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Inizia con neuroni ipotalamici primari di topo wild-type e CCR5-knockout coltivati su vetrini coprioggetti rivestiti di poli-D-lisina in una piastra multi-pozzetto.
Questi neuroni esprimono il trasportatore di glucosio-4 (GFP-GLUT4) marcato con una proteina fluorescente verde (GFP-GLUT4) nel citoplasma.
Trasferisci i vetrini coprioggetti su vetrini e rimuovi delicatamente il terreno in eccesso per garantire stabilità durante l'acquisizione dell'immagine.
Posiziona un vetrino sul tavolino del microscopio di deconvoluzione con il vetrino coprioggetti rivolto verso il basso.
Visualizza i neuroni sotto l'illuminazione a campo chiaro, quindi trattali con la chemochina CCL5 e l'insulina in sequenza.
Passa all'illuminazione a fluorescenza per identificare i neuroni bersaglio che esprimono GFP-GLUT4 e regola i parametri di imaging per catturare immagini fluorescenti dal vivo.
Nei neuroni wild-type, insulina e CCL5 si legano rispettivamente al recettore dell'insulina e al CCR5, attivando le vie di segnalazione a valle che guidano la traslocazione della membrana GFP-GLUT4.
Nei neuroni knockout CCR5, CCL5 non riesce a legarsi, con conseguente riduzione della traslocazione GFP-GLUT4.
Cattura le immagini e applica un algoritmo di deconvoluzione per ridurre la luce fuori fuoco, migliorando la chiarezza e la risoluzione dell'immagine.
Per preparare le cellule per l'imaging dal vivo, rimuovere con cura i vetrini coprioggetti con i neuroni usando una pinza e posizionarli sul vetrino con cautela. Quindi rimuovere il terreno in eccesso con salviette delicate piegandole due volte e posizionandole con cura sul vetrino coprioggetti senza spostarlo.
È essenziale rimuovere la quantità eccessiva di terreno per evitare movimenti non necessari sul vetrino coprioggetti.
Successivamente, trattare i campioni di cellule selezionati con CCL5 a 10 nanogrammi per millilitro o insulina a 10 unità per millilitro per un minuto. Successivamente, aggiungere 1,5 microlitri di insulina diluita sul bordo dei vetrini. Quindi, aggiungere olio da immersione su un obiettivo da 1,52 NA con ingrandimento 60x.
Successivamente, posizionare i vetrini coprioggetti sul tavolino del microscopio a deconvoluzione con i vetrini rivolti verso il basso e fissati correttamente. Utilizzare l'illuminazione a campo chiaro o a fluorescenza per identificare le cellule bersaglio. Successivamente, regolare la messa a fuoco fino a quando le cellule target non possono essere osservate chiaramente. Non spostare la lente dell'obiettivo al di fuori dell'area del vetrino coprioggetti per evitare inutili graffi
.
Quindi, identificare GFP-GLUT4 dal segnale GFP. Quindi identificare le cellule target desiderate per l'acquisizione dell'immagine. Successivamente, impostare i parametri sperimentali appropriati su ciascuna cella target, tra cui il numero di pixel, la lunghezza d'onda di eccitazione, la percentuale di trasmissione, il tempo di esposizione, lo spessore della pila, l'intervallo di tempo e il tempo totale di imaging. Regolare il parametro di esposizione su circa 2.000-3.000 conteggi per ottenere la massima intensità di pixel.
Per ridurre al minimo il fotosbiancamento a fluorescenza, ridurre il più possibile la percentuale di trasmissione della luce di eccitazione, mantenendo il tempo di esposizione inferiore a 1 secondo. Impostare il limite superiore e inferiore dello z-stack su ciascuna cella target spostando il tavolino del microscopio fino a quando la parte superiore e inferiore della cella target non sono leggermente sfocate.