Colorazione in immunofluorescenza di tessuto fibrovascolare malato derivato da pazienti con inclusione in gel

0 visualizzazioni4:31 min • April 28th, 2025

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Prendi il tessuto fibrovascolare malato rigenerato incorporato in gel di fibrina reidratato, fissato e permeabilizzato derivato dal paziente. Questo tessuto contiene strutture neovascolari irregolari con cellule endoteliali e periciti.

Trattare il tessuto con una soluzione bloccante per prevenire il legame degli anticorpi non specifici.

Incubare con anticorpi primari che hanno come bersaglio le proteine di superficie sulle cellule endoteliali e sui periciti.

Sciacquare con tampone per rimuovere gli anticorpi non legati, quindi incubare nel tampone.

Dopo il lavaggio del tampone, incubare con anticorpi secondari coniugati con colorante fluorescente per legarsi agli anticorpi primari.

Lavare con tampone per rimuovere gli anticorpi in eccesso e incubare in tampone.

Dopo il lavaggio del tampone, aggiungere un colorante nucleare per colorare i nuclei delle cellule. Risciacquare con tampone e acqua deionizzata per rimuovere il colorante non legato.

Trasferire il tessuto su un vetrino da microscopio.

Applicare i supporti di montaggio e sigillare con un vetrino coprioggetti contenente supporti di montaggio a indurimento rapido.

Dopo l'asciugatura all'aria, conservare il vetrino a bassa temperatura. Quindi, visualizza il tessuto sotto un microscopio a epifluorescenza per visualizzare la disposizione spaziale delle cellule endoteliali e dei periciti all'interno delle strutture neovascolari.

Inclina la piastra su un supporto e incuba le goccioline in 500 microlitri di soluzione bloccante per due ore a temperatura ambiente. Preparare la miscela di anticorpi primari secondo il protocollo di testo.

Quindi usa una spatola arrotondata per trasferire le goccioline su una piastra rotonda a fondo 96 pozzetti. Incubare le goccioline in 30 microlitri di miscela di anticorpi primari per gocciolina durante la notte a 4 gradi Celsius. Il giorno successivo, trasferire le goccioline in una piastra a 12 pozzetti contenente 2 millilitri di soluzione di lavaggio per pozzetto. Sciacquare le goccioline con tre lavaggi di 5 minuti. Quindi lavare le goccioline con nove lavaggi da 30 minuti.

Il giorno seguente, sciacquare le goccioline tre volte con PBS. Preparare la miscela di anticorpi secondari coniugati fluorofori appropriata secondo il protocollo di testo. Trasferire le goccioline su una piastra a 96 pozzetti a fondo tondo, come dimostrato in precedenza. E incubare la piastra con 30 microlitri di miscela di anticorpi secondari per quattro ore a temperatura ambiente, al riparo dalla luce.

Dopo 4 ore, trasferisci le goccioline in una piastra a 12 pozzetti contenente 2 millilitri di soluzione di lavaggio per pozzetto. Per prima cosa, risciacquare le goccioline con tre lavaggi di 5 minuti. Quindi lavare le goccioline con quattro lavaggi da 30 minuti.

Il giorno successivo, sciacquare le goccioline cinque volte con la soluzione di lavaggio per 30 minuti e tre volte con PBS per 30 minuti. Il giorno successivo, trasferire le goccioline in una piastra a 96 pozzetti a fondo rotondo, come precedentemente dimostrato. Controcolorare le goccioline con la colorazione nucleare Hoechst per 30 minuti a temperatura ambiente. Trasferire le goccioline in una piastra a 12 pozzetti contenente 2 millilitri di PBS per pozzetto. E risciacquare tre volte con PBS.

Quindi, applica uno strato stretto di mezzo di montaggio a indurimento rapido lungo i bordi di un vetro di copertura quadrato. E lasciarlo asciugare per un minuto. Quindi sciacquare una goccia immergendola in un pozzetto di una piastra a 12 pozzetti contenente acqua deionizzata. E trasferire la gocciolina su un vetrino da microscopio.

Successivamente, eroga 15 microlitri di mezzo di montaggio anti-sbiadimento non indurente sulla gocciolina. Posizionare delicatamente il vetro di copertura sulla goccia con il mezzo di montaggio rivolto verso la diapositiva. E lasciarlo calmare.

Lascia asciugare le diapositive per due ore a temperatura ambiente e conservale a 4 gradi Celsius durante la notte. Infine, è possibile visualizzare i vetrini con un microscopio a epifluorescenza verticale dotato di funzione di sezionamento ottico con obiettivo 20x o 40x.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026