Registrazione del patch clamp a cellula intera in un neurone di substantia gelatinosa di una fetta di midollo spinale

0 visualizzazioni3:45 min • July 8th, 2025

Metti una fetta di midollo spinale di ratto in una camera di registrazione e fissala con un ancoraggio per tessuti.

Perfondere la fetta con liquido cerebrospinale artificiale.

Al microscopio, identificare la substantia gelatinosa traslucida o regione SG e selezionare un neurone SG sano.

Posizionare una pipetta per cerotti riempita con una soluzione ionica vicino al neurone.

Applicare una leggera pressione positiva per rimuovere eventuali detriti dal puntale della pipetta.

Spostare la pipetta verso il neurone.

Quindi, rilasciare la pressione positiva per formare una fossetta sulla membrana neuronale, creando un sigillo.

Modificare il potenziale di tenuta per avvicinarlo al potenziale di membrana a riposo, o RMP.

Utilizzare una breve aspirazione per rompere la membrana, stabilendo una configurazione a cellula intera.

Al RMP, applicare impulsi elettrici depolarizzanti.

Questi impulsi aprono canali del sodio voltaggio-dipendenti, consentendo un rapido afflusso di ioni sodio.

Questo afflusso di ioni innesca un potenziale d'azione, con conseguente attivazione dei neuroni.

Registra i modelli di attivazione dei neuroni.

Per condurre registrazioni di patch-clamp su cellule intere da neuroni di substantia gelatinosa o SG, utilizzare soluzioni intracellulari a base di ioni di potassio per la registrazione, applicando una soluzione a base di cationi di cesio solo per la registrazione di correnti postsinaptiche inibitorie.

Spostare delicatamente la fetta del midollo spinale nella camera di registrazione, quindi stabilizzarla saldamente con un filo di platino a forma di U con fili di nylon, per una stabilità ottimale della fetta. Perfondere costantemente la fetta con ACSF a bolle a temperatura ambiente e impostare la velocità di perfusione da 2 a 4 millilitri al minuto per ottenere un'ossigenazione sufficiente.

Quindi, utilizzando una lente da microscopio a bassa risoluzione, identificare la regione dei neuroni SG come una banda traslucida. Scegli un neurone sano, caratterizzato da una forma tridimensionale con una membrana luminosa e liscia, come cellula bersaglio, utilizzando l'obiettivo ad alta risoluzione, e regolalo al centro dello schermo del monitor video.

Riempire una micropipetta con un volume appropriato di soluzione intracellulare a base di ioni di potassio o di cesio. Quindi, inserire la micropipetta nel supporto dell'elettrodo e assicurarsi che la soluzione intracellulare sia a contatto con il filo d'argento all'interno del supporto. Mettere a fuoco la micropipetta e utilizzare il micromanipolatore per immergerla nell'ACSF. Applicare una leggera pressione positiva per allontanare sporco e detriti.

Spostare gradualmente la micropipetta verso il neurone bersaglio. Una volta che la pipetta si avvicina al neurone e si forma una fossetta molto piccola sulla membrana neuronale, rilasciare la pressione positiva per formare un gigaseal. Modificare il potenziale di mantenimento a meno 70 millivolt, che è vicino al potenziale fisiologico di membrana a riposo di una cellula.

Quindi, applicare un'aspirazione transitoria e delicata alla micropipetta per rompere la membrana e creare una buona configurazione dell'intera cellula. Registrare le proprietà di sparo testando il modello di accensione di ciascun neurone in current clamp con una serie di impulsi di corrente depolarizzante di un secondo da 25 a 150 picoampere con incrementi di 25 picoampere al potenziale di membrana a riposo.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026