Preparazione di neuroni in coltura per l'analisi ottica di vescicole sinaptiche riciclate

0 visualizzazioni4:53 min • July 8th, 2025

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Iniziare con un vetrino coprioggetti contenente neuroni in coltura che esprimono proteine della membrana delle vescicole sinaptiche, tra cui sinaptofisina e sinaptotagmina-1 marcate con fluorescenza.

Rimuovere il terreno, aggiungere una miscela di tampone di depolarizzazione e anticorpi primari, quindi incubare.

Gli ioni tampone entrano nelle cellule, stimolando la fusione delle vescicole sinaptiche con la membrana, che espone la sinaptotagmina-1.

Gli anticorpi primari si legano selettivamente alla sinaptotagmina-1 esposta.

Eliminare il tampone e lavare con il terreno per rimuovere gli anticorpi non legati.

Introdurre terreno fresco e incubare per facilitare l'internalizzazione della membrana, formando vescicole riciclate con sinaptofisina marcata e sinaptotagmina-1 legata agli anticorpi.

Rimuovere il terreno, fissare le celle e lavare.

Introdurre un tampone bloccante a base di detergente con anticorpi secondari accoppiati a fluoroforo.

Il detergente permeabilizza le cellule, consentendo agli anticorpi secondari di interagire con la sinaptotagmina-1 legata agli anticorpi.

Sollevare il vetrino, lavarlo con acqua e asciugarlo.

Posizionare il vetrino coprioggetti a faccia in giù su un vetrino con un mezzo di inclusione per l'analisi ottica delle vescicole riciclate a doppia marcatura.

Preriscaldare 600 microlitri di 1x tampone di depolarizzazione e 10 millilitri di terreno di coltura cellulare a 37 gradi Celsius nel bagno d'acqua. Aggiungere 1 microlitro di anticorpo anti-SYT1 di topo al tampone di depolarizzazione 1x e vorticare per 10 secondi. Dopo aver rimosso ed eliminato il terreno di coltura cellulare dalle cellule, aggiungere 200 microlitri della miscela di anticorpi di depolarizzazione in ciascun pozzetto.

Incubare la piastra per 5 minuti a 37 gradi Celsius e 5% di CO2 nell'incubatore. Rimuovere ed eliminare la miscela di anticorpi depolarizzanti e lavare le cellule tre volte con terreno di coltura cellulare. Aggiungere 1 millilitro di terreno di coltura cellulare a ciascun pozzetto e incubare per 30 secondi a temperatura ambiente.

Quindi, rimuovere 750 microlitri di terreno e aggiungere la stessa quantità di terreno fresco. Ripeti questo processo tre volte. Quindi, rimuovere e scartare il terreno di coltura cellulare e aggiungere 300 microlitri di PFA al 4% in 1x PBS.

Infine, incubare per 20 minuti a 4 gradi Celsius prima di lavare tre volte per 5 minuti ciascuna con 1x PBS. Diluire l'anticorpo secondario accoppiato al fluoroforo in 200 microlitri di tampone bloccante per ciascun pozzetto a una diluizione da 1 a 1.000. Rimuovere e scartare il PBS 1x da ogni pozzetto contenente i vetrini coprioggetti con i neuroni coltivati.

Aggiungere 200 microlitri di miscela di anticorpi tampone bloccante in ciascun pozzetto e incubare per 60 minuti a temperatura ambiente. Dopo l'incubazione, lavare le cellule tre volte per 5 minuti con 1 millilitro di 1x PBS.

Quindi, aggiungere una goccia da 7 microlitri di terreno di inclusione sul vetrino del microscopio. Rimuovere il vetrino coprioggetti dalla piastra a 24 pozzetti sollevandolo con una cannula e afferrandolo con una pinza. Immergere il vetrino coprioggetti in acqua distillata per rimuovere il PBS e asciugarlo accuratamente toccando un bordo di un fazzoletto molle.

Capovolgere il vetrino coprioggetti sulla gocciolina del mezzo di inclusione in modo che la superficie che trasporta le cellule sia rivolta verso il vetrino del microscopio, incorporando così le cellule nel mezzo di inclusione. Lasciare asciugare le ciabatte sotto la cappa per una o due ore, coprendole per evitare l'esposizione alla luce. Conservare i vetrini essiccati in una scatola per vetrini da microscopio a 4 gradi Celsius.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026