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Inizia con una fetta di cervello corticale prefrontale protetta in un liquido cerebrospinale artificiale, o aCSF, nella camera di registrazione di una configurazione elettrofisiologica.
Questo aCSF contiene un bloccante dei canali ionici del sodio, che inibisce i canali del sodio nei neuroni.
Posizionare una micropipetta riempita con acido gamma-aminobutirrico, o GABA, sopra un neurone postsinaptico.
Posizionare una micropipetta di registrazione riempita di soluzione ionica con un elettrodo vicino allo stesso neurone.
Applicare un'aspirazione debole per creare una tenuta ermetica con una piccola macchia della membrana neuronale.
Quindi, applicare una forte aspirazione per interrompere la membrana rattoppata, consentendo l'accesso all'interno del neurone.
Fornire il GABA, un neurotrasmettitore inibitorio, che si lega con un canale del cloruro ligando-dipendente sui neuroni postsinaptici.
Questo apre il canale e consente agli ioni cloruro di entrare nei neuroni, generando una corrente postsinaptica inibitoria.
A una tensione costante, registrare la corrente postsinaptica. Un aumento della corrente postsinaptica inibitoria riflette il ruolo del GABA nell'inibizione dell'attività neuronale.
Trasferire una fetta di cervello nella camera di registrazione usando una pipetta Pasteur con la punta sottile tagliata per adattarsi alle dimensioni della fetta. Quindi, posiziona un'ancora di platino sopra la fetta per tenerla sulla piattaforma. Successivamente, riempire le micropipette di registrazione con la soluzione interna e riempire le micropipette a sbuffo con GABA a 10 micromolari, 50 micromolari e 100 micromolari o aCSF come controllo del veicolo.
Per evitare l'ostruzione con detriti, applicare una leggera pressione positiva utilizzando una siringa da un millilitro prima di immergere l'elettrodo di registrazione nell'aCSF. Al microscopio, posizionare l'elettrodo di registrazione e la micropipetta a sbuffo in modo che le punte appaiano al centro del monitor. Quindi, identifica un neurone bersaglio. Regolare la messa a fuoco del microscopio abbassando gradualmente la micropipetta a sbuffo e posizionarla sopra il neurone di registrazione con un angolo di 45 gradi.
Mantenere la distanza tra la punta della micropipetta a sbuffo e il neurone bersaglio nell'intervallo da 20 a 40 micrometri. Lentamente, e con attenzione, avvicinatevi al neurone con l'elettrodo di registrazione e poi rilasciate la pressione positiva. Applicare un'aspirazione debole e breve attraverso il tubo collegato al portaelettrodo per creare una tenuta gigaohm. Mantenere la tensione a zero millivolt.
Dopo la formazione della guarnizione gigaohm, compensare la capacità veloce e lenta manualmente o automaticamente. Quindi, applicare una breve e forte aspirazione attraverso il tubo per entrare nella modalità a cella intera. Successivamente, registrare le correnti IPSC evocate in modalità voltage-clamp.
Eroga sbuffi GABA singoli o accoppiati attraverso la micropipetta a sbuffo controllata da un generatore di gradini master a otto tensioni. Modificare la durata del soffio per ottenere i migliori risultati delle correnti IPSC evocate e misurare le correnti IPSC evocate.