$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Inizia con una piastra a più pozzetti contenente macrofagi murini aderenti o cellule immunitarie fagocitiche.
Introdurre una sospensione cellulare fungina di Cryptococcus, interagendo con i recettori dei macrofagi e internalizzando tramite fagocitosi.
Il fagosoma si fonde con il lisosoma, formando un fagolisosoma. L'ambiente acido del fagolisosoma favorisce la sopravvivenza e la moltiplicazione dei funghi.
Introdurre un'alta concentrazione di primachina, un fotosensibilizzante, nei pozzetti di prova, mentre il controllo manca del fotosensibilizzante. Incubare per facilitare l'assorbimento della primachina da parte dei macrofagi.
Esporre la lastra alla luce ultravioletta per il trattamento fotodinamico o PDT.
Nel pozzetto del test, la primachina forma cationi radicali che interagiscono con l'ossigeno molecolare, producendo specie reattive dell'ossigeno, o ROS.
I ROS inducono la morte fungina, mentre gli enzimi antiossidanti dei macrofagi neutralizzano i ROS, prevenendo il danno cellulare.
Permeabilizzare i macrofagi, rilasciando le cellule fungine.
Distribuire il contenuto cellulare diluito su piastre di agar selettive, ottenendo colonie fungine distinte.
Un minor numero di colonie sulla piastra di prova rispetto al controllo indica la maggiore efficienza fagocitaria dei macrofagi grazie al trattamento fotodinamico con primachina.
Iniziare con una sospensione di una linea cellulare di macrofagi murini in terreno RPMI 1640 completo come menzionato nel protocollo di testo. Erogare 100 microlitri di questa sospensione cellulare nei pozzetti di una piastra di coltura sterile a fondo piatto a 96 pozzetti. Incubare la piastra per una notte in un'incubatrice.
Il giorno successivo, rimuovere la piastra dall'incubatrice. Sostituire il terreno esaurito con 100 microlitri di terreno RPMI-1640 fresco. Quindi, erogare 100 microlitri di sospensione di cellule criptococciche nella piastra di coltura contenente i macrofagi seminati.
Per studiare l'effetto fotodinamico, preparare le concentrazioni di lavoro desiderate del fotosensibilizzatore. Aggiungere 100 microlitri di soluzione di lavoro alla piastra pre-seminata con macrofagi e cellule criptococciche.
Incubare la piastra al buio affinché le cellule reagiscano con il farmaco. Dopo l'incubazione, esporre le piastre alla luce UV per due minuti.
Dopo aver iniziato il trattamento fotodinamico, incubare le piastre di coltura per 18 ore. Dopo l'incubazione, rimuovere il surnatante e lavare le cellule con 200 microlitri di soluzione tampone fosfato.
Aggiungere 300 microlitri di Triton X-100 allo 0,1% ai pozzetti e incubare a temperatura ambiente per 10 minuti.
Aspirare il contenuto di ciascun pozzetto ed erogarlo in singole provette di plastica sterili da 1,5 millilitri. Diluire le cellule 10 volte con acqua distillata e pipettare 50 microlitri di diluizione su piastre di agar individuali con estratto di lievito ed erto.
Utilizzare un metodo di piastra di diffusione per creare un prato confluente di celle sulla superficie della piastra di agar. Incubare le piastre per 48 ore. Contare le unità formanti colonie sulle piastre di agar.