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Neuroscienze
0 visualizzazioni • 4:21 min • July 8th, 2025
Prendi un array multi-elettrodo rivestito di polimero o MEA, con fette di midollo spinale embrionale co-coltivate posizionate in due zone separate, consentendo la registrazione simultanea da entrambe le fette.
La fetta mostra connessioni neurali rigenerate nell'area precedentemente lesionata.
Posizionare il MEA in una camera di registrazione contenente una soluzione extracellulare ricca di ioni e sostanze nutritive per mantenere la sopravvivenza neuronale.
Consentire al sistema di stabilizzarsi, facilitando l'adattamento e la comunicazione dei neuroni.
I neuroni comunicano tramite segnali elettrici chiamati potenziali d'azione, che vengono registrati dagli elettrodi vicini nel MEA.
I singoli segnali provenienti da ciascun elettrodo vengono combinati, producendo un segnale elettrico da ciascuna fetta.
Sostituire regolarmente la soluzione extracellulare per mantenere la stabilità dei neuroni.
Aggiungi una soluzione extracellulare con inibitori che bloccano i recettori inibitori dei neurotrasmettitori sulle membrane neuronali, mantenendo i neuroni attivi per una durata più lunga.
Confrontare l'attività elettrica di entrambe le sezioni. Un segnale elettrico sincronizzato tra le due fette conferma le connessioni sinaptiche e il successo della rigenerazione neurale.
Mettere una piastra di Petri con un array di microelettrodi rivestito all'interno sotto uno stereomicroscopio. Metti a fuoco l'array e centra una goccia da sei microlitri di plasma di pollo sull'array di elettrodi. Usando una piccola spatola, far scorrere con cautela due sezioni del midollo spinale con i lati ventrali rivolti l'uno verso l'altro nella gocciolina di plasma.
Quindi, aggiungi otto microlitri di trombina attorno alla gocciolina di plasma di pollo. Quindi, utilizzare la punta della pipetta per mescolare e distribuire accuratamente la miscela di plasma di pollo e trombina. Poco prima che la miscela di plasma di pollo e trombina diventi troppo filamentosa e inizi a coagulare, aspirare il liquido in eccesso. Quindi, tappare la capsula di Petri e metterla in una camera umidificata.
Posizionare la camera all'interno di un'incubatrice a 37 gradi Celsius per circa un'ora. Dopo l'incubazione, aggiungere con cura 10 microlitri di terreno nutritivo al campione. Tappare la capsula di Petri e rimetterla nell'incubatrice per altri 45 minuti. Quindi, posizionare ciascuno dei gruppi di coltura multi-elettrodo in un tubo a rullo e aggiungere tre millilitri di terreno nutritivo. Chiudere bene il coperchio e posizionare il tubo del rullo nel tamburo del rullo. Ruotare il tamburo da 1 a 2 giri/min nell'incubatrice a 37 gradi Celsius.
Utilizzando una pinza sterile con punta in gomma, rimuovere i gruppi di coltura multi-elettrodo dal tubo del rullo e posizionarli in una piastra di Petri sotto uno stereomicroscopio. Metti a fuoco il tessuto e verifica che le due fette siano fuse. Quindi, tenere fermo il gruppo e posizionare una lama di bisturi nella scanalatura dell'array multielettrodo vicino alle fette di tessuto. Tenere il bisturi piuttosto orizzontalmente e poi sollevare il manico del bisturi, ma lasciare che la lama del bisturi rimanga nella scanalatura della matrice in modo tale che la lama rotoli dalla base alla punta, tagliando il tessuto, coprendo la scanalatura.
Se necessario, recidere eventuali connessioni tissutali residue con una punta dell'ago calibro 25. Lavorare solo nell'area all'interno della scanalatura e non toccare i bordi teneri. Rimettere i gruppi di coltura dell'array multi-elettrodo nel tubo del rullo e aggiungere tre millilitri di terreno nutritivo fresco alle colture. Quindi, riposizionare il tubo del rullo sul tamburo del rullo nell'incubatrice a 37 gradi Celsius.
Montare un gruppo di coltura multi-elettrodo in una camera di registrazione e applicare circa 500 microlitri di soluzione extracellulare all'array. Quindi, montare il gruppo sul microscopio. Attendere 10 minuti affinché il sistema si stabilizzi, quindi registrare l'attività spontanea di base da ciascuno degli elettrodi di rilevamento dell'attività per 10 minuti. Ripetere le registrazioni per un totale di due volte.
Per garantire condizioni extracellulari stabili, sostituire la soluzione extracellulare dopo ogni sessione di registrazione. Se lo si desidera, disinibire la rete applicando una soluzione extracellulare contenente un micromolare di stricnina e 10 micromolari di gabazina e attendere almeno due minuti prima di registrare l'attività elettrica.
Questo studio illustra un metodo per registrare l'attività elettrica da fette di midollo spinale embrionale in co-coltura, utilizzando un'array multielettrodo (MEA) rivestita con polimero. L'approccio consente la valutazione della rigenerazione neuronale e delle connessioni sinaptiche a seguito di lesione.
La valutazione della rigenerazione neurale funzionale in fette di midollo spinale in co-coltura mediante l'uso di matrici multielettrode fornisce un modello fisiologicamente rilevante per valutare terapie neuro-rigenerative. Questo approccio consente la validazione precoce degli obiettivi misurando l'attività elettrica sincronizzata come indicatore funzionale del ripristino delle connessioni sinaptiche. Supporta inoltre la riduzione del rischio meccanicistico nei percorsi di scoperta mirati alla riparazione del sistema nervoso centrale e alla rigenerazione assonale.
Il metodo si inserisce nel continuum dalla scoperta precoce all'identificazione del capostazione, in cui la validazione funzionale dei meccanismi neuroregenerativi precede i test di efficacia in vivo.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026