Un saggio di microdiluizione in vitro del brodo per lo screening di composti antifungini

0 visualizzazioni3:48 min • July 8th, 2025

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Prendi una piastra per microtitolazione e aggiungi diluizioni seriali di nuovi peptidi antimicrobici o AMP, i composti in esame.

Designare un sottoinsieme di pozzetti come controlli della crescita e aggiungere acqua sterile senza gli AMP.

Aggiungere un fungo patogeno sospeso in terreni di crescita in pozzetti selezionati.

Aggiungere solo il terreno, privo del fungo, in un sottoinsieme di pozzetti designati come controlli in bianco.

Sigillare la piastra e incubare in condizioni umide che favoriscano la crescita dei funghi.

Dopo l'incubazione, osservare i pozzetti al microscopio.

I controlli della crescita appaiono torbidi a causa della crescita fungina in assenza di AMP. La torbidità in tutte le diluizioni di un AMP indica la sua inefficacia contro il fungo.

I controlli in bianco, privi di crescita fungina, appaiono chiari. Confrontare i pozzetti del test con i controlli in bianco per confermare l'assenza di crescita, indicando l'attività antifungina degli AMP.

La concentrazione più bassa di un AMP che inibisce la crescita fungina è definita concentrazione inibitoria minima, o MIC.

Il test antimicotico viene eseguito in triplicato in micropiastre di polistirene a 96 pozzetti utilizzando una diluizione seriale di 2 volte di ciascun peptide e antimicotico di controllo e un volume finale di 50 microlitri per pozzetto.

Il passaggio più cruciale del protocollo sono le diluizioni seriali. Quindi fai molta attenzione durante i prossimi passaggi per evitare qualsiasi errore che comprometterà l'intera analisi.

Utilizzando una pipetta, aggiungere 100 microlitri di peptide antimicotico alla concentrazione doppia della concentrazione finale desiderata più alta nelle colonne da uno a tre della riga A. Utilizzando una pipetta multicanale, aggiungere 50 microlitri di acqua sterile agli altri pozzetti nelle file da B a H. Rimuovere 50 microlitri dei pozzetti con la concentrazione più alta, Trasferire nei pozzetti corrispondenti della concentrazione successiva e omogeneizzare pipettando su e giù più volte.

Ripetere la diluizione seriale fino a raggiungere i pozzetti con la concentrazione più bassa e scartare 50 microlitri da questi pozzetti. Lasciare le colonne 11 e 12 delle righe A, B e C con solo acqua per i controlli in bianco o per i controlli di crescita negativi. Aggiungere 50 microlitri di inoculo a doppia forza aggiustata in RPMI1640 terreno a ciascun pozzetto delle colonne da 1 a 3 più la colonna 11.

La concentrazione finale per C. albicans sarà di 2.000 cellule per millilitro e la concentrazione finale per C. neoformans sarà di 10.000 cellule per millilitro. Preparare controlli di crescita negativi mescolando 50 microlitri di acqua e 50 microlitri di inoculo aggiustato senza l'antimicotico. Preparare i controlli in bianco combinando 50 microlitri di acqua e 50 microlitri di terreno senza celle.

Caricare i comandi negli appositi pozzetti. Osservare tutti i pozzetti utilizzando un microscopio ottico invertito e quindi incubare le piastre a 37 gradi con agitazione a 200 giri/min. Dopo il periodo di incubazione, osservare nuovamente tutti i pozzetti per verificare i cambiamenti nella morfologia e per verificare la presenza di segni di contaminazione.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026