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Inizia con l'adenosina monofosfato ciclico, o cAMP, una molecola di segnalazione che regola varie funzioni cellulari. Aggiungere il cAMP a una co-coltura neurone-macrofagi.
Le molecole di cAMP del terreno e i fattori di crescita dei neuroni innescano l'attivazione dei macrofagi.
Trasferire l'inserto con i macrofagi attivati in un altro pozzetto contenente un terreno di coltura per macrofagi.
Qui, i macrofagi rilasciano citochine e chemochine nel mezzo, formando un mezzo condizionato o CM.
Centrifugare il CM per pellettare i componenti cellulari.
Trasferire il surnatante e il filtro per rimuovere i detriti cellulari.
Aggiungere il CM raccolto a una coltura neuronale. Le citochine e le chemochine nel CM raccolto promuovono le estensioni dei neuroni.
Aggiungere paraformaldeide raffreddata per fissare le cellule.
Aggiungere un tampone di blocco per evitare il legame non specifico degli anticorpi. Lavare per rimuovere il tampone residuo.
Applicare anticorpi primari che hanno come bersaglio le proteine del citoscheletro dei neuroni. Lavare per rimuovere gli anticorpi non legati.
Aggiungere anticorpi secondari coniugati con fluoroforo rosso che si legano agli anticorpi primari. Lavare per rimuovere gli anticorpi non legati.
Utilizzando la microscopia a fluorescenza, visualizza i neuroni di colore rosso con estensioni.
Quattro ore dopo che i macrofagi neuronali sono stati co-coltivati, aggiungere 2 microlitri di soluzione di db-cAMP 100 micromolari alle co-colture di macrofagi neuronali. Dopo 24 ore, riempire un pozzetto vuoto con 1 millilitro di terreno di coltura per macrofagi nella stessa piastra a 6 pozzetti.
Trasferire l'inserto di coltura cellulare nella co-coltura di macrofagi neuronali nel pozzetto vuoto con terreno di coltura per macrofagi. Dopo 72 ore, centrifugare il terreno condizionato con macrofagi a 239 g per cinque minuti per rimuovere i componenti cellulari. Passare il surnatante attraverso un filtro da 0,2 micrometri per rimuovere eventuali detriti cellulari residui.
In questa procedura, prerivestire un vetrino a 8 pozzetti con poli-D-lisina e laminina. Quindi, ottenere i neuroni DRG adulti associati in mezzo neurobasale, integrati con B 27. Piastra 5 x 104 celle per pozzetto su un vetrino a camera a 8 pozzetti prerivestito.
Quindi, posizionare il vetrino della camera in un'incubatrice a 37 gradi Celsius per due ore, consentendo alle cellule di attaccarsi al fondo. Quindi, sostituire il terreno di coltura con un terreno condizionato scongelato preriscaldato a 37 gradi Celsius. 15 ore dopo la placcatura iniziale, rimuovere il terreno e lavare una volta le celle con PBS.
Quindi, aggiungere 200 microlitri di soluzione ghiacciata di paraformaldeide al 4% nei pozzetti e incubare le cellule con la soluzione di paraformaldeide per 20 minuti a 4 gradi Celsius. Successivamente, incubare le cellule fissate con una soluzione di anticorpi primari, diluita con il 10% di siero di capra normale per quattro ore a temperatura ambiente o durante la notte a 4 gradi Celsius. Successivamente, scatta immagini utilizzando un microscopio a fluorescenza per visualizzare la crescita dei neuriti.