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Neuroscienze
0 visualizzazioni • 3:00 min • July 8th, 2025
Iniziare con colonie di cellule staminali pluripotenti umane o hPSC attaccate a un substrato adatto in un terreno di coltura.
Rimuovere il mezzo. Aggiungere un mezzo neuronale contenente inibitori specifici e incubare.
Questi inibitori dirigono la maturazione delle hPSC verso una linea neuronale, formando colonie neuroectodermiche. Questi sono precursori di piccole strutture sferiche chiamate sferoidi.
Rimuovere il terreno e lavare con un tampone di sale.
Incubare con un enzima digestivo per staccare le colonie dalla piastra.
Aggiungere il mezzo neuronale per fermare l'attività enzimatica.
Raccogli le colonie e trasferiscile in un tubo.
Lasciali depositare, quindi scarta il surnatante.
Risospendere le colonie in un mezzo neuronale contenente un fattore di crescita.
Trasferire le colonie in una piastra a più pozzetti e incubare.
Questo fattore di crescita facilita l'auto-organizzazione e la moltiplicazione delle cellule neuroectodermiche, portandole a formare uno sferoide.
Per iniziare, piastrate le colonie di hPSC su una matrice di membrana basale qualificata hESC da un pozzetto di una piastra a 6 pozzetti alla confluenza del 60% in tre pozzetti per ottenere una densità dal 20% al 30%, quindi procedete con l'induzione di colonie neuroectodermiche 2D.
Aggiungere quotidianamente terreni freschi di N2 integrati con doppi inibitori SMAD a ciascun pozzetto per i successivi 3 giorni. Per generare sferoidi neuroectodermici 3D da colonie neuroectodermiche 2D indotte, rimuovere 2 millilitri di terreno N2 dalla piastra a 6 pozzetti e lavare una volta con HBSS per assicurarsi che tutto il terreno N2 venga rimosso.
Aggiungere 1 millilitro di dispasi in ogni pozzetto contenente la colonia. Incubare la piastra per 20-25 minuti a 37 gradi Celsius e controllare regolarmente il distacco della colonia. Al termine dell'incubazione, per arrestare l'attività dell'enzima dispasi, aggiungere 1 millilitro di terreno N2 al pozzetto. Utilizzando un puntale per pipetta P1000 a foro largo o un puntale per pipetta P1000 modificato con forbici sterili, trasferire le colonie in una provetta da 15 millilitri e lasciare che i grumi di colonia affondino sul fondo della provetta per gravità.
Quindi, con un puntale per pipetta P1000 standard, rimuovere con cautela il surnatante. Sostituirlo con 1 millilitro di terreno N2 fresco e ripetere il lavaggio tre volte per garantire la completa rimozione della dispasi. Dopo aver risospeso i grumi cellulari e il terreno N2, trasferire la sospensione cellulare in un pozzetto di una piastra a 6 pozzetti e aggiungere 40 nanogrammi per millilitro di bFGF.
Questo articolo descrive un protocollo per la differenziazione di cellule staminali pluripotenti umane (hPSCs) in sferoidi neuroectodermici. Il processo prevede l'uso di specifici inibitori e fattori di crescita per guidare la maturazione e l'auto-organizzazione delle cellule staminali.
Questo protocollo consente la generazione riproducibile di sferoidi neuroectodermici da cellule staminali pluripotenti umane, fornendo un modello in vitro scalabile per la differenziazione neuronale precoce. L'approccio supporta la validazione degli obiettivi e la riduzione del rischio meccanicistica nei modelli di malattie neurodegenerative producendo sistemi pertinenti alla malattia con un'organizzazione cellulare definita. Migliora la fiducia predittiva nell'identificazione dei composti attivi offrendo una piattaforma standardizzata per lo screening di composti che influenzano le vie dello sviluppo neuronale.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla differenziazione delle cellule staminali ai risultati dei saggi funzionali, sostenendo le fasi iniziali di validazione del bersaglio e di identificazione dei composti promettenti.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026