Sviluppo di un modello di coltura a tripla cellula della barriera emato-encefalica umana

0 visualizzazioni3:44 min • July 8th, 2025

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Inizia aggiungendo periciti sul lato inferiore dell'inserto del pozzetto.

Coprire l'inserto a pozzetti con una piastra di coltura e incubare.

I periciti si attaccano alla membrana dell'inserto del pozzetto, formando uno strato di una singola cellula o un monostrato.

Prendi un altro piatto di coltura.

Aggiungi astrociti umani al pozzetto in un mezzo adatto. Quindi, incubare la piastra.

Gli astrociti si attaccano al fondo del pozzetto e formano un monostrato.

Scartare il terreno e aggiungere astrociti e periciti freschi.

Ora, prendi la piastra di coltura contenente l'inserto del pozzetto con lo strato di periciti.

Capovolgere la piastra e trasferire l'inserto del pozzetto nel pozzetto contenente lo strato di astrociti.

Aggiungere le cellule endoteliali del cervello umano sul lato superiore dell'inserto e incubare.

Le cellule endoteliali si attaccano all'inserto del pozzetto, formando un sistema di coltura a tripla cellula che assomiglia alla barriera emato-encefalica, un'interfaccia cruciale che separa il flusso sanguigno e il cervello.

Iniziare coltivando l'HBVP in fiasche di coltura T75 con una superficie attivata per l'adesione cellulare all'interno di un incubatore al 5% di anidride carbonica a 37 gradi Celsius fino a quando non diventa confluente. Una volta raggiunta la confluenza, aspirare il vecchio terreno parassitario e lavare le cellule con 5 millilitri di PBS caldo di Dulbecco. Aspirare il PBS di Dulbecco e staccare le cellule dal pallone, utilizzando una combinazione di 4 millilitri di soluzione tiepida di tripsina-EDTA e 1 millilitro di PBS di Dulbecco.

Incubare il pallone per 5 minuti a 37 gradi Celsius in un incubatore ad anidride carbonica. Osservare al microscopio per confermare se le cellule sono staccate dal pallone. Aggiungere 5 millilitri di terreno antiparassitario caldo, contenente il 2% di FBS, al pallone e trasferire le cellule staccate in una provetta da centrifuga da 50 millilitri. Centrifugare la sospensione cellulare per tre minuti a 200 g, lasciando che le cellule formino un pellet sul fondo della provetta.

Aspirare il fluido dal tubo, assicurandosi che il pellet della cella rimanga intatto. Risospendere il pellet cellulare in mezzo parassita. Calcolare la quantità di terreno, a seconda della confluenza delle celle e del numero di inserti di pozzetti necessari. Assumere 10 microlitri di cellule risospese. Mettili in un vetrino per il conteggio delle cellule e conta il numero di cellule.

Determinare la densità cellulare e seminare 300.000 cellule per inserto in 1 millilitro di terreno parassita sul lato luminale degli inserti del pozzetto. Coltivare astrociti umani primari utilizzando il mezzo astrocitario, contenente il 2% di FBS, come descritto nel manoscritto del testo. Determinare la densità cellulare e seminare 300.000 cellule per pozzetto sul fondo delle piastre a 6 pozzetti per coltura tissutale. Coprire la piastra per evitare l'evaporazione e incubare per una notte.

Estrarre dall'incubatrice le piastre a 6 pozzetti per colture tissutali contenenti astrociti negli inserti dei pozzetti contenenti periciti. Aspirare il terreno di coltura degli astrociti dalle piastre a 6 pozzetti per la coltura dei tessuti e aggiungere 1 millilitro di terreno parassita e 1 millilitro di terreno di coltura per astrociti a ciascun pozzetto.

Aspirare il terreno pericitario dagli inserti dei pozzetti e posizionarli nelle piastre a 6 pozzetti per la coltura tissutale contenenti gli astrociti seminati. Seminare HBMEC a una densità di 300.000 cellule per pozzetto in 2 millilitri di terreno classico completo sul lato apicale degli stessi inserti del pozzetto.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026