Esecuzione dell'ibridazione in situ a doppia fluorescenza per rilevare l'espressione genica nelle sezioni cerebrali di topo

0 visualizzazioni4:06 min • April 28th, 2025

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Prendi una sezione del cervello di topo fissata chimicamente.

Aggiungere una miscela di ibridazione contenente un agente di permeabilizzazione e sonde di RNA marcate con FITC o DIG.

Incubare per consentire la permeabilizzazione cellulare e l'ingresso della sonda.

Le sonde si legano a sequenze complementari sull'mRNA MBP, un marcatore di riferimento espresso ubiquitariamente negli oligodendrociti, o mRNA ASPA, il bersaglio.

Lavare per rimuovere le sonde non legate.

Aggiungere un buffer di blocco per impedire il legame di anticorpi non specifici.

Introdurre gli anticorpi anti-FITC coniugati con HRP che hanno come bersaglio la sonda marcata con FITC.

Lavare, quindi aggiungere la FITC-tirammide.

L'HRP ossida la FITC-tiramide in una forma altamente reattiva che si lega alle proteine vicine, amplificando il segnale di fluorescenza.

Lavare e reintrodurre il tampone di blocco.

Aggiungere anticorpi anti-DIG coniugati con fosfatasi alcalina che hanno come bersaglio la sonda marcata con DIG.

Lavare e applicare la soluzione Fast Red.

La fosfatasi alcalina defosforila Fast Red, producendo un precipitato fluorescente.

Visualizzare al microscopio a fluorescenza.

La co-localizzazione dei segnali Mbp e ASPA indica l'espressione di ASPA negli oligodendrociti.

Diluire le due sonde in tampone di ibridazione, preriscaldato a 65 gradi Celsius, e mescolare bene. Applicare 300 microlitri di miscela di ibridazione su ogni vetrino e coprire con un vetrino coprioggetti cotto al forno. Successivamente, incubare i vetrini per una notte a 65 gradi Celsius in una camera umidificata.

Il giorno successivo, trasferire i vetrini in un barattolo Coplin contenente un tampone di lavaggio preriscaldato e lavare i vetrini per 30 minuti, due volte a 65 gradi Celsius. Successivamente, lavare i vetrini per 10 minuti tre volte con la soluzione di lavaggio MABT a temperatura ambiente.

In questo passaggio, usa una penna idrofobica per disegnare cerchi attorno alle sezioni di tessuto. Quindi, incubare i vetrini per un'ora a temperatura ambiente con il tampone di blocco ISH in una camera umidificata. Successivamente, incubare i vetrini per una notte a 4 gradi Celsius con un anticorpo anti-FITC coniugato con perossidasi di rafano.

Quindi, posizionare i vetrini in un barattolo Coplin contenente PBST. Lavateli in PBST tre volte per 10 minuti ogni volta e sostitueteli ogni volta con PBST fresco. Successivamente, aggiungere la tiramide fluorescente ai vetrini e lasciarli per 10 minuti a temperatura ambiente. Metti i vetrini in un barattolo Coplin e lavali in PBST per 10 minuti tre volte.

Successivamente, incubare i vetrini con il tampone bloccante ISH per un'ora a temperatura ambiente. Quindi, incubare i vetrini per una notte a 4 gradi Celsius con un anticorpo anti-DIG coniugato con fosfatasi alcalina. Dopodiché, lavateli con MABT tre volte per 10 minuti ogni volta. Successivamente, lavare i vetrini due volte con Tris-HCL 0,1 molare a pH 8,2 per cinque minuti a temperatura ambiente.

Filtrare la soluzione rossa veloce e incubare i vetrini a 37 gradi Celsius con la soluzione rossa veloce in una camera umidificata. Poiché il tempo per uno sviluppo ottimale varia, controllare regolarmente i vetrini con un microscopio a fluorescenza per monitorare la formazione di precipitato. Quindi, lavateli tre volte con PBST per 10 minuti ogni volta.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026