Differenziazione e maturazione di cellule staminali embrionali umane in organoidi neurali

0 visualizzazioni3:52 min • July 8th, 2025

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Iniziare con le cellule staminali embrionali umane in un terreno di coltura.

Incubare per la proliferazione cellulare e la formazione di sfere.

Trasferire queste sfere in un nuovo pozzetto con un mezzo contenente fattori di differenziazione.

Incubare agitando delicatamente. I fattori di differenziazione guidano le cellule staminali verso il lignaggio neurale.

Sostituire regolarmente metà del substrato.

Sostituisci il terreno con un mezzo di induzione neurale, quindi incuba per ottenere progenitori neurali.

Passa a un terreno ricco di fattori di crescita e incuba per promuovere la proliferazione cellulare e la formazione di rosetta neurale.

Quindi, coltura in un terreno contenente inibitori per bloccare la differenziazione cellulare indesiderata.

Sostituire questo terreno con un terreno contenente fattori di crescita e inibitori. Incubare per indurre la differenziazione in cellule gliali e neuroni primari.

Successivamente, posizionare le rosette neurali su una membrana idrofobica in un pozzetto contenente un mezzo di maturazione ricco di inibitori.

Incubare senza agitare per consentire la maturazione delle cellule neurali e gliali in un'interfaccia aria-liquido, formando organoidi neurali.

Erogare 1.000 mila cellule per micropozzetto. Centrifugare le cellule a 300 volte g per 5 minuti e controllare al microscopio la ripartizione omogenea delle cellule nella piastra a micropozzetti. Mettere la piastra nell'incubatrice a 37 gradi Celsius per una notte.

Il giorno successivo, esaminare la piastra del micropozzetto per verificare la dimensione delle sfere formate in ciascun micropozzetto. Trasferire le sfere in una piastra a sei pozzetti utilizzando il terreno, integrato con un doppio cocktail di inibizione SMAD per promuovere l'induzione neurale rapida. Da questo passo in avanti, le sfere vengono coltivate in rotazione a 60 giri/min per evitare che si attacchino tra loro o alla piastra. Dal giorno 1 al 4, cambiare il mezzo ogni due o tre giorni prima di eseguire l'induzione neurale.

Dal giorno 4 all'11, promuovere la proliferazione delle rosette neurali derivate da hESC aggiungendo EGF e bFGF a 10 nanogrammi per millilitro al terreno B27, integrato con doppio cocktail SMAD. Dall'11° al 13° giorno, coltivare le sfere in terreno B27, integrate con un inibitore BMP 0,5 micromolare. Dal giorno 13 al 21, coltivare le sfere in terreno B27 integrato con GDNF e BDNF a 10 nanogrammi per millilitro e 1 inibitore micromolare della gamma-secretasi.

Il giorno 21, posizionare un inserto della piastra di coltura in un pozzetto di una nuova piastra a sei pozzetti. Successivamente, aggiungere 1 millilitro di terreno B27, integrato con fattori di crescita e inibitori, a ciascun pozzetto sotto l'inserto della membrana. Successivamente, placcare le sfere su una membrana idrofila in PTFE depositata su un inserto per piastra di coltura e cambiare il terreno ogni due o tre giorni per le successive tre settimane di differenziazione. Arrestare la rotazione da questo passaggio.

La presenza di rosette indica l'inizio della differenziazione neurale. Dal giorno 21 al 25, coltiva organoidi neurali umani nello stesso mezzo di maturazione neurale. Quindi, dal giorno 25 al 28, integrare solo il terreno B27 con un inibitore micromolare della gamma-secretasi. Dal giorno 28 al 39, interrompere l'aggiunta dell'inibitore della gamma-secretasi e continuare la coltura di organoidi neurali umani solo in terreno B27. Dopo tre settimane, gli organoidi neurali sono pronti per l'uso per l'impianto di GIC.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026