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Prendiamo i tessuti adiposi periaortici transgenici di topo raccolti contenenti cellule staminali derivate dal tessuto adiposo che esprimono proteine fluorescenti discendenti da cellule della cresta neurale, o NCC.
Aggiungere i mezzi di digestione e tritare i fazzoletti.
Trasferire il tessuto tritato con il mezzo di digestione in una provetta. Dissociare meccanicamente i frammenti.
incubare. La collagenasi nel terreno digerisce la matrice extracellulare del tessuto, rilasciando cellule staminali, adipociti e fibroblasti.
Aggiungere terreni contenenti siero per arrestare l'attività della collagenasi. Centrifugare ed eliminare il surnatante contenente adipociti.
Risospendere le celle nel terreno e filtrare per rimuovere gli aggregati.
Centrifugare il filtrato e rimuovere il surnatante. Risospendere le cellule nel tampone di lisi degli eritrociti per lisare gli eritrociti.
Aggiungere un tampone contenente siero per fermare la lisi. Centrifugare ed eliminare il surnatante.
Risospendere le celle nel buffer.
Eseguire la selezione cellulare attivata dalla fluorescenza per isolare le cellule staminali fluorescenti.
Le cellule staminali isolate possono essere utilizzate per ulteriori esperimenti.
Trasferire il tessuto adiposo raccolto in una nuova provetta da microcentrifuga da 2 millilitri, contenente 1 millilitro di terreno di digestione appena preparato, e utilizzare le forbici chirurgiche per tritare i tessuti. Trasferire l'impasto tissutale in una provetta da 50 millilitri contenente 9 millilitri di terreno di digestione fresco e utilizzare una pipetta da 1 millilitro per triturare i tessuti 10 volte.
Quando è stata ottenuta una soluzione omogenea, incubare la provetta per 30-45 minuti a 37 gradi Celsius e 100 giri al minuto, controllando ogni 5-10 minuti per evitare una digestione eccessiva. Quando si osserva una soluzione di tessuto adiposo omogeneo di colore giallo chiaro dopo un leggero roteamento del tubo, interrompere la digestione con 5 millilitri di HDMEM integrato con il 10% di siero fetale bovino. Dopo un'accurata miscelazione, centrifugare il campione di tessuto adiposo.
La frazione di cellule vascolari stromali sarà visibile come una pallina brunastra. Risospendere il pellet in 10 millilitri di terreno di coltura e filtrare la sospensione cellulare attraverso un filtro cellulare da 70 micrometri.
Raccogliere le cellule mediante un'altra centrifugazione e risospendere delicatamente il pellet in 5 millilitri di tampone di lisi eritrocitaria. Trasferire la sospensione in un tubo da 15 millimetri. Dopo 10 minuti, interrompere la reazione con due centrifugazioni in 10 millilitri di PBS, integrate con siero fetale bovino all'1%.
Dopo la seconda centrifugazione, risospendere il pellet in 5 millilitri di terreno di coltura su ghiaccio e raccogliere le cellule con una centrifugazione finale. Quindi, risospendere le cellule in 5 millilitri di tampone FACS per il conteggio.
Per impostare una coltura NCADSC dopo il loro isolamento mediante FACS secondo i protocolli standard, posizionare le cellule a una concentrazione di 5 x 103 cellule per cm2 in ciascun pozzetto, una piastra di coltura a 12 pozzetti in terreno di coltura completo, a 37 gradi Celsius, e il 5% di anidride carbonica per 20-24 ore. Il giorno successivo, lavare le cellule con PBS a 37 gradi Celsius e alimentare la coltura con terreno di coltura fresco.