$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Prelevare una piastra multipozzetto contenente cellule di mammifero trasfettate.
Queste cellule esprimono il recettore olfattivo (OR) del neurone olfattivo, un recettore accoppiato a proteine G, insieme a un biosensore cAMP contenente un dominio di legame cAMP fuso con una luciferasi mutante.
Rimuovere il fluido e lavare con tampone per rimuovere il mezzo residuo.
Aggiungere un tampone contenente un substrato del biosensore cAMP. Incubare per facilitare l'assorbimento del substrato nelle cellule.
Utilizzando un lettore di piastre a chemiluminescenza, misurare la luminescenza basale delle cellule.
Aggiungere concentrazioni crescenti dell'odorizzante di prova ai pozzetti, lasciando un pozzetto non trattato come controllo.
L'odorizzante si lega all'OR e innesca una cascata di segnalazione che produce cAMP.
Questo cAMP si lega al dominio di legame del biosensore, attivando la luciferasi, che interagisce con il substrato per emettere luce.
Misura la luminescenza in tempo reale. Un aumento della luminescenza con concentrazioni più elevate di odorizzante indica l'attivazione in sala operatoria da parte dell'odorizzante.
Prima della stimolazione, osservare le cellule trasfettate al microscopio a contrasto di fase per garantire una corretta confluenza dal 50% all'80% per pozzetto prima di rimetterle nell'incubatore. Quindi, preparare il terreno di stimolazione aggiungendo 10 millimolari di HEPES e 5 millimolari di glucosio alla soluzione salina bilanciata di Hank. Scongelare aliquote da 55 microlitri di aliquote di reagenti del substrato del saggio AMP ciclico in tempo reale su ghiaccio.
Preparare la soluzione di equilibratura al 2% mescolando 55 microlitri di reagente del substrato e 2.750 microlitri di terreno di stimolazione. Dopo aver steso uno spesso strato di carta assorbente sul banco, picchiettare delicatamente e ripetutamente la piastra capovolta sui tovaglioli di carta in modo che il mezzo di trasfezione venga assorbito dai tovaglioli di carta. Lavare le cellule pipettando 50 microlitri di terreno di stimolazione in ciascun pozzetto.
Picchiettare delicatamente e ripetutamente il mezzo di stimolazione dalla piastra a 96 pozzetti. Pipettare 25 microlitri di soluzione di equilibrio al 2% in ciascun pozzetto e incubare a temperatura ambiente al buio per 2 ore. Prima della fine del tempo di incubazione, diluire le soluzioni madre odorizzanti scongelate alla concentrazione di lavoro nel mezzo di stimolazione.
Prima dell'aggiunta dell'odorizzante, utilizzare un lettore di piastre a chemiluminescenza per misurare il livello di luminescenza basale della piastra. Rimuovere rapidamente la piastra dal lettore di piastre e aggiungere 25 microlitri di diluizioni odorizzanti a ciascun pozzetto. Quindi, avviare immediatamente la misurazione continua della luminescenza di tutti i pozzetti per 20 cicli entro 30 minuti.