Colorazione immunofluorescente di sialoglicoproteine in cellule progenitrici neurali e neuroni

0 visualizzazioni3:27 min • July 8th, 2025

Prendiamo le cellule staminali neurali primarie e progenitrici e i neuroni, che hanno sialoglicoproteine marcate da un reporter di acido sialico.

Aggiungere paraformaldeide per fissare le cellule. Rimuovere la paraformaldeide in eccesso utilizzando il tampone.

Incubare con una miscela di reazione contenente sonde chimiche a base di biotina, un agente riducente e un catalizzatore a base di metallo.

L'agente riducente attiva il catalizzatore, facilitando la biotinilazione delle sialoglicoproteine.

Rimuovere la miscela di reazione e lavare con tampone. Aggiungere streptavidina fluoroforiosa coniugata per legare le sialoglicoproteine biotinilate.

Rimuovere la streptavidina non legata e lavare con tampone. Aggiungi proteine e un detergente non ionico per bloccare siti non specifici e permeabilizzare le cellule.

Rimuovere questa soluzione e incubare con anticorpi primari mirati a specifiche proteine cellulari.

Rimuovere gli anticorpi non legati.

Incubare con anticorpi secondari marcati con fluorofori e un colorante fluorescente per legare gli anticorpi primari legati alle proteine e marcare i nuclei.

Rimuovi le molecole non legate. Lavare con tampone.

Utilizzando la microscopia a fluorescenza, è possibile visualizzare le cellule per visualizzare le sialoglicoproteine fluorescenti e le proteine cellulari.

Per prima cosa, rimuovere gli inserti dalle piastre di cocoltura e aspirare il terreno di coltura dal fondo dei pozzetti. Quindi, lavare una volta le cellule neurali con PBS preriscaldato. Aspirare il PBS dai pozzetti e aggiungere 1 millilitro di paraformaldeide preraffreddata al 4% in PBS a ciascun pozzetto.

Fissare le celle a temperatura ambiente per 10 minuti. Quindi, lavare le celle tre volte con PBS preraffreddato. Aspirare il PBS e aggiungere 1 millilitro di tampone I coniugato con biotina appena preparato in ciascun pozzetto. Incubare a temperatura ambiente per 10 minuti. Successivamente, aspirare il tampone di reazione dai pozzetti e lavare le cellule tre volte con PBS. Aggiungere 1 millilitro di tampone colorante a ciascun pozzetto di cellule e incubare a temperatura ambiente per 30 minuti.

Quindi, aspirare il tampone di colorazione dai pozzetti e lavare le celle tre volte con PBS preraffreddato. Aggiungere 1 millilitro di tampone bloccante a ciascun pozzetto di cellule e incubare a temperatura ambiente per 10 minuti. Rimuovere il tampone di blocco dai pozzetti e aggiungere 1 millilitro di soluzione di anticorpi primari a ciascun pozzetto. Incubare le cellule per una notte a 4 gradi Celsius.

Il giorno successivo, rimuovere la soluzione di anticorpi primari dai pozzetti. Lavare le celle tre volte con PBS preraffreddato. Aspirare il PBS dai pozzetti e aggiungere 1 millilitro di anticorpi secondari a ciascun pozzetto. Incubare le cellule a temperatura ambiente per due ore. Successivamente, aspirare la soluzione dai pozzetti e lavare le celle tre volte con PBS preraffreddato.

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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026