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La coltura ha immortalato le cellule progenitrici otiche multipotenti, o iMOP, in terreni.
I fattori di crescita nel mezzo facilitano la proliferazione delle iMOP e la formazione di colonie, creando otosfere.
Raccogli le otosfere e lasciale depositare per gravità.
Rimuovere i terreni e aggiungere i terreni di differenziazione privi di fattori di crescita. Placcare le otosfere.
L'assenza di fattori di crescita avvia la differenziazione delle iMOP nelle cellule epiteliali sensoriali.
Raccogli le otosfere differenziate e lasciale depositare.
Rimuovere il terreno e aggiungere un fissativo per preservare la morfologia cellulare.
Successivamente, aggiungi un detergente per permeabilizzare le membrane cellulari e nucleari.
Aggiungere un buffer di blocco per impedire il legame di anticorpi non specifici.
Introdurre anticorpi primari mirati a uno specifico marcatore di differenziazione.
Aggiungere anticorpi secondari coniugati con fluorofori che prendono di mira gli anticorpi primari, falloidina marcata in fluorescenza per colorare l'actina e un colorante legante il DNA per colorare i nuclei.
Monta le otosfere.
Utilizzando la microscopia a fluorescenza, visualizzare la colorazione per confermare la differenziazione dell'iMOP.
Tre giorni dopo la placcatura, utilizzare la sedimentazione per gravità per raccogliere le otosfere come mostrato in precedenza. Procedere all'aspirazione del surnatante e risospendere delicatamente le cellule in 2 millilitri di terreno di differenziazione epiteliale sensoriale. Quindi, utilizzare una pipetta di grande diametro da 10 millilitri per trasferire le otosfere in un nuovo piatto da 60 millimetri. Differenziare le otosfere per 10 giorni, aggiungendo 2 millilitri di terreno di differenziazione fresco alla coltura a giorni alterni.
Successivamente, raccogliere nuovamente le otosfere per gravità, sedimentazione e aspirare il terreno esaurito. Successivamente, fissare le otosfere in paraformaldeide al 4% in 1X PBS per 15 minuti a temperatura ambiente. Quindi, rimuovere la soluzione di formaldeide e lavare le cellule in 1X PBS contenente lo 0,1% di Triton X-100. Procedere bloccando le otosfere in 1X PBS, integrato con il 10% di siero di capra e lo 0,1% di Triton X-100.
Dopo un'ora, sostituire il tampone bloccante con quello contenente l'appropriata diluizione dell'anticorpo Cdkn1b o Cdh1. Quindi, incubare le cellule in anticorpi primari durante la notte a 4 gradi Celsius e il giorno successivo, continuare l'immunocolorazione utilizzando anticorpi secondari marcati in fluorescenza, falloidina e Hoechst come descritto altrove.
Per prepararsi all'imaging, posizionare il terreno di montaggio su un vetrino e quindi introdurre le otosfere colorate nel terreno. Quindi, stendere un vetrino coprioggetti sopra il campione. Dopo aver lasciato asciugare il mezzo di montaggio per una notte a 4 gradi Celsius, posizionare il vetrino sul tavolino di un microscopio invertito dotato di una telecamera CCD a 16 bit. Utilizzando l'obiettivo pneumatico 20X 0,75, è possibile acquisire immagini di epifluorescenza raccogliendo dati dai canali blu, verde, rosso e infrarosso.