Purificazione dei capillari da un cervello suino

0 visualizzazioni3:45 min • July 8th, 2025

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Prendete un cervello suino.

Rimuovere le meningi, la membrana protettiva che copre il cervello, per prevenire la contaminazione delle cellule meningee.

Raschiare la materia grigia, una regione ricca di capillari, e raccogliere il tessuto in una piastra di coltura contenente terreni.

Passare la sostanza grigia attraverso una siringa senza ago per frammentare il tessuto.

Trasferire i frammenti in un omogeneizzatore e omogeneizzare per disintegrare ulteriormente il tessuto, rilasciando i capillari cerebrali.

Far passare l'omogenato attraverso un filtro con una dimensione specifica dei pori per trattenere i capillari, consentendo ad altre cellule cerebrali di fluire.

Porre il filtro in una soluzione contenente enzimi e DNasi.

Gli enzimi staccano le cellule aderenti, mentre la DNasi degrada il DNA contaminante, facilitando l'isolamento dei capillari puri.

Lavare i capillari dal filtro.

Aggiungere terreni contenenti proteine del siero per inattivare gli enzimi.

Trasferire i capillari in una provetta, centrifugare e rimuovere il surnatante. Risospendere i capillari puri in un terreno fresco per ulteriori analisi.

Per iniziare questa procedura, posizionare i cervelli in un banco di flusso sterile e lavarli delicatamente con 1 litro di PBS in un becher posto sul ghiaccio. Quindi, rimuovere con cura le meningi da ciascun cervello usando una pinza a punta fine. Usando un bisturi, raschiare via la materia grigia dal cervello uno alla volta e trasferire il materiale isolato in piastre di Petri contenenti 20 millilitri di DMEM/F12 poste sul ghiaccio.

Per la frammentazione iniziale, far passare il materiale della materia grigia attraverso una siringa da 50 millilitri senza l'ago. Ripeti la procedura per tutti i cervelli e metti insieme il materiale di materia grigia raccolto. Trasferire il materiale isolato della materia grigia con il terreno DMEM/F12 nel tubo di macinazione di un omogeneizzatore di tessuti portatile. Omogeneizzare il materiale facendo 8 colpi su e giù con un pestello sciolto, seguiti da 8 colpi su e giù con un pestello stretto.

Successivamente, isolare i capillari filtrando l'omogeneizzato utilizzando un flacone con tappo blu da 500 millilitri con portafiltro e rete filtrante da 140 micron. Posizionare il capillare contenente i filtri in piastre di Petri con la soluzione digestiva. Successivamente, incubare le piastre di Petri a 37 gradi Celsius per un'ora su un agitatore orbitale a 180 giri/min, oppure mescolarle delicatamente ogni 10 minuti.

Dopo un'ora, lavare via i capillari dai filtri con sospensione dalla capsula di Petri. Quindi, dividere la sospensione dalle tre piastre in due tubi da 50 millilitri e interrompere la digestione aggiungendo 10 millilitri di DMEM/F12 a ciascun tubo da 50 millilitri.

Centrifugare le sospensioni cellulari a 250 volte g, 4 gradi Celsius per 5 minuti. Successivamente, aspirare i surnatanti e risospendere ogni pellet in 10 millilitri di DMEM/F12. Quindi, aggiungere altri 20 millilitri di DMEM/F12 a ciascuna provetta.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026