Colorazione immunoistochimica della proteina S-100 nelle sezioni di biopsia di aspirazione rettale umana

0 visualizzazioni3:02 min • July 8th, 2025

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Eseguire sezioni di biopsia di aspirazione rettale umana fissa con antigeni proteici esposti e perossidasi endogene inattivate.

Aggiungere una soluzione bloccante per prevenire il legame di anticorpi non specifici.

Sostituire la soluzione bloccante con anticorpi primari che si legano alla proteina bersaglio delle cellule gliali, S-100, un marcatore della malattia di Hirschsprung.

Rimuovere gli anticorpi non legati e incubare con polimeri di perossidasi per amplificare il segnale.

Lavare per rimuovere il polimero in eccesso. Aggiungere gli anticorpi secondari che si legano ai polimeri enzimatici e agli anticorpi primari.

Rimuovere gli anticorpi non legati e aggiungere un substrato cromogenico.

Le perossidasi reagiscono con il substrato, formando un precipitato colorato.

Risciacquare per rimuovere il precipitato in eccesso.

Aggiungi un colorante per macchiare i nuclei.

Lavare con una soluzione acido-etanola per rimuovere il colorante in eccesso.

Successivamente, disidratare le sezioni utilizzando concentrazioni crescenti di etanolo seguito da xilene.

Infine, montare e osservare al microscopio per visualizzare la colorazione che indica la presenza della proteina bersaglio.

Scartare l'albumina sierica bovina in eccesso e marcare le cellule con 50 microlitri dell'anticorpo primario di interesse a 4 gradi Celsius durante la notte. La mattina successiva, sciacquare i vetrini con tre lavaggi di tre minuti in PBS e aggiungere 50 microlitri di potenziatore di polimeri a ciascun vetrino. Dopo 20 minuti a 37 gradi Celsius, lavare i vetrini tre volte in PBS e aggiungere 50 microlitri di anticorpo B secondario a ciascuna sezione di tessuto.

Dopo 30 minuti a 37 gradi Celsius, risciacquare le sezioni con tre lavaggi di cinque minuti in PBS e aggiungere una goccia di soluzione di lavoro DAB appena preparata a ciascun vetrino. Quando il livello appropriato di colorazione marrone viene rilevato dalla microscopia ottica, sciacquare i vetrini in PBS per cinque minuti e controcolorare i nuclei con una goccia di ematossilina per un minuto.

Rimuovere la macchia in eccesso sotto un filo d'acqua per circa 30-40 secondi, seguito da un lavaggio di 25-30 secondi in PBS fresco. Differenziare i tessuti in acido cloridrico etanolo all'1% per 10 secondi, seguito da un lavaggio PBS di un minuto.

Disidratare i vetrini con immersioni di cinque minuti nell'ordine inverso dell'idratazione ed esporre i vetrini a due cambi di xilene di cinque minuti. Quindi, montare il vetrino coprioggetti utilizzando il montaggio ultraclean e lasciare asciugare i vetrini prima della loro visualizzazione su un microscopio ottico.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026