Applicazione di correnti di rumore ai neuroni del nucleo vestibolare mediale utilizzando la tecnica del patch-clamp a cellula intera

0 visualizzazioni3:45 min • July 8th, 2025

Prendi una fetta di tronco encefalico di topo contenente il nucleo vestibolare mediale, o MVN.

Fissare la fetta in una camera di registrazione riempita con liquido cerebrospinale artificiale per mantenere la vitalità neuronale.

Visualizza la fetta al microscopio per localizzare i neuroni MVN.

Applicare una pressione positiva per far avanzare una micropipetta riempita con una soluzione che imita l'ambiente intracellulare attraverso il tessuto.

Quando la pipetta entra in contatto con un neurone, la membrana neuronale si attenua.

Applicare una pressione negativa per aspirare una piccola porzione della membrana, creando una tenuta ermetica.

Successivamente, applicare impulsi di pressione negativa per rompere la membrana, creando una connessione continua tra il neurone e la pipetta.

Applicare ampiezze di rumore casuali al neurone e identificare un'ampiezza sottosoglia oltre la quale il rumore induce l'attivazione neuronale.

Infine, applicare una serie di stimoli elettrici al neurone combinati con l'ampiezza del rumore casuale sottosoglia.

Misurare il guadagno neuronale: la capacità del neurone di modulare la sua risposta di attivazione agli stimoli in presenza di rumore.

Per l'elettrofisiologia del patch clamp a cellula intera, in primo luogo, estrarre le micropipette con una resistenza finale che varia da 3 a 5 megaohm quando vengono riempite con una soluzione interna a base di potassio e metterle nella vasca da bagno. Per ottenere registrazioni di patch clamp su cellule intere da singoli neuroni nell'MVN, trasferire una singola fetta di tessuto dalla camera di incubazione alla camera di registrazione di una configurazione elettrofisiologica standard e utilizzare un filo di nylon su un peso a forma di U per fissare la fetta.

Perfondere continuamente la camera di registrazione con aCSF carbogenato a 25 gradi Celsius a una portata di tre millilitri al minuto e riempire una micropipetta con soluzione interna. Applicare una piccola quantità di pressione positiva utilizzando una pipetta per allontanare i detriti dal puntale della pipetta. Utilizzando un obiettivo a bassa potenza, localizzare l'MVN prima di passare a un'alta potenza per localizzare i singoli neuroni all'interno dell'MVN.

Prima di rompere il tessuto con la pipetta, applicare una piccola quantità di pressione positiva per allontanare i detriti dalla punta della pipetta e utilizzare il micromanipolatore per spostare la pipetta verso il neurone selezionato. Dovrebbe formarsi una piccola fossetta sulla membrana neuronale. Rilasciare la pressione positiva e applicare una piccola quantità di pressione negativa.

Una volta ottenuta una tenuta di un gigaohm, applicare una pressione negativa delicata, breve e decisa al supporto della pipetta attraverso la porta di aspirazione per rompere la membrana e creare una configurazione a cella intera. Quindi, ottenere registrazioni della pinza di corrente a cella intera secondo i protocolli standard.

Per applicare il rumore stocastico e sinusoidale ai singoli neuroni del nucleo vestibolare mediale, impostare l'intervallo di ampiezze da 3 a 24 picoampere per determinare la soglia neuronale e la velocità di attivazione e raggruppare le intensità di stimolo più basse e più alte per determinare la soglia sensoriale.

Quindi, calcola la velocità media di sparo nel periodo di 10 secondi durante il quale verrà iniettato il passo di corrente depolarizzante per ogni singolo livello di corrente. Utilizzare i valori della velocità di sparo media per generare un grafico della cadenza di sparo rispetto a quello corrente. Quindi, eseguire un'analisi di regressione lineare per determinare il gradiente della linea di miglior adattamento per determinare il guadagno neuronale.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026