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Prendiamo le cellule staminali pluripotenti indotte dall'uomo trasdotte o hiPSC, che sovraesprimono la neurogenina-2, guidate dal sistema antibiotico inducibile dalla doxiciclina.
Trasferirli nelle aree degli elettrodi attivi rivestiti di proteine di adesione nei pozzetti di un array di microelettrodi multipozzetto.
Consentire alle hiPSC di attaccarsi alle aree degli elettrodi attivi rivestiti.
Aggiungere terreni integrati con doxiciclina, che induce la sovraespressione della neurogenina-2, un fattore di trascrizione neurale-specifico.
La neurogenina-2 innesca percorsi molecolari e porta alla differenziazione di hiPSC in cellule precursori neurali, mentre i costituenti dei terreni aiutano la sopravvivenza cellulare.
Introdurre gli astrociti nei pozzetti dell'array di microelettrodi, dove aderiscono all'area attiva dell'elettrodo.
Sostituire i terreni con terreni neurobasali contenenti fattori di crescita neurogeni, doxiciclina e un inibitore della crescita cellulare.
L'inibitore previene la proliferazione degli astrociti ed elimina le hiPSC indifferenziate.
Nel corso del tempo, l'espressione sostenuta della neurogenina-2 e i fattori di crescita guidano la differenziazione delle cellule precursori neurali nei neuroni.
Inoltre, sostituire i terreni con terreni neurobasali contenenti siero per la sopravvivenza degli astrociti.
Gli astrociti secernono fattori di crescita che promuovono la maturazione dei neuroni e la formazione delle sinapsi, formando una rete neuronale.
Per i MEA a sei pozzetti, diluire le cellule per ottenere una sospensione cellulare di 7,5 x 105 cellule per millilitro. Aspirare la laminina diluita dai MEA a sei pozzetti. Per i MEA a sei pozzetti, placcare le celle aggiungendo 100 microlitri di sospensione cellulare all'area dell'elettrodo attivo in ciascun pozzetto.
Quindi, posizionare i MEA a sei pozzetti in un incubatore umidificato a 37 gradi Celsius. Dopo due ore, aggiungere con cura 500 microlitri del terreno E8 preparato a ciascun pozzetto dei MEA a sei pozzetti. Successivamente, posizionare i MEA a sei pozzetti per una notte in un incubatore umidificato a 37 gradi Celsius.
Il terzo giorno, scaldare lo 0,05% di tripsina-EDTA a temperatura ambiente. DPBS caldo in DMEM/F-12 con l'1% di penicillina-streptomicina a 37 gradi Celsius. Quindi, aspirare il mezzo esaurito della coltura di astrociti di ratto. Lavare la coltura aggiungendo 5 millilitri di DPBS e agitarla delicatamente.
Successivamente, aspirare DPBS e aggiungere 5 millilitri di tripsina-EDTA allo 0,05%. Agitare delicatamente il tripsina-EDTA. Quindi, incubare le cellule in un'incubatrice umidificata a 37 gradi Celsius per 5-10 minuti. Successivamente, controllare al microscopio per verificare se le cellule sono staccate.
Stacca le ultime celle colpendo il pallone alcune volte. Quindi, aggiungere 5 millilitri di DMEM/F-12 al pallone. Triturare delicatamente le cellule all'interno del pallone con una pipetta da 10 millilitri. Successivamente, raccogliere la sospensione cellulare in una provetta da 15 millilitri. Centrifugare il tubo a 200 volte g per otto minuti.
Successivamente, aspirare il surnatante e risospendere le cellule in 1 millilitro di DMEM/F-12. Determinare il numero di cellule per millilitro utilizzando un emocitometro.
Quindi, aggiungere 7,5 x 104 astrociti a ciascun pozzetto dei MEA a sei pozzetti e aggiungere 2 x 104 astrociti a ciascun pozzetto della piastra a 24 pozzetti. Incubare le cellule per una notte in un incubatore umidificato a 37 gradi Celsius.