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Inizia con una configurazione di elettrofisiologia contenente una mosca transgenica immobilizzata con un cervello esposto.
Posizionare una micropipetta di registrazione vicino a un neurone postsinaptico collegato a un neurone presinaptico che co-esprime canali del sodio resistenti alla tetrodotossina e canali sensibili alla luce rossa e un interneurone con canali del sodio sensibili alla tetrodotossina.
Applicare una leggera aspirazione alla micropipetta per formare una tenuta ermetica con la membrana neuronale.
Quindi, applicare una forte aspirazione per interrompere la membrana.
Mantenere costante il potenziale cellulare. Introdurre la tetrodotossina, che blocca i canali del sodio nell'interneurone, impedendo la trasmissione del segnale dall'interneurone al neurone postsinaptico.
Tuttavia, i canali del sodio resistenti alla tetrodotossina rimangono inalterati, consentendo agli ioni sodio di entrare nel neurone presinaptico.
Illumina la mosca con gli impulsi di luce rossa.
Questo stimola i canali sensibili alla luce, consentendo ai cationi di influire e attivare il neurone presinaptico.
Questo neurone presinaptico trasmette direttamente un segnale al neurone postsinaptico senza coinvolgere l'interneurone, e l'attività elettrica risultante conferma la connessione monosinaptica.
Al rig, iniziare immediatamente a perfondere la preparazione con soluzione salina di registrazione bollita con carbogeno. Utilizzare un serbatoio di soluzione salina alimentato a gravità posizionato sopra il tavolino del microscopio. Per raccogliere la soluzione salina di scarto, utilizzare una linea per il vuoto in un pallone da due litri.
Quindi, caricare la pipetta per patch con quattro microlitri di soluzione di registrazione interna e collegare la pipetta a un micromanipolatore. Quindi, azzerare l'offset dell'amplificatore e impostare l'amplificatore per fornire impulsi di prova. Quindi, regolare l'illuminazione obliqua IR per ottenere una visione chiara del cervello.
Ora, mentre si applica una pressione positiva alla pipetta, avvicinarsi alla cella con la pipetta. Quando si entra in contatto con la cellula, rilasciare la pressione positiva per sigillare la pipetta alla membrana. Quindi, impostare il potenziale di tenuta della membrana a -60 millivolt e la pipetta dovrebbe formare una tenuta gigaohm con la membrana cellulare. La corrente di mantenimento dovrebbe scendere a un livello basso di sub-picoamp.
Per ottenere sigilli gigaohm costanti, assicurarsi di mantenere la pipetta pulita mantenendo una pressione positiva ed evitare di colpire il tessuto quando ci si avvicina alle cellule.
Per procedere, impostare l'amplificatore in modo che fornisca impulsi di prova da -50 a -60 millivolt. Gli impulsi di prova riveleranno un grande transitorio capacitivo che rappresenta la corrente necessaria per caricare la pipetta patch. Per rimuovere i transitori capacitivi, regolare le manopole di compensazione della capacità sull'amplificatore.
Ora, applicare brevi impulsi di pressione negativa per rompere la membrana cellulare e ottenere la configurazione dell'intera cellula. Un grande aumento dei transienti capacitivi indica il successo. Va osservato anche un piccolo aumento della corrente di mantenimento. Quindi, impostare l'amplificatore in modalità pinza amperometrica e regolare il potenziale della cella tra -50 e -60 millivolt.
Il potenziale di tenuta può essere regolato per enfatizzare di conseguenza le connessioni eccitatorie o inibitorie. Una volta verificata la connessione, impostare la perfusione salina per il ricircolo della soluzione salina. Impostare le pompe in modo che il livello di soluzione salina nella vasca rimanga stabile.
Quindi, aggiungere abbastanza tetrodotossina al sistema per una concentrazione finale di un micromolare. Questo dovrebbe fermare l'attività di spiking del neurone rattoppato. In caso contrario, aggiungere altra tetrodotossina al sistema. Ora, applica brevi impulsi di luce rossa per attivare quella che probabilmente sarà una connessione monosinaptica.