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Neuroscienze
0 visualizzazioni • 3:55 min • July 8th, 2025
Scongelare una sezione di tessuto cerebrale di ratto congelato.
Aggiungere il tampone e tritare il tessuto. Quindi, trasferirlo in una provetta contenente tampone e mescolare.
Centrifugare la miscela ed eliminare il surnatante.
Aggiungere una soluzione di enzima proteolitico al tessuto e risospenderla utilizzando una pipetta di grande diametro.
Incubare la miscela per abbattere la matrice extracellulare, allentando le cellule neurali.
Centrifugare la miscela ed eliminare il surnatante.
Risospendere i frammenti di tessuto in un tampone refrigerato e pipettarli ripetutamente per dissociare le cellule.
Lasciare che i detriti e le cellule non dissociate si depositino, quindi trasferire la sospensione a cellula singola in un nuovo tubo.
Trasferire le celle in etanolo ghiacciato e mescolare. Incubarli per fissare e permeabilizzare le cellule.
Centrifugare la sospensione ed eliminare il surnatante.
Risospendere le cellule neurali in un tampone freddo per ulteriori analisi.
Per tritare il tessuto, lasciare scongelare i campioni su una lastra di vetro fredda per non più di 1 minuto prima di coprire i campioni con una o due gocce di soluzione tampone A. Quindi, tenendo una lama di rasoio completamente verticale rispetto alla piastra, tritare il tessuto 100 volte in ciascuna direzione ortogonale. Per tritare accuratamente il tessuto, è fondamentale mantenere il tessuto bagnato con il tampone A e seguire i tempi e le indicazioni di macinazione specificati.
È fondamentale rimuovere la maggior parte della sostanza bianca durante la dissezione tissutale e mantenere il tessuto coperto dal tampone A, per migliorare l'efficienza della macinazione e mantenere la salute delle cellule.
Quando il tessuto è stato accuratamente lavorato, utilizzare la lama di rasoio per trasferire i pezzi in una provetta da microcentrifuga contenente 1 millilitro di tampone freddo A e capovolgere la provetta da tre a cinque volte per immergere tutto il tessuto tritato nella soluzione. Per dissociare i frammenti di tessuto in una singola sospensione cellulare, pellettare i campioni mediante centrifugazione.
Scartare il surnatante, quindi aggiungere lentamente 1 millilitro di soluzione enzimatica fredda appena scongelata lungo la parete interna del microtubo e utilizzare una pipetta di grande diametro per aspirare e dosare immediatamente l'intero pellet quattro volte per disperdere i pezzi di tessuto tritati. Quindi, capovolgere rapidamente la microprovetta per evitare che i pellet si attacchino al fondo della provetta e incubare il campione con miscelazione end-over-end per 30 minuti a 4 gradi Celsius.
Al termine della digestione, centrifugare nuovamente la provetta e aggiungere 0,6 millilitri di tampone freddo A alle cellule. Utilizzando lo stesso puntale della pipetta, aspirare e dosare immediatamente i pellet cinque volte, quindi selezionare una pipetta di vetro da 1,3 millimetri e utilizzarla per titolare delicatamente i campioni 10 volte.
Posizionare il campione sul ghiaccio per 2 minuti per consentire ai detriti e alle cellule non dissociate di depositarsi sul fondo della provetta. Quindi, trasferire il surnatante in un nuovo tubo da 15 millilitri. Quindi, trasferire 800 microlitri di cellule dalla prima provetta di surnatante raccolto in ciascuna delle prime due provette di etanolo.
Capovolgere le provette per mescolare i campioni. Quindi posizionare i campioni sul ghiaccio per 15 minuti mescolando per inversione ogni 5 minuti. Al termine dell'incubazione, centrifugare le cellule. Quindi, toccando solo la parete del microtubo, utilizzare una micropipetta per rimuovere lentamente tutti i microlitri di ciascun surnatante tranne gli ultimi 50 litri.
In questo articolo viene descritto un protocollo per l'isolamento di cellule neurali dal tessuto cerebrale di ratto. Il processo prevede il trinciamento del tessuto, la digestione enzimatica e la dissociazione cellulare per ottenere una sospensione di singole cellule da sottoporre ad ulteriori analisi.
Ilottenimento di una sospensione monocellulare di alta qualità da tessuto cerebrale di ratto congelato permette applicazioni successive come la citometria in flusso e l'analisi dell'espressione genica, supportando la validazione degli obiettivi e la riduzione del rischio meccanicistico nella scoperta di farmaci nel campo delle neuroscienze. Questo metodo fornisce un flusso di lavoro riproducibile per preparare sistemi neurali biologicamente rilevanti a partire da tessuti archiviati o conservati in biobanca, facilitando lo sviluppo di saggi e campagne di screening fenotipico. Garantendo la vitalità cellulare e riducendo la variabilità del campione, il protocollo aumenta l'affidabilità predittiva delle decisioni nelle fasi iniziali della scoperta.
Questo metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del bersaglio allo sviluppo del saggio fino agli studi meccanicistici preclinici, in particolare quando si lavora con campioni di tessuto neurale congelati o archiviati.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026