Determinazione della tossicità indotta da nanoparticelle nei neuroni utilizzando la microglia come biosensore surrogato

0 visualizzazioni3:51 min • July 8th, 2025

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Prelevare le colture microgliali in una piastra a più pozzetti contenente terreni.

Sostituire metà del terreno nel pozzetto di prova con un mezzo contenente nanoparticelle d'argento e nel pozzetto di controllo con un mezzo del veicolo. Incubare.

Le microglia internalizzano le nanoparticelle, si attivano e rilasciano citochine pro-infiammatorie.

Trasferire il terreno del veicolo e il terreno condizionato contenente queste citochine in filtri montati su provette di raccolta.

Centrifugare per rimuovere le nanoparticelle, trattenendo le citochine.

Capovolgere i filtri in nuove provette di raccolta, centrifugare e raccogliere il terreno. Aggiungi nuovi supporti.

Successivamente, prendi le colture neuronali ipotalamiche.

Sostituire metà del supporto del pozzetto di controllo con il supporto del veicolo e il supporto del pozzetto di prova con il supporto condizionato. Incubare.

Le citochine si legano ai recettori sui neuroni ipotalamici, attivando le vie di segnalazione che inducono la morte neuronale.

Aggiungere la resazurina e incubare.

Nelle cellule vive, gli enzimi deidrogenasi riducono la resazurina debolmente fluorescente a resorufina fluorescente.

Misurare la fluorescenza.

La ridotta fluorescenza indica un aumento della morte neuronale ipotalamica, suggerendo una neurotossicità indotta da nanoparticelle.

Per iniziare, raccogli 200 microlitri di terreno surnatante da ogni pozzetto della piastra e caricalo su un filtro che rimuoverà le nanoparticelle, posizionato su una provetta da microcentrifuga.

È importante ricordare che quando si filtrano le nanoparticelle, le loro dimensioni, forma e concentrazione influenzeranno l'efficienza di filtrazione, quindi è consigliabile testare la filtrazione in anticipo.

Ora, centrifugare i tubi a 14.000 g a temperatura ambiente per 15 minuti. Quindi, scartare il flusso, che contiene le nanoparticelle, e posizionare i filtri capovolti in nuove provette di raccolta. Capovolgere i filtri a 1.000 g per due minuti per raccogliere il terreno concentrato e condizionato contenente citochine.

Successivamente, aumentare il volume della raccolta a 400 microlitri con DMEM integrato appena fatto e conservare i tubi in ghiaccio. Per questo test, stabilire cellule ipotalamiche da ceppi congelati utilizzando gli stessi metodi descritti per stabilire colture microgliali. Infine, usali per seminare piastre a parete nera e fondo trasparente con 5.000 cellule per pozzetto in 200 microlitri di DMEM integrato.

Dopo 24 ore di coltivazione, rimuovere 100 microlitri di terreno e sostituirlo con 100 microlitri di terreno filtrato e concentrato raccolto dalle colture cellulari microgliali attivate. Quindi, incubare la piastra per 24 ore in condizioni standard. Il giorno successivo, aggiungere 22 microlitri di reagente resazurina a ciascun pozzetto e continuare l'incubazione per 20 minuti. Quindi, con uno spettrofotometro multimodale, eseguire una misura di fluorescenza per stimare la vitalità della cellula in termini di unità di fluorescenza relative.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026