Studio della rigenerazione delle connessioni funzionali tra le fette del midollo spinale utilizzando un array multi-elettrodo

0 visualizzazioni3:52 min • July 8th, 2025

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Posizionare un array multielettrodo, o MEA, in una capsula di Petri sotto uno stereomicroscopio. La MEA è composta da elettrodi disposti in una griglia con due zone separate.

Aggiungere una goccia di plasma sanguigno al MEA. Posizionare due fette di midollo spinale ottenute da embrioni di ratto, con i lati ventrali uno di fronte all'altro.

Introdurre una soluzione di trombina, mescolarla con il plasma e incubare. La trombina provoca la coagulazione plasmatica, creando un'impalcatura biologica che facilita l'adesione delle fette sul MEA.

Aggiungere un mezzo nutritivo e incubare sotto agitazione, favorendo la formazione di connessioni cellulari tra le fette e provocandone la fusione.

Sotto lo stereomicroscopio, introdurre una lesione tagliando le connessioni tissutali tra le fette. Aggiungere un mezzo nutritivo e incubare.

Durante l'incubazione, i neuroni crescono attraverso la lesione per collegare le fette.

Utilizzando una camera di registrazione, registrare l'attività elettrica di entrambe le fette del midollo spinale per valutare le loro connessioni funzionali rigenerate.

Mettere una piastra di Petri con un array di microelettrodi rivestito all'interno, sotto uno stereomicroscopio. Mettere a fuoco l'array e centrare una goccia da 6 microlitri di plasma di pollo sull'array di elettrodi. Usando una piccola spatola, far scorrere con cautela due sezioni del midollo spinale con i lati ventrali rivolti l'uno verso l'altro nella gocciolina di plasma.

Quindi, aggiungi 8 microlitri di trombina attorno alla gocciolina di plasma di pollo. Quindi, utilizzare la punta della pipetta per mescolare e distribuire accuratamente la miscela di plasma di pollo e trombina. Poco prima che la miscela di plasma di pollo e trombina diventi troppo filamentosa e inizi a coagulare, aspirare il liquido in eccesso. Quindi, tappare la capsula di Petri e metterla in una camera umidificata. Posizionare la camera all'interno di un'incubatrice a 37 gradi Celsius per circa un'ora.

Dopo l'incubazione, aggiungere con cura 10 microlitri di terreno nutritivo al campione. Tappare la capsula di Petri e rimetterla nell'incubatrice per altri 45 minuti. Quindi, posizionare ciascuno dei gruppi di coltura multi-elettrodo in una provetta a rullo e aggiungere 3 millilitri di terreno nutritivo. Chiudere bene il coperchio e posizionare il tubo del rullo nel tamburo del rullo. Ruotare il tamburo da 1 a 2 giri/min nell'incubatrice a 37 gradi Celsius.

Utilizzando una pinza sterile con punta in gomma, rimuovere i gruppi di coltura multi-elettrodo dal tubo del rullo e posizionarli in una piastra di Petri sotto uno stereomicroscopio. Metti a fuoco il tessuto e verifica che le due fette siano fuse.

Quindi, tenere fermo il gruppo e posizionare una lama di bisturi nella scanalatura dell'array multielettrodo vicino alle fette di tessuto. Tenere il bisturi piuttosto orizzontalmente, quindi sollevare il manico del bisturi, ma lasciare che la lama del bisturi rimanga nella scanalatura dell'array in modo tale che la lama rotoli dalla base alla punta, tagliando il tessuto che copre la scanalatura. Se necessario, recidere eventuali connessioni tissutali residue con una punta dell'ago calibro 25. Lavorare solo nell'area all'interno della scanalatura e non toccare i bordi teneri.

Rimettere i gruppi di coltura multi-elettrodo nel tubo del rullo e aggiungere 3 millilitri di terreno nutritivo fresco alle colture. Quindi, riposizionare il tubo del rullo sul tamburo del rullo nell'incubatrice a 37 gradi Celsius.

Montare un gruppo di coltura multi-elettrodo in una camera di registrazione e applicare circa 500 microlitri di soluzione extracellulare all'array. Quindi, montare il gruppo sul microscopio. Attendere 10 minuti affinché il sistema si stabilizzi, quindi registrare l'attività spontanea di base da ciascuno degli elettrodi di rilevamento dell'attività per 10 minuti.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026