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Posizionare una fetta di cervello di topo in una camera di registrazione perfusa con una soluzione di registrazione ossigenata.
La fetta contiene il nucleo genicolato laterale dorsale, o dLGN, che è ricco di neuroni relè. Questi neuroni formano sinapsi retinogenicolate con le proiezioni delle cellule gangliari retiniche e sinapsi corticogenicolate con proiezioni neuronali dalla corteccia visiva.
Posizionare una pipetta stimolante sul tratto ottico per studiare le sinapsi retinogenicolate o sul nucleo reticolare thalami per studiare le sinapsi corticogenicolate.
Posizionare una pipetta di registrazione vicino alla fetta. Usando un microscopio, individua un neurone relè.
Applicare una pressione positiva per evitare l'intasamento della pipetta mentre ci si avvicina al neurone.
Passare alla pressione negativa, formando un sigillo con la membrana cellulare, quindi romperla per stabilire la continuità con il citoplasma.
Utilizzando la pipetta stimolante, erogare impulsi elettrici che inducono le proiezioni a rilasciare neurotrasmettitori eccitatori, che si legano ai recettori sinaptici dei neuroni relè, innescando il flusso ionico misurato dalla pipetta di registrazione.
In questa procedura, estrarre le pipette di registrazione utilizzando capillari in vetro borosilicato e un estrattore di filamenti. Quindi, tirare le pipette stimolanti utilizzando lo stesso protocollo, ma rompere leggermente il puntale dopo averlo tirato per aumentare il diametro. Successivamente, riempire le pipette di registrazione con soluzione intracellulare e biocitina e riempire le pipette stimolanti con la soluzione di registrazione.
Quindi, posizionare le fette nella camera di registrazione e perfonderle continuamente con una soluzione di registrazione ossigenata a temperatura ambiente. Visualizzare le fette con un microscopio verticale dotato di microscopia video IR-DIC. Controllare tutte le fette e selezionare quelle che mostrano tratti ottici intatti. Posizionare la pipetta stimolante sulla fetta prima di applicare il cerotto alla cellula con la pipetta di registrazione.
Per studiare le sinapsi retinogenicolate, posizionare la pipetta stimolante direttamente sul tratto ottico dove sono raggruppate le fibre assonali delle cellule gangliari retiniche. Per analizzare le sinapsi corticogenicolate, posizionare l'elettrodo stimolante sul nucleo reticolare talami, che è rostroventralmente adiacente al nucleo genicolato dorsolaterale. Una volta che la pipetta di registrazione è immersa nella soluzione di registrazione, applicare un passo di cinque millivolt per monitorare la resistenza della pipetta.
Impostare il potenziale di mantenimento su zero millivolt e annullare il potenziale di offset in modo che la corrente di mantenimento sia zero picoampere. Avvicinarsi alla cella con una pipetta di registrazione applicando una pressione positiva. Quando la pipetta è a diretto contatto con la membrana cellulare, rilasciare la pressione positiva e impostare il potenziale di mantenimento a meno 70 millivolt.
Quindi, applicare una leggera pressione negativa per consentire alla membrana cellulare di attaccarsi alla pipetta di vetro in modo tale da formare una tenuta gigaohm. Compensare la capacità della pipetta e aprire la cella applicando impulsi di pressione negativa. Per studiare la funzione sinaptica, applicare impulsi di corrente di 0,1 millisecondi tramite la pipetta di stimolazione. Monitorare continuamente la resistenza in serie applicando un passo di cinque millivolt.
La resistenza in serie può essere stimata dividendo cinque millivolt per l'ampiezza di picco della corrente evocata. Utilizzare solo le celle con una resistenza in serie inferiore a 20 mega ohm per l'analisi.