Un test per studiare l'impatto della rigidità della matrice extracellulare sull'infezione batterica

0 visualizzazioni4:10 min • July 8th, 2025

Prendi pozzetti contenenti idrogel di poliacrilammide di rigidità variabile ricoperti di collagene, che imitano una matrice extracellulare fisiologica o ECM.

Aggiungi cellule endoteliali microvascolari che formano aderenze focali, o FA - complessi che mediano il legame cellula-ECM - per rilevare la rigidità dell'idrogel.

Gli idrogel più rigidi aumentano l'espressione della vimentina, un componente del citoscheletro, sulla superficie cellulare, rispetto agli idrogel più morbidi.

Aggiungere il batterio Listeria monocytogenes, ingegnerizzato per esprimere una proteina fluorescente sotto il promotore della proteina che induce l'assemblaggio dell'actina, o ActA.

Centrifugare per sincronizzare il contatto batterico con le cellule ospiti e incubare.

I batteri si legano alla vimentina. Una maggiore presenza di vimentina sulle cellule ospiti più rigide legate all'idrogel porta a una maggiore aderenza batterica ed endocitosi.

Aggiungere un antibiotico, eliminando i batteri non internalizzati.

I batteri internalizzati secernono tossine, rompendo la membrana dell'endosoma. La fuga citoplasmatica attiva il promotore ActA per esprimere la proteina fluorescente, marcando i batteri intracellulari.

Staccare enzimaticamente le cellule. Utilizzando la citometria a flusso, rileva una maggiore fluorescenza nelle cellule ospiti che risiedono su idrogel più rigidi, indicando una maggiore internalizzazione batterica.

Dopo aver preparato una coltura notturna di L. monocytogenes secondo il protocollo di testo, trasferire 1 millilitro di coltura in una provetta da microcentrifuga e centrifugarla a 2.000 volte g e temperatura ambiente per 4 minuti. Dopo aver utilizzato il PBS per coltura tissutale per lavare due volte il pellet, utilizzare 1 millilitro di PBS per risospendere il pellet.

Preparare la miscela di infezione combinando 10 o 50 microlitri di sospensione batterica con 1 millilitro di terreno pieno MCDB-131 per una molteplicità di infezioni, o MOI, di circa 50 batteri per cellula ospite o 10 batteri per cellula ospite. Rimuovere il terreno dai pozzetti delle piastre a 24 pozzetti, facendo attenzione a non distruggere gli idrogel o le cellule. Utilizzare 1 millilitro di terreno pieno MCDB-131 per lavare le cellule una volta, quindi aggiungere 1 millilitro di batteri a ciascun pozzetto.

Metti il coperchio sui piatti e avvolgili con pellicola per alimenti in polietilene per evitare perdite. Centrifugare le piastre a 2.000 volte g per 10 minuti per sincronizzare l'invasione. Quindi, incubare le colture a 37 gradi Celsius per 30 minuti. Con il terreno pieno MCDB-131, lavare i campioni 4 volte e rimetterli nell'incubatore per colture tissutali. Dopo altri 30 minuti, sostituire il terreno con MCDB-131 full medium integrato con 20 microgrammi per millilitro di gentamicina.

Per eseguire la citometria a flusso otto ore dopo l'infezione, rimuovere il terreno dai pozzetti della piastra a 24 pozzetti e utilizzare la coltura tissutale PBS per lavare i pozzetti una volta. Dopo la rimozione del PBS, aggiungere 200 microlitri di miscela tripsina-EDTA-collagenasi in ciascun pozzetto. Posizionare la piastra nell'incubatore per colture tissutali per 10 minuti per consentire il completo distacco delle cellule.

Dopo aver pipettato delicatamente ogni pozzetto otto volte, aggiungere 200 microlitri di terreno pieno per neutralizzare la tripsina. Trasferire i 400 microlitri di soluzione cellulare da ciascun pozzetto in una provetta di polistirene da 5 millilitri con un tappo filtrante da 35 micrometri. Analizzare i campioni mediante citometria a flusso.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026