JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscienze
0 visualizzazioni • 3:10 min • July 8th, 2025
Inizia con un topo anestetizzato adattato al buio.
Applicare gocce anestetiche e dilatanti sulla cornea.
Posiziona il mouse su una piattaforma rialzata di fronte a una cupola con una luce rossa fioca.
Fissare un elettrodo di terra per via sottocutanea sulla zampa posteriore e un elettrodo di riferimento all'interno della bocca.
Prendi un portaelettrodo con un capillare riempito di soluzione salina. Scorri per rimuovere le bolle d'aria.
Riempire completamente la punta del capillare con la soluzione salina.
Posizionare il capillare sulla cornea per registrare un elettroretinogramma ad accoppiamento diretto o DC-ERG.
Il DC-ERG misura le risposte elettriche sottili dell'epitelio pigmentato retinico o RPE.
L'RPE è un monostrato cellulare specializzato che mantiene la salute e l'integrità strutturale delle cellule fotorecettoriali.
Applicare una goccia di lubrificante per gli occhi per mantenere la conduttività e prevenire l'essiccazione.
Controllare i valori di resistenza per ciascun occhio per assicurarsi che siano simili e all'interno dell'intervallo.
Stabilire una linea di base stabile, quindi iniziare a registrare il DC-ERG.
Per posizionare il topo e gli elettrodi per un esperimento, anestetizzare la cornea di un topo sedato con una goccia di acido cloridrico proparacaina allo 0,5% prima di dilatare la cornea con una goccia di fenilefrina HCl al 2,5% e tropicamide allo 0,5%.
Usa il passaggio uno dei sei per accendere una luce rossa fioca all'interno della cupola e posizionare il mouse su un tavolo di registrazione riscaldato. Usa una pinza per tendere con cura la pelle della zampa posteriore e, usando una mano per tenere saldamente l'elettrodo dell'ago, usa l'altra mano per inserire l'elettrodo per via sottocutanea nella gamba posteriore per fissare l'elettrodo in posizione.
Posizionare l'elettrodo di riferimento argento/cloruro d'argento nella bocca dell'animale in modo che il pellet centrato poggi lungo la guancia posteriore e sia tenuto in posizione dietro i denti.
Prima di posizionare gli elettrodi capillari sull'occhio, posizionare il portaelettrodo con i capillari in vetro orientati verticalmente e muovere il portaelettrodo con un dito indice per rimuovere eventuali bolle che potrebbero essere state introdotte.
Utilizzare un ago calibro 25 per riempire le punte dei capillari con HBSS e ispezionare i capillari per assicurarsi che non vi siano bolle d'aria intrappolate nelle punte. Posizionare il supporto portaelettrodo in modo che le punte aperte dei capillari riempiti di HBSS siano a contatto delicato con la cornea e, facendo attenzione a non introdurre bolle, capovolgere l'erogatore di gel oculare lubrificante per scartare le gocce iniziali. Quindi, posizionare una goccia di gel lubrificante per gli occhi su ciascun occhio per mantenere la conduttività e prevenire l'essiccazione durante la registrazione.
Questo articolo descrive un metodo per la registrazione di elettroretinogrammi a corrente continua (DC-ERG) dall'epitelio pigmentato della retina (RPE) di topi anestetizzati. La procedura prevede un accurato posizionamento degli elettrodi e il mantenimento della conducibilità oculare per garantire misurazioni precise delle risposte retiniche.
La registrazione dell'elettroretinogramma a accoppiamento diretto (DC-ERG) dall'epitelio pigmentato retinico (RPE) del topo fornisce un'indicazione quantitativa e riproducibile della funzione dell'RPE, supportando la validazione precoce del bersaglio nella scoperta di farmaci oftalmici. Questo metodo consente una riduzione del rischio meccanicistica isolando le risposte elettriche specifiche dell'RPE, fornendo informazioni utili a valutare l'affidabilità predittiva di ipotesi terapeutiche rivolte alla salute retinica. L'integrazione del DC-ERG nei flussi di lavoro di scoperta migliora il processo decisionale del portafoglio, consentendo saggi funzionali robusti e confrontabili tra loro.
La registrazione del DC-ERG si colloca all'interfaccia tra la fase iniziale della scoperta e la validazione preclinica, fornendo un saggio funzionale per la verifica delle ipotesi e la valutazione dei composti promettenti nei flussi di ricerca oculare.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026