Generazione di sferoidi da cellule staminali pluripotenti umane

0 visualizzazioni3:00 min • July 8th, 2025

Iniziare con colonie di cellule staminali pluripotenti umane o hPSC attaccate a un substrato adatto in un terreno di coltura.

Rimuovere il mezzo. Aggiungere un mezzo neuronale contenente inibitori specifici e incubare.

Questi inibitori dirigono la maturazione delle hPSC verso una linea neuronale, formando colonie neuroectodermiche. Questi sono precursori di piccole strutture sferiche chiamate sferoidi.

Rimuovere il terreno e lavare con un tampone di sale.

Incubare con un enzima digestivo per staccare le colonie dalla piastra.

Aggiungere il mezzo neuronale per fermare l'attività enzimatica.

Raccogli le colonie e trasferiscile in un tubo.

Lasciali depositare, quindi scarta il surnatante.

Risospendere le colonie in un mezzo neuronale contenente un fattore di crescita.

Trasferire le colonie in una piastra a più pozzetti e incubare.

Questo fattore di crescita facilita l'auto-organizzazione e la moltiplicazione delle cellule neuroectodermiche, portandole a formare uno sferoide.

Per iniziare, piastrate le colonie di hPSC su una matrice di membrana basale qualificata hESC da un pozzetto di una piastra a 6 pozzetti alla confluenza del 60% in tre pozzetti per ottenere una densità dal 20% al 30%, quindi procedete con l'induzione di colonie neuroectodermiche 2D.

Aggiungere quotidianamente terreni freschi di N2 integrati con doppi inibitori SMAD a ciascun pozzetto per i successivi 3 giorni. Per generare sferoidi neuroectodermici 3D da colonie neuroectodermiche 2D indotte, rimuovere 2 millilitri di terreno N2 dalla piastra a 6 pozzetti e lavare una volta con HBSS per assicurarsi che tutto il terreno N2 venga rimosso.

Aggiungere 1 millilitro di dispasi in ogni pozzetto contenente la colonia. Incubare la piastra per 20-25 minuti a 37 gradi Celsius e controllare regolarmente il distacco della colonia. Al termine dell'incubazione, per arrestare l'attività dell'enzima dispasi, aggiungere 1 millilitro di terreno N2 al pozzetto. Utilizzando un puntale per pipetta P1000 a foro largo o un puntale per pipetta P1000 modificato con forbici sterili, trasferire le colonie in una provetta da 15 millilitri e lasciare che i grumi di colonia affondino sul fondo della provetta per gravità.

Quindi, con un puntale per pipetta P1000 standard, rimuovere con cautela il surnatante. Sostituirlo con 1 millilitro di terreno N2 fresco e ripetere il lavaggio tre volte per garantire la completa rimozione della dispasi. Dopo aver risospeso i grumi cellulari e il terreno N2, trasferire la sospensione cellulare in un pozzetto di una piastra a 6 pozzetti e aggiungere 40 nanogrammi per millilitro di bFGF.