Generazione e differenziazione di neurosfere primarie da cellule staminali neurali di pesce zebra

0 visualizzazioni3:43 min • July 8th, 2025

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Iniziare con una piastra multipozzetto contenente un terreno di coltura arricchito con fattori di crescita.

Seminare una sospensione unicellulare di cellule staminali neurali di pesce zebra e incubare.

Inizialmente, le cellule staminali utilizzano i fattori di crescita e proliferano.

Rimuovere i detriti e aggiungere il terreno fresco per promuovere la proliferazione cellulare continua e l'aggregazione spontanea per formare neurosfere primarie fluttuanti.

Quindi, trasferisci le neurosfere in un pozzetto fresco contenente il terreno di coltura.

Incubare nelle stesse condizioni per indurre una progressiva espansione delle neurosfere.

Pipettare ripetutamente per dissociare meccanicamente le neurosfere in piccoli cluster.

Successivamente, trasferirli su una matrice extracellulare ben rivestita, facilitandone l'adesione.

Sostituire il terreno di coltura con un terreno di differenziazione privo di fattore di crescita contenente insulina.

L'assenza di fattori di crescita e la presenza di insulina stimolano la differenziazione cellulare in cellule gliali e neuroni con proiezioni neuronali.

Per prepararsi alla generazione della neurosfera, riempire ogni pozzetto di una piastra a 24 pozzetti con 300 microlitri di terreno fresco in condizioni Z. Quindi, aggiungere 200 microlitri di sospensione cellulare a ciascun pozzetto, seminandoli a una densità di circa 500 cellule per microlitro. Successivamente, incubare la piastra a 30 gradi Celsius in anidride carbonica al 5%.

Dopo un giorno di coltura, osserva le cellule nella piastra a 24 pozzetti al microscopio. Aspettatevi di osservare sospensioni a cellula singola in questa fase. Se si nota che dei detriti si sono accumulati al centro di un pozzo, rimuoverli pipettando circa 100 microlitri di terreno e sostituire questo liquido con l'aggiunta di 100 microlitri di terreno fresco in condizioni Z. Una volta rimossi tutti i detriti, incubare la piastra nelle condizioni descritte in precedenza.

Dopo un ulteriore giorno di coltura, trasferire 250 microlitri di sospensione cellulare da un singolo pozzetto in un nuovo pozzetto vuoto. Ripetere questo passaggio per tutti i 24 pozzetti. Quindi, aggiungere 250 microlitri di terreno fresco in condizione Z a ciascun pozzetto e omogeneizzare le sospensioni pipettando delicatamente su e giù. Incubare nuovamente le piastre nelle stesse condizioni e ripetere questa procedura di espansione dopo un ulteriore giorno di coltura. Aspettatevi di osservare un progressivo aumento delle dimensioni delle neurosfere il terzo e il quarto giorno di questo periodo.

Per iniziare il passaggio, dopo quattro giorni, rimuovere 250 microlitri di terreno, ma senza neurosfere, da ogni pozzetto. Quindi utilizzare una pipetta da 1 millilitro per dissociare meccanicamente le neurosfere nel volume del mezzo rimanente. Procedere a raggruppare la sospensione cellulare da ciascun pozzetto dissociato. Quindi, contare le cellule con un emocitometro e distribuire 250 microlitri di surnatante di coltura primaria contenente 800 cellule per microlitro in ciascun pozzetto di una nuova piastra a 24 pozzetti. Continuare aggiungendo 250 microlitri di terreno di condizione Z a ciascun pozzetto e quindi incubare la piastra come descritto in precedenza.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026