Differenziazione delle cellule staminali neurali in neuroni utilizzando un dispositivo microfluidico compartimentalizzato

0 visualizzazioni4:12 min • July 8th, 2025

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Prendiamo un dispositivo microfluidico costituito da pozzetti serbatoio collegati a due compartimenti, uno somatico e uno assonale, separati da una barriera di microsolchi.

Gli scomparti e le microscanalature sono rivestiti con un substrato di coltura cellulare per facilitare l'adesione cellulare.

Aggiungere un terreno di coltura di cellule staminali neurali a ciascun pozzetto e incubare per precondizionare il dispositivo per la coltura cellulare.

Eliminare il supporto. Aggiungere cellule staminali neurali, o NSC, ai pozzetti del compartimento somatico e lasciare che le cellule aderiscano.

Aggiungere il terreno NSC a ciascun pozzetto e incubare in una camera umidificata per evitare l'evaporazione del terreno. Durante l'incubazione, le NSC proliferano.

Sostituire il terreno NSC con un mezzo di differenziazione neurale e incubare.

Le piccole molecole nel mezzo inducono la differenziazione delle NSC in neuroni all'interno del compartimento somatico, con i loro assoni che si estendono attraverso i microsolchi nel compartimento assonale.

I neuroni differenziati con assoni estesi sono pronti per ulteriori saggi.

Per iniziare, sciogliere la poli-l-ornitina in acqua distillata per colture cellulari per ottenere 600 microlitri di soluzione per chip. Aspirare il PBS rimanente dai pozzetti, assicurandosi che la punta della pipetta sia lontana dall'apertura del canale. Caricare 150 microlitri di soluzione di lavoro di poli-l-ornitina nel pozzetto in alto a destra.

Attendere 90 secondi e aggiungere 150 microlitri di soluzione nel pozzetto in basso a destra. Attendere cinque minuti e ripetere il processo di caricamento con la soluzione per i pozzetti rimasti. Quindi, posizionare il vassoio dell'umidificatore con il chip a 4 gradi Celsius durante la notte. Se si utilizza una capsula di Petri, avvolgerla con parafilm e posizionarla a 4 gradi Celsius durante la notte.

Quindi, aspirare la soluzione dai pozzetti, assicurandosi che la punta della pipetta sia posizionata lontano dall'apertura del canale, e ripetere il caricamento dei pozzetti destro e sinistro con 150 microlitri ciascuno di acqua sterile due volte.

Preparare la soluzione di lavoro della laminina. Caricare i pozzetti destro e sinistro con 150 microlitri ciascuno della soluzione di lavoro della laminina. Incubare il chip all'interno del vassoio per due ore a 37 gradi Celsius.

Sciacquare il chip con PBS senza calcio e magnesio. Caricare i pozzetti destro e sinistro con 150 microlitri ciascuno di PBS. Attendi cinque minuti. Aspirare il PBS dai pozzetti e sciacquare il chip con il terreno NSC. Caricare i pozzetti destro e sinistro con 150 microlitri ciascuno dei terreni NSC. Incubare il chip nel vassoio per una notte in un'incubatrice a 37 gradi Celsius con il 5% di CO2 per precondizionare il chip.

Per seminare le cellule staminali neurali umane nel chip multicompartimentale, per prima cosa, contare la concentrazione cellulare utilizzando un emocitometro. Quindi, aspirare il terreno dai pozzetti. Pipettare 5 microlitri della soluzione cellulare nel pozzetto in alto a destra, seguiti da 5 microlitri nel pozzetto in basso a destra.

Utilizzare un microscopio per verificare che le cellule siano entrate nel canale. Attendi cinque minuti affinché le celle aderiscano alla parte inferiore del chip. Pipettare circa 150 microlitri di terreno NSC nei pozzetti destro e sinistro. Incubare al 5% di CO2, 37 gradi Celsius, in un idoneo contenitore umidificato.

Dopo 48 ore, aspirare il terreno NSC dai pozzetti e sostituirlo con un terreno di differenziazione neurale aggiungendo 150 microlitri a ciascun pozzetto superiore e inferiore. Coltura di neuroni all'interno di un'incubatrice al 5% di CO2, 37 gradi Celsius all'interno di un vassoio umidificatore.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026