Generazione di neuroni e cellule gliali da corpi embrioidi derivati da cellule staminali pluripotenti indotte umane

0 visualizzazioni4:00 min • July 8th, 2025

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Prendiamo i corpi embrioidi, o EB, derivati da cellule staminali pluripotenti indotte umane. Questi EB sono composti da tre strati germinali.

Trasferire gli EB in una piastra di coltura rivestita di matrice contenente un terreno adatto e incubare.

La matrice consente agli EB di attaccarsi alla piastra di coltura.

I fattori di crescita e i nutrienti nel mezzo facilitano le cellule ectodermiche degli EB a formare aggregati neuroepiteliali disposti in uno schema circolare chiamato rosetta.

Tagliate i frammenti di rosetta e staccateli dal piatto.

Raccogli i frammenti e girali verso il basso.

Scartare il surnatante e risospendere i frammenti.

Usando una pipetta, muovi i frammenti su e giù per dissociarli.

Aggiungere il numero desiderato di cellule a una piastra a pozzetti rivestita di matrice contenente un mezzo di differenziazione.

I componenti del mezzo di differenziazione facilitano la trasformazione delle cellule neuroepiteliali in cellule neuronali e gliali completamente funzionali, le cellule primarie del sistema nervoso.

Il secondo giorno, aspirare la soluzione di rivestimento della matrice standard da un piatto da 60 millilitri precedentemente preparato e aggiungere 5 millilitri di terreno di induzione neuroepiteliale completo o NRI al piatto. Lavorando al microscopio stereoscopico con un ingrandimento di 4x e utilizzando una pipetta da 200 microlitri, raccogliere circa 50 corpi embrioidi galleggianti e trasferirli in un piatto rivestito. Quindi, incubare la capsula a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica.

Il giorno successivo, terzo giorno della procedura di differenziazione, controllare la capsula al microscopio con un ingrandimento di 10x per assicurarsi che i corpi embrioidi siano tutti attaccati. Quindi, eseguire delicatamente un cambio totale del terreno con il terreno NRI completo. Cambiare il mezzo NRI a giorni alterni fino al settimo giorno, quando dovrebbero essere visibili aggregati neuroepiteliali simili a rosette.

Il settimo giorno, rivestire una piastra da 96 pozzetti pipettando 100 microlitri di matrice standard diluita in terreno di coltura in ciascun pozzetto. L'ottavo giorno, tagliare gli aggregati a rosetta in frammenti al microscopio stereoscopico con un ingrandimento di 10x in condizioni sterili.

Si noti che le rosette tendono a staccarsi facilmente dal piatto quando vengono toccate con l'ago. In questo caso, disaggregare parzialmente la rosetta staccata con la punta dell'ago. Se le rosette rimarranno parzialmente attaccate, utilizzare una pipetta da 200 microlitri per completare il distacco dei frammenti di rosetta.

Le talee a rosetta richiedono una buona manualità e precisione per evitare di tagliare derivati non neuroectodermici.

Quindi, raccogli i frammenti di rosetta e il loro terreno in un tubo conico da 15 millilitri. Sciacquare il piatto con 2 millilitri di terreno NRI per recuperare tutti i frammenti. Quindi, centrifugare i frammenti di rosetta a 112 volte g per uno o due minuti.

Dopo aver aspirato il surnatante, risospendere delicatamente il pellet in 1 millilitro di 1x DPBS preriscaldato senza calcio e magnesio. Pipettare delicatamente i frammenti di rosetta su e giù per dissociarli parzialmente. Quindi, aggiungere 4 millilitri di terreno NRI completo e contare le cellule utilizzando il blu di tripano e un contatore di cellule automatizzato.

Successivamente, aspirare la soluzione di rivestimento della matrice standard dalla piastra a 96 pozzetti e depositare le celle nei pozzetti a una densità di circa 15.000 celle per centimetro quadrato in terreno NRI. Incubare la piastra per una notte a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica. Il giorno 10, eseguire un cambio totale del mezzo utilizzando un mezzo di differenziazione neuronale completo.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026