

Sonicare il tessuto, rilasciando complessi proteina-RNA e altri componenti intracellulari. Gli inibitori della RNasi e della proteasi inattivano le RNasi e le proteasi endogene.

Aggiungere DNasi per degradare il DNA. Introdurre RNasi diluita per la digestione parziale dell'RNA.

Centrifugare e trasferire il surnatante contenente complessi RNA-proteina in una soluzione di biglie magnetiche rivestita di anticorpo con elevata specificità per la proteina legante l'RNA bersaglio.

Applicare un campo magnetico per separare i complessi proteina-RNA legati alle perline. Scartare il surnatante.

Lavare con tampone. Separare magneticamente i complessi proteina-RNA e utilizzarli per ulteriori analisi dell'interazione RNA-proteina.

Per iniziare questa procedura, raccogliere circa 100 milligrammi di testicoli da topi di età appropriata per ogni esperimento di immunoprecipitazione. Metti i fazzoletti in PBS ghiacciato. Usando un paio di pinzette a punta fine, rimuovi delicatamente la tunica albuginea. Aggiungi 3 millilitri di PBS ghiacciato a un macina fazzoletti e usa un pestello di vetro sciolto per triturare il tessuto con una leggera forza meccanica. Quindi, trasferire la sospensione tissutale in una piastra di coltura cellulare e aggiungere PBS ghiacciato fino a 6 millilitri. Agitare rapidamente il piatto in modo che il liquido copra uniformemente il fondo del piatto.

Reticolare la sospensione sul ghiaccio tre volte con 400 millijoule per centimetro quadrato a 254 nanometri. Assicurati di mescolare la sospensione tra ogni irradiazione, quindi raccogli la sospensione in un tubo conico da 15 millilitri e centrifuga a 1.200 volte g e a 4 gradi per 5 minuti. Rimuovere il surnatante e risospendere il pellet in 1 millilitro di PBS. Successivamente, trasferire la sospensione in una provetta da centrifuga da 1,5 millilitri. Centrifugare a 1.000 volte g e a 4 gradi Celsius per due minuti e scartare il surnatante.

Per prima cosa, aggiungere 125 microlitri di microsfere magnetiche di proteina A per campione a una provetta da centrifuga fresca. Posizionare il tubo sul magnete per separare le perle dalla soluzione. Dopo 10 secondi, rimuovere il surnatante e lavare le perle due volte con 1 millilitro di tampone di lisi ghiacciato. Risospendere le perle in 100 microlitri di tampone di lisi fredda con 10 microgrammi di anticorpo eCLIP. Ruotare le provette a temperatura ambiente per 45 minuti, quindi lavare le perle due volte con 1 millilitro di tampone di lisi ghiacciato.

Per iniziare, risospendere i pellet di tessuto in 1 millilitro di tampone di lisi fredda contenente 22 microlitri di cocktail di inibitori proteici privi di EDTA 50X e 11 microlitri di inibitore dell'RNAsi. Continuare a lisare i campioni su ghiaccio per 15 minuti. Sonicate ogni campione è descritto nel protocollo di testo. Quindi, aggiungi 4 microlitri di DNAsi a ciascuna provetta e mescola bene. Incubare a 37 gradi Celsius per 10 minuti agitando a 1.200 giri/min. Successivamente, aggiungere 10 microlitri di RNAsi diluita e mescolare bene. Incubare a 37 gradi Celsius per 5 minuti agitando a 1.200 giri/min.

Quindi, centrifugare a 15.000 volte g e a 4 gradi Celsius per 20 minuti per eliminare il lisato. Raccogliere con cura il surnatante. Per prima cosa, aggiungere 1 millilitro di lisato alle perle preparate e ruotare i campioni a 4 gradi Celsius per due ore o durante la notte. Dopodiché, raccogli le perline con il supporto magnetico e getta il surnatante. Lavare le perle due volte con 900 microlitri di tampone ad alto contenuto di sale, quindi lavare le perle due volte con 900 microlitri di tampone di lavaggio.

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Last updated: 18 July 2026