Utilizzo di doppi strati lipidici supportati da perline per studiare l'output sinaptico dalle cellule T

0 visualizzazioni3:49 min • July 8th, 2025

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Prendiamo i doppi strati lipidici supportati da perline, o BSLB, perle di silice rivestite con doppi strati lipidici coniugati con complessi peptidi-MHC antigenici, molecole di adesione e co-stimolatorie, che agiscono come cellule sintetiche presentanti l'antigene.

Incubare con cellule T.

I TCR si legano ai peptidi antigenici sui BSLB che, insieme ai segnali co-stimolatori, formano una sinapsi immunitaria, attivando le cellule T.

Questo legame innesca cascate di segnalazione intracellulare, inducendo il riarrangiamento dell'actina e formando microcluster nella sinapsi contenenti molecole di adesione e di segnalazione.

Le cellule T rilasciano vescicole transsinaptiche arricchite in TCR, molecole co-stimolatorie e contenuto di granuli litici nella sinapsi, legandosi ai BSLB.

Raffreddare gradualmente la co-coltura per separare i BSLB dalle cellule T.

Centrifugare ed eliminare il surnatante. Utilizzare un tampone contenente proteine per bloccare i siti di legame liberi sulle superfici.

Centrifugare e trattare BSLB e cellule T con anticorpi coniugati con fluorofori che si legano a specifiche molecole di segnalazione e co-stimolatorie.

Utilizzando la citometria a flusso, analizza i segnali di fluorescenza provenienti da BSLB e cellule T per quantificare l'output sinaptico.

Risospendere 500.000 BSLB per pozzetto in 200 microlitri di tampone HBS/HSA. Trasferire 100 microlitri di BSLB per pozzetto in una nuova piastra da 96 pozzetti con fondo a U per creare un duplicato, in modo tale che la quantità finale di BSLB per pozzetto sia di 250.000. Far girare i BSLB a 300 volte g per due minuti a temperatura ambiente. Scartare il surnatante, quindi risospendere i BSLB utilizzando 100 microlitri di sospensione di cellule T. Mescolare delicatamente per evitare la formazione di bolle. Incubare le co-colture per 90 minuti a 37 gradi Celsius.

Proteggere le cellule dalla luce e raffreddare le co-colture incubandole prima a temperatura ambiente per un minimo di 15 minuti. Centrifugare le co-colture a temperatura ambiente per 5 minuti a 500 volte g. Scartare il surnatante e risospendere le co-colture in BSA-PBS al 2% privo di ioni di calcio e magnesio a temperatura ambiente per il blocco. Metti le celle sul ghiaccio per 45 minuti e proteggile dalla luce.

Preparare la master mix di anticorpi utilizzando il 2% BSA e PBS ghiacciati con filtro a 0,22 micrometri come tampone di colorazione. Questo master mix fornirà un blocco extra. Centrifugare le co-colture a 500 volte g per 5 minuti e 4 gradi Celsius. Scartare i surnatanti, quindi utilizzare una pipetta multicanale per risospendere le cellule nella miscela master in piedi contenente concentrazioni di anticorpi ottimizzate.

Includere cellule marcate con isotipo e BSLB, BSLB fluorescenti e non fluorescenti e cellule e BSLB colorati da soli. Miscelare delicatamente pipettando su e giù metà del volume. Incubare per 30 minuti sul ghiaccio e proteggerli dalla luce. Lavare le celle e i BSLB due volte utilizzando BSA-PBS al 2% ghiacciato Centrifugarli a 500 volte g per 5 minuti a 4 gradi Celsius. Dopo la centrifugazione, controllare le co-colture sedimentate sul fondo dei pozzetti. Quindi, risospendere le co-colture lavate in 100 microlitri di PBS e acquistare immediatamente.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026