Ottenimento di una sospensione unicellulare dal tessuto ippocampale di topo

0 visualizzazioni3:42 min • July 8th, 2025

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Prelevare frammenti di ippocampo di topo adulto perfusi in una provetta di dissociazione contenente papaina e DNasi.

Posizionare il tubo su un dissociatore meccanico.

Il dissociatore disintegra meccanicamente il tessuto, allentando le cellule, compresi i neuroni e le cellule gliali.

La papaina rompe la matrice extracellulare del tessuto, rilasciando le cellule. La DNasi degrada il DNA contaminante.

Aggiungere un tampone contenente BSA, inattivando gli enzimi.

Passare la sospensione attraverso un colino per rimuovere i detriti di grandi dimensioni.

Centrifugare il filtrato. Scartare il surnatante ricco di enzimi.

Risospendere le cellule nel tampone e trasferirle in una nuova provetta.

Aggiungere il gradiente di densità, mescolare e sovrapporre la miscela con il tampone.

Durante la centrifugazione, le cellule e i detriti formano strati separati in base alla loro densità.

Rimuovere lo strato tampone più in alto e lo strato centrale di detriti

.

Aggiungere il buffer allo strato inferiore contenente le celle e mescolare. Centrifugare ed eliminare il surnatante contenente il mezzo di gradiente di densità.

Risospendere le cellule dell'ippocampo in tampone per ulteriori analisi.

Usando una pinza, trasferisci i pezzi di tessuto dell'ippocampo in una provetta a C e aggiungi 30 microlitri di miscela enzimatica 2 nella provetta. Dopo aver ruotato il tappo e serrato fino allo scatto, posizionare il tubo in un dissociatore ed eseguire il programma appropriato. Durante l'esecuzione del programma, pre-bagnare un filtro cellulare da 70 micron posizionato su una provetta conica da 50 millilitri con 2 millilitri di tampone BSA.

Al termine del programma di dissociazione, aggiungere 4 millilitri di tampone BSA al tessuto dissociato e filtrare la miscela attraverso il filtro cellulare sul tubo conico da 50 millilitri. Quindi, aggiungere 10 millilitri di DPBS al tubo C. Quindi chiudere la provetta, agitare delicatamente la soluzione e filtrarla attraverso il filtro cellulare sul tubo conico da 50 millilitri. Centrifugare la sospensione cellulare filtrata. Scartare il surnatante senza disturbare il pellet e conservare il pellet.

Per la rimozione dei detriti, risospendere il pellet con 1.550 microlitri di DPBS freddo e trasferire la sospensione in un tubo conico da 15 millilitri etichettato. Quindi, aggiungere 450 microlitri di soluzione fredda per la rimozione dei detriti e pipettare su e giù. Sovrapporre delicatamente la sospensione cellulare con 1 millilitro di DPBS freddo, mantenendo la punta contro la parete del tubo conico. Ripetere la procedura fino a quando la sovrapposizione totale è di 2 millilitri.

Quindi, centrifugare la sospensione a 3.000 volte g per 10 minuti con la massima accelerazione e il freno completo. Aspirare lo strato più in alto. Quindi, spazzare la punta della pipetta avanti e indietro per aspirare lo strato intermedio bianco. Rimuovere il più possibile lo strato intermedio senza disturbare lo strato più in basso. Quindi, aggiungere 2 millilitri di DPBS freddo e pipettare su e giù per mescolare. Quindi, centrifugare la sospensione a 1.000 volte g per 10 minuti con la massima accelerazione e il freno completo. Dopo la centrifugazione, scartare il surnatante e risospendere il pellet in tampone BSA da 1 millilitro.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026