JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscienze
0 visualizzazioni • 3:43 min • July 8th, 2025
Prendi una configurazione laterale di illuminazione a luce soffusa contenente una scheda acrilica dotata di pad bianchi e luci LED bianche installate su un bordo.
Posizionare davanti una piastra multipozzetto a bassa adesione contenente un terreno di formazione del corpo embrioide.
Aggiungi i corpi embrioidi, o EB, alla piastra.
La luce LED entra dal lato del pannello acrilico ed emette fasci paralleli, illuminando lateralmente gli EB e consentendo la visualizzazione ad occhio nudo.
Ruotare la piastra per indurre un flusso vorticoso, facendo convergere gli EB al centro.
Sostituire il terreno esaurito con un mezzo di formazione EB fresco.
Raccogliere gli EB utilizzando un puntale per pipetta a foro largo.
Tenere la pipetta in posizione verticale per consentire agli EB di depositarsi per gravità.
Trasferisci gli EB su un'altra piastra a bassa aderenza contenente un mezzo di induzione neurale.
Toccare la punta a metà. Gli EB affondano a causa della tensione superficiale del liquido.
Fattori specifici nel mezzo avviano la differenziazione neurale negli EB, formando uno strato neuroepiteliale.
Usa una lavagna acrilica trasparente con uno spessore da 0,3 a 0,5 centimetri nel formato di un foglio A5 e incolla i tamponi bianchi sulla parte anteriore e posteriore della lastra acrilica. Quindi, installa una fila di luci bianche a LED sul bordo della piastra in modo che le luci possano entrare dal lato della lastra acrilica e quindi sparare in parallelo.
Ora, preparare una nuova piastra a sei pozzetti a bassa adesione e aggiungere 2 millilitri di terreno di formazione EB a ciascun pozzetto. Dopo aver rimosso gli EB insieme al terreno, utilizzando il puntale per pipetta a foro largo da 1000 microlitri, trasferire circa 100 EB per pozzetto nella piastra a 6 pozzetti a bassa aderenza.
Per sostituire ogni giorno il mezzo di formazione EB con lo stesso volume di terreno fresco, indurre un flusso a vortice ruotando la capsula lungo un'orbita circolare. Gli EB o organoidi convergono al centro del pozzetto a causa del flusso secondario generato attraverso la rotazione. Aspirare lentamente il vecchio terreno pipettandolo fino al bordo del pozzetto. Non aspirare troppo forte, altrimenti gli EB verranno rimossi insieme. Quindi, aggiungere nuovi supporti per risospendere gli EB.
Per l'induzione neurale, preparare una nuova piastra a 6 pozzetti a bassa aderenza con 3 millilitri di terreno di induzione neurale per pozzetto. Accendi la luce soffusa laterale e spegni le altre fonti di luce interna. A questo punto, trasferire gli EB sulla piastra a 6 pozzetti con l'aggiunta di un mezzo di induzione neurale utilizzando una punta di pipetta a bocca larga per aspirare sia gli EB che il terreno di coltura. Quindi, tenere la pipetta in posizione verticale. Gli EB affonderanno gradualmente per gravità e convergeranno verso la bocca del puntale della pipetta.
Quando la bocca del puntale della pipetta tocca nuovamente la superficie del liquido e, a causa della tensione superficiale del liquido, gli EB affondano rapidamente nel fluido. Incubare i campioni a 37 gradi Celsius e al 5% di anidride carbonica per 24 ore.
Questo articolo illustra una tecnica di illuminazione laterale con luce soffusa progettata per migliorare la visualizzazione e la manipolazione dei corpi embrioidi (EB) durante la coltura di organoidi cerebrali. Il protocollo descrive l'allestimento del sistema di illuminazione, le procedure per il cambio del mezzo, il trasferimento dei corpi embrioidi e l'induzione della differenziazione neurale, facilitando uno sviluppo efficiente degli organoidi cerebrali.
La visualizzazione dei corpi embrionoidi (EB) durante le prime fasi di differenziazione rappresenta un collo di bottiglia nella scoperta di farmaci e nella validazione di bersagli basati sulle cellule staminali. L'illuminazione laterale soffusa consente il monitoraggio ad occhio nudo dell'aggregazione e della manipolazione dei EB, migliorando la riproducibilità nei protocolli di induzione neurale. Questo approccio supporta la riduzione dei rischi meccanicistici fornendo un metodo semplice e scalabile per valutare in vitro i fenotipi neurosviluppamentali precoci.
La tecnica si integra nel percorso di scoperta, dalla coltura delle cellule staminali fino alla differenziazione neurale precoce, sostenendo le fasi di identificazione del composto promettente e di validazione preclinica.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026