Imaging a fluorescenza della dinamica sinaptica del calcio in un modello in vitro di sclerosi laterale amiotrofica

0 views • 3:18 min • June 17th, 2025

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Prendiamo i neuroni corticali dei roditori primari coltivati su un piatto rivestito con fondo di vetro contenente terreni.

Queste cellule esprimono una proteina geneticamente codificata associata alla SLA e un biosensore di calcio.

Sostituire il terreno con un tampone a basso contenuto di cloruro di potassio.

Incubare per mantenere l'attività neuronale a riposo e i livelli basali di calcio.

Montare la piastra su un tavolino per microscopio confocale e posizionare il tubo di perfusione.

Utilizzando l'illuminazione a campo chiaro, concentrati sui neuroni, quindi passa all'imaging a fluorescenza.

Utilizzando il laser del microscopio, eccitare il biosensore e registrare l'emissione di fluorescenza per determinare i livelli di calcio intracellulare di base.

Quindi, perfondere il piatto con un tampone di cloruro ad alto contenuto di potassio.

L'alta concentrazione di potassio depolarizza i neuroni, aprendo i canali del calcio voltaggio-dipendenti ai terminali presinaptici. Ciò consente l'afflusso di calcio, che avvia l'attività sinaptica neuronale.

L'aumento del calcio intracellulare si lega al biosensore, provocando un cambiamento conformazionale che migliora la fluorescenza.

Continua a registrare la fluorescenza per misurare in tempo reale i cambiamenti nei livelli intracellulari di calcio, rivelando l'attività sinaptica neuronale.

48 ore dopo la trasfezione con GCaMP6m, incubare i neuroni corticali primari dei roditori con ACSF a basso contenuto di cloruro di potassio per 15 minuti. Quindi montare la parabola sulla piattaforma di imaging e visualizzare la fluorescenza GCaMP6m utilizzando un filtro FITC e un obiettivo 20 volte o 40 volte. Dopo aver selezionato il campo di imaging e aver attivato la messa a fuoco perfetta, scattare una singola immagine fissa con FITC a campo chiaro e canali marcatori di fluorescenza per contrassegnare i confini neuronali.

Successivamente, avviare "Esegui ora" nel software di acquisizione ed eseguire la registrazione basale per tre-cinque minuti. Quindi perfondere ACSF contenente 50 millimolari di cloruro di potassio nei neuroni come dimostrato in precedenza e registrare per cinque minuti. Quando l'acquisizione dell'immagine si interrompe, salvare l'esperimento e procedere all'analisi dei dati utilizzando il software confocale.

Per l'analisi delle immagini, aprire le immagini time-lapse e il software confocale e allineare le immagini facendo clic su Immagine, quindi su Elaborazione, quindi su Allinea documento corrente. Quindi seleziona Allinea al primo fotogramma. Seleziona le regioni di interesse lungo i neuriti utilizzando lo strumento di selezione ROI e contrassegna anche un ROI che rappresenta l'intensità della fluorescenza di fondo. Successivamente, avviare la funzione di misurazione dal pannello di misurazione del tempo per misurare la fluorescenza grezza nel tempo per le ROI selezionate. Dopo la misurazione, esportare le intensità di fluorescenza grezze nel software per fogli di calcolo.

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Last updated: 1 August 2026