Un test in vitro per la valutazione della citotossicità delle cellule natural killer contro le cellule tumorali

0 visualizzazioni2:55 min • July 8th, 2025

Prendi una piastra multipozzetto contenente cellule natural killer, o NK, e cellule tumorali. I pozzetti di controllo contengono solo cellule tumorali.

Centrifuga per facilitare il contatto cellulare.

incubare. I recettori attivanti sulle cellule NK si legano ai ligandi di superficie delle cellule tumorali, innescando le cellule NK a rilasciare granuli contenenti molecole citotossiche.

Queste molecole creano i pori della membrana delle cellule tumorali e inducono l'apoptosi rilasciando contenuti intracellulari, tra cui la lattato deidrogenasi o LDH.

Aggiungere un detergente per lisare le cellule tumorali nei pozzetti di controllo per il massimo rilascio di LDH.

Centrifugare e trasferire una parte dei surnatanti contenenti LDH in una piastra di analisi.

Aggiungere il reagente del test e incubare.

LDH converte il lattato in piruvato riducendo il NAD+. La diaforasi utilizza il NADH per ridurre il sale di tetrazolio, formando un prodotto formazanico di colore rosso.

Aggiungere una soluzione acida per fermare la reazione enzimatica.

Utilizzare un lettore di micropiastre per misurare l'assorbanza della formazan nei pozzetti.

L'intensità del formazan è proporzionale al numero di cellule tumorali lisate nel pozzetto del test, indicando la citotossicità delle cellule NK contro le cellule tumorali.

Innanzitutto, ottenere una piastra a 96 pozzetti trattata con coltura a fondo tondo e impostarla come descritto nella tabella 1 del protocollo di testo. Centrifugare la piastra del saggio a 250 volte g per 4 minuti per assicurarsi che l'effettore e le cellule bersaglio siano in contatto. Quindi, incubare la piastra in una camera umidificata a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica per 5 ore.

45 minuti prima della raccolta dei surnatanti, aggiungere 10 microlitri di soluzione di lisi 10x ai pozzetti di massimo rilascio di LDH della cellula bersaglio e rimettere la piastra nella camera umidificata. Al termine dell'incubazione, centrifugare la piastra a 250 volte g per 4 minuti. Quindi, utilizzare un pipettatore multicanale per trasferire aliquote da 50 microlitri da ogni pozzetto a una piastra di analisi a fondo piatto da 96 pozzetti.

Aggiungere 50 microlitri di reagente per il test a ciascun pozzetto della piastra del test. Coprire la piastra con un foglio per proteggerla dalla luce e incubare a temperatura ambiente per 30 minuti. Successivamente, aggiungere 50 microlitri di soluzione di arresto in ciascun pozzetto. Assicurarsi di leggere la piastra entro 1 ora dall'aggiunta della soluzione di arresto e registrare l'assorbanza a 490 nanometri.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026