$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Assumere il plasmide desiderato in terreni privi di siero. Questo plasmide codifica per proteine specifiche della vescicola con tag fluorescenti.
In un'altra provetta, assumere il reagente di trasfezione diluito in terreno privo di siero.
Mescolare le due soluzioni e incubare.
Il reagente di trasfezione si combina con il plasmide, formando un complesso.
Prendi un pozzetto contenente neuroni aderenti nei media con il siero. Aggiungere i complessi e incubare. Il complesso facilita l'ingresso del plasmide nella cellula.
Scartare il supporto per rimuovere i complessi non internalizzati.
Aggiungere il terreno fresco e poi incubare.
Il plasmide entra nel nucleo per essere trascritto e viene quindi tradotto in proteine fluorescenti specifiche della vescicola che etichettano le vescicole nei neuroni.
Utilizzando un microscopio a fluorescenza a temperatura controllata, è possibile acquisire immagini a intervalli di tempo specificati.
Per analizzare le immagini, definire i parametri di tracciamento.
Identifica la vescicola di interesse e registra le sue coordinate in ciascuna delle immagini.
Compila i dati per visualizzare il movimento della vescicola.
In questa procedura, mescolare 4 microgrammi di plasmide con 200 microlitri di terreno privo di siero. In una provetta separata, diluire otto microlitri di reagente di trasfezione in 200 microlitri di terreno privo di siero. Quindi, incubare la soluzione per 5 minuti a temperatura ambiente. Dopo cinque minuti, mescolare la soluzione plasmidica e la soluzione reagente di trasfezione e incubare la miscela per 20 minuti a temperatura ambiente. Successivamente, aggiungere il composto ai piatti con fondo in vetro rivestito.
Incubare i neuroni a 37 gradi Celsius per 30 minuti. Successivamente, sostituire il terreno con 2 millilitri di terreno di coltura corticale cerebrale e incubare i neuroni a 37 gradi Celsius per uno o due giorni.
Per l'imaging, utilizzare un microscopio a fluorescenza dotato di una telecamera CCD con le lenti dell'obiettivo 40x. Mantieni la temperatura a 37 gradi Celsius utilizzando un sistema di incubazione. Acquisisci immagini neuronali a 1 fotogramma ogni 5 secondi per un periodo di 100 secondi controllato dal software di acquisizione delle immagini.
Per analizzare le immagini, aprire tutte le immagini sequenziali nel software ImageJ con tracciamento manuale. Per combinare le immagini sequenziali, scegli Immagine, quindi Pile seguite da Immagini da impilare, quindi fai clic su OK. Successivamente, scegli Plug-in, quindi Tracciamento manuale. Verrà visualizzata una finestra di tracciamento. Fare clic sulla casella di controllo Mostra parametri e definire i parametri di tracciamento nella sezione dei parametri.
Quindi, fai clic su Aggiungi traccia per iniziare una nuova traccia. Dopo aver determinato le vescicole di interesse, fare clic sul centro dei segnali nelle immagini sequenziali per registrare le coordinate XY. Ripetere questa procedura per raccogliere le coordinate XY delle vescicole da tutte le immagini sequenziali. Ogni immagine avanza automaticamente all'immagine successiva dopo aver selezionato il punto di riferimento.