Definizione di un patch clamp a cellula intera per la registrazione elettrofisiologica da una retina di topo a montaggio piatto

0 visualizzazioni4:05 min • July 8th, 2025

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Posizionare una retina di topo a montaggio piatto in una soluzione fisiologica all'interno di una camera di registrazione.

Utilizzando un microscopio, posizionare una pipetta di registrazione sopra la retina. La pipetta contiene un elettrodo ed è riempita con una soluzione interna.

Applicare una pressione positiva per evitare l'intasamento della pipetta, inserirla nella retina e quindi ridurre la pressione per evitare danni ai tessuti.

Far avanzare la pipetta verso le cellule amacrine starburst, o SAC, che sono sinapticamente legate ad altri neuroni.

Avvicinati a una cellula fino a quando non si forma una fossetta sulla sua membrana. Rilasciare la pressione, permettendo alla membrana di aderire alla punta.

Utilizzare una corrente negativa per aspirare un cerotto a membrana nella pipetta.

Applicare l'aspirazione per rompere la membrana, stabilendo la continuità tra l'elettrodo e il citoplasma cellulare, una tecnica chiamata patch-clamp a cellula intera.

Per registrare le correnti sinaptiche, applicare una tensione per mantenere costante il potenziale di membrana del SAC.

I neurotrasmettitori rilasciati dai neuroni sinapticamente collegati innescano il flusso di ioni attraverso i recettori sinaptici SAC, misurati dall'elettrodo.

In questa procedura, filtrare la soluzione interna attraverso un filtro a siringa nel filamento di riempimento personalizzato. Quindi, inserire il filamento in una micropipetta appena tirata ed erogare la soluzione interna vicino alla punta fino a quando la soluzione non copre il filo dell'elettrodo d'argento per più di 5 millimetri. Successivamente, fissare la micropipetta su un portaelettrodo con un'asta di aspirazione, attraverso la quale è possibile regolare la pressione all'interno dell'elettrodo spingendo o tirando lo stantuffo di una siringa di plastica da 10 millilitri collegata a un tubo.

Quindi, individuare la pipetta sotto l'obiettivo e portarla a circa 100 micrometri sopra la retina. In modalità inseguitore di corrente, utilizzare l'offset CC per azzerare il segnale di tensione CC permanente. Misurare la resistenza della pipetta in modalità pinza amperometrica iniettando correnti a onda quadra di ampiezza fissa attraverso la pipetta mentre si trova nella vasca da bagno. Neutralizzare la differenza ruotando la manopola di accesso R e utilizzare la lettura su di essa per calcolare la resistenza della pipetta.

Dopodiché, portare lentamente l'elettrodo a circa 10 micrometri sopra la retina. Applicare una pressione positiva all'elettrodo. Quindi, osserva il riflesso che cambia sulla punta della pipetta mentre si avvicina alla retina.

Forzare rapidamente ma delicatamente la pipetta nel GCL e ridurre immediatamente la pressione positiva. Sposta la pipetta verso un neurone marcato ed evita di entrare in contatto con altri neuroni, vasi sanguigni e piedi terminali delle cellule di Muller. Applicare una maggiore pressione positiva, se necessario, per evitare l'intasamento dell'elettrodo.

Quindi, posizionare la punta della pipetta vicino al neurone marcato fino a quando non è visibile una fossetta. Quindi, rilasciare la pressione positiva e lasciare che la membrana plasmatica rimbalzi sul puntale della pipetta. Applicare correnti negative da 20 a 120 pico ampere alla pipetta per favorire la formazione di una tenuta giga-ohm.

Consentire alla membrana cellulare di rimbalzare dopo aver rilasciato la pressione positiva è importante perché un'eccellente tenuta formata naturalmente tra la membrana e l'apertura della pipetta è importante per preservare la morfologia cellulare dopo la registrazione.

Se necessario, aspirare delicatamente per tirare la membrana plasmatica nella pipetta. Attendere cinque minuti dopo la formazione del sigillo per rompere la membrana cellulare in modo da consentire la fuoriuscita della soluzione interna versata per superfusione. Dopo che la membrana è stata rotta e mentre si è in modalità pinza amperometrica, attivare il bilanciamento del ponte e regolarlo utilizzando la manopola dell'asse R. Registrare le correnti postsinaptiche eccitatorie e inibitorie in modalità voltage clamp mantenendo la cella ai potenziali di inversione.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026