Imaging confocale del movimento mitocondriale all'interno di oligodendrociti in colture organotipiche di fette cerebrali

0 visualizzazioni4:11 min • April 28th, 2025

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Inizia con una configurazione di una camera da bagno per microscopio confocale con una soluzione di imaging circolante e temperatura controllata.

Prendi una membrana polimerica idrofila contenente una fetta di cervello di topo organotipica in cui gli oligodendrociti sono stati trasdotti per esprimere una proteina fluorescente rossa specifica per i mitocondri e una proteina fluorescente verde specifica per il citosol.

La doppia fluorescenza permette una chiara visualizzazione delle dinamiche mitocondriali all'interno del citosol dell'oligodendrocita.

Immergi la fetta al centro della vasca e fissala con un'ancora per arpa.

Abbassa l'obiettivo e seleziona un oligodendrocita sano per la scansione.

Regola la potenza del laser per ridurre al minimo la tossicità cellulare e il fotosbiancamento.

Imposta i parametri del microscopio e poi registra immagini time-lapse di mitocondri marcati in modo fluorescente.

Cattura immagini z-stack a diverse profondità per ottenere una visione tridimensionale ad alta risoluzione dell'intera cella.

Elabora le immagini per visualizzare il movimento mitocondriale all'interno dell'oligodendrocita.

Usa le pinze per trasferire i coriandoli con la fetta dalla capsula di Petri alla parte superiore della vasca. Quindi posizionare le due punte delle pinze su ciascun lato dei coriandoli in modo che tocchino i coriandoli senza toccare la fetta. E spingi i coriandoli attraverso la soluzione fino al fondo della vasca. Centrare i coriandoli al centro della vasca.

Usa le pinze per posizionare l'ancora di fissaggio o l'arpa sopra i coriandoli senza toccare la fetta. Quindi riaccendere la pompa peristaltica. Abbassa l'obiettivo fino al campione. Quindi utilizzare gli oculari e la lampada fluorescente per trovare rapidamente un oligodendrocita dall'aspetto sano con espressione proteica fluorescente.

Usa la funzione live nel software per identificare la cella sullo schermo. E scegli l'area di interesse. Qui, verrà visualizzata un'area contenente diversi processi primari e una guaina mielinica. Ingrandisci il campo di interesse. In genere si ottiene un'immagine con una dimensione dei pixel compresa tra 0,14 e 0,30 micron.

Seleziona lo strumento Regioni e disegna un rettangolo attorno all'area. Scegliere l'opzione per eseguire la scansione solo della regione selezionata. Il tempo di scansione e quindi l'esposizione al laser vengono ridotti scansionando solo la regione selezionata.

Regola la potenza e il guadagno del laser per ottenere una buona visione dei mitocondri. Utilizzare una bassa potenza del laser e un guadagno elevato per evitare lo sbiancamento durante l'imaging dal vivo. Se necessario, regolare l'offset digitale.

Riduci al minimo il tempo di scansione selezionando una velocità di scansione elevata. Impostare la frequenza e la durata della registrazione timelapse per l'imaging mitocondriale e gli oligodendrociti. Acquisisci immagini ogni due secondi per un totale di 20 minuti. Avvia la registrazione time lapse.

Il flusso continuo della soluzione può causare il movimento della fetta. Vale la pena dedicare un po' di tempo a ridurre al minimo questo movimento regolando l'ingresso e l'uscita della vasca. È inoltre possibile ridurre la velocità della pompa.

Monitora continuamente lo schermo durante l'imaging time lapse, poiché di solito si verificano ancora piccoli cambiamenti nella messa a fuoco. Regolare la messa a fuoco secondo necessità. Dopo l'imaging time lapse, acquisire uno Z-stack dell'intera cella, per la futura identificazione della cellula e del processo di imaging.

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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026