Ottenimento di sospensioni cellulari da tessuti cerebrali ischemici di topo

0 visualizzazioni3:47 min • July 8th, 2025

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Prendi i tessuti cerebrali ischemici di topo perfusi contenenti cellule cerebrali e cellule immunitarie infiltrate.

Tritare i fazzoletti su un colino e risciacquare con tampone.

Centrifugare il filtrato ed eliminare il surnatante.

Risospendere il pellet in una soluzione di enzimi digestivi e trasferirlo in una provetta da microcentrifuga.

Incubare per gli enzimi digestivi per abbattere la matrice extracellulare, allentando le cellule.

Filtrare la sospensione e risciacquare con un tampone contenente DNasi per rimuovere il DNA contaminante.

Quindi, lavare con un tampone privo di DNasi.

Centrifugare il filtrato ed eliminare il surnatante.

Risospendere le celle in un mezzo di gradiente di densità. Quindi, trasferire il contenuto in un tubo nuovo e mescolare. Centrifuga per separare i componenti per densità.

Rimuovere il surnatante contenente mielina e detriti.

Risospendere il pellet in un tampone privo di DNasi. Trasferirlo in una nuova provetta e centrifugare nuovamente.

Scartare il surnatante per garantire una rimozione sufficiente del mezzo del gradiente di densità.

Infine, risospendere le cellule nel tampone per ulteriori analisi.

Usando l'estremità dello stantuffo di una siringa da 5 millilitri, schiacciare i pezzi di tessuto cerebrale attraverso un colino cellulare da 100 micron, risciacquando continuamente il colino con HBSS ghiacciato con calcio e magnesio. Quindi posizionare i fazzoletti omogeneizzati sul ghiaccio.

Quando tutti i campioni sono stati elaborati, far girare le sospensioni cellulari. E scartare con cura i surnatanti. Risospendere i pellet in 1 millilitro di tampone di digestione. Quindi trasferire la sospensione cellulare in un tubo da 2 millilitri.

E incubare le cellule sotto lenta rotazione continua a 37 gradi Celsius. Dopo un'ora, setacciare la sospensione cellulare attraverso un colino cellulare da 70 micron. E sciacquare accuratamente il filtro con 3 millilitri di tampone di lavaggio contenente DNasi. Quindi lavare il colino con 15 millilitri di tampone di lavaggio privo di DNasi. Centrifugare le cellule e scartare il surnatante.

Per rimuovere i detriti cellulari e la mielina, risospendere le cellule in 5 millilitri di terreno a gradiente di densità del 25% a temperatura ambiente e trasferire la sospensione cellulare in una provetta da 15 millilitri. Miscelare accuratamente le cellule e sfumare accuratamente con un pipettaggio delicato ripetuto. Quindi centrifugare la soluzione cellulare.

Al termine della separazione, aspirare accuratamente il rivestimento mielinico e il surnatante senza disturbare il pellet. E risospendere le cellule in 10 millilitri di tampone di lavaggio privo di DNasi. Trasferire le celle in un tubo da 15 millilitri e farle girare di nuovo, rimettendo in sospensione il pellet in 100 microlitri di tampone di lavaggio a freddo.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026