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Prelevare un vetrino contenente criosezioni di tessuto coronale di ratto fisse e permeabilizzate.
Delinea le sezioni con una penna idrofobica per creare un ambiente di colorazione controllato.
Trasferire le sezioni in una camera di umidità per evitare l'essiccazione dei reagenti e dei tessuti durante le fasi successive.
Trattare le sezioni con proteine sieriche per bloccare i siti di legame non specifici.
Risciacquare con tampone per rimuovere le proteine del siero in eccesso.
Incubare con anticorpi primari che hanno come bersaglio proteine specifiche su microglia e neuroni.
Lavare con tampone per rimuovere gli anticorpi primari non legati.
Incubare con anticorpi secondari coniugati con fluorofori che si legano agli anticorpi primari.
Lavare con tampone per rimuovere gli anticorpi secondari non legati. Quindi, risciacquare con acqua bidistillata.
Applicare un mezzo di montaggio acquoso per proteggere il segnale fluorescente, posizionare un vetrino coprioggetti e sigillarlo.
Visualizzare le sezioni al microscopio a fluorescenza per visualizzare microglia e neuroni immunomarcati.
Asciugare i bordi dei vetrini e creare un bordo idrorepellente attorno al bordo del vetrino con un pennarello, per garantire una copertura uniforme del liquido e ridurre gli effetti dei bordi. Successivamente, bloccare le sezioni aggiungendo 300 microlitri di siero in PBS a ciascun vetrino. Il siero dovrebbe provenire dalla specie in cui viene allevato l'anticorpo secondario. In questo caso è stato utilizzato il siero d'asino.
Assicurarsi che la soluzione bloccante si estenda fino al bordo del vetrino e copra completamente il tessuto per evitare macchie irregolari. Posizionare i vetrini in una camera di umidità per incubare a temperatura ambiente, per un'ora. Durante l'incubazione, preparare gli anticorpi primari. Diluire l'anticorpo IBA1, da 1 a 5.000 e l'anticorpo panneuronale, da 1 a 500 in una miscela di siero d'asino all'1% in PBS.
Rimuovere la soluzione bloccante e aggiungere 300 microlitri della soluzione anticorpale, che contiene entrambi gli anticorpi di interesse. Posizionare tutti i vetrini in una camera di umidità e incubarli per una notte a 4 gradi Celsius. La mattina seguente, lavare i vetrini tre volte in PBS per cinque minuti ciascuno.
Preparare la miscela di anticorpi secondari fluorescenti, diluendo entrambi da 1 a 250, in siero d'asino all'1% in PBS. Aggiungere 300 microlitri di miscela su ogni vetrino. E posizionare i vetrini in una camera di umidità leggera e ermetica per 60 minuti a temperatura ambiente. Quindi lavare i vetrini tre volte in PBS per cinque minuti ciascuno. E infine, sciacquateli in doppia acqua distillata. Proteggere le diapositive dalla luce durante il lavaggio in PBS.
Aggiungere alcune gocce di un mezzo di montaggio acquoso, che aiuta a preservare l'intensità del segnale di fluorescenza su ciascun vetrino. Quindi applicare il vetrino coprioggetti e rimuovere eventuali bolle d'aria rimanenti utilizzando un applicatore con punta di cotone. Per sigillare il supporto di montaggio sulle diapositive ed evitare che le sezioni si secchino, rivestire i bordi con smalto per unghie. I vetrini vengono lasciati asciugare in piano per un'ora in una scatola protetta dalla luce, prima di essere conservati in un contenitore leggero e ermetico, avvolti in un foglio di alluminio a 4 gradi centigradi.