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Neuroscienze
0 visualizzazioni • 3:06 min • June 17th, 2025
Iniziare con larve di pesce zebra transgenico anestetizzate in una camera di montaggio contenente un tampone fisiologico ossigenato sotto uno stereomicroscopio.
Il cervelletto nel cervello contiene neuroni di Purkinje geneticamente modificati che esprimono proteine citoplasmatiche fluorescenti.
Rimuovere il terreno in eccesso, quindi aggiungere l'agarosio fuso per immobilizzare le larve per un imaging stabile.
Orienta il lato dorsale delle larve verso l'alto per visualizzare il cervelletto.
Una volta solidificato, tagliare l'agarosio in eccesso. Usando un ago di vetro, asportare la pelle pigmentata sovrastante il cervello per esporla.
Capovolgere il blocco di agarosio su una camera di imaging contenente agarosio fuso per l'imaging al microscopio invertito.
Aggiungere il tampone fisiologico per preservare la funzione neuronale.
Posizionare la camera sotto un microscopio confocale invertito. Applicare la luce di eccitazione per eccitare le proteine fluorescenti, consentendo la visualizzazione dei neuroni marcati.
Le cellule pigmentate della pelle, se non rimosse, si disperdono e assorbono la luce di eccitazione, riducendo l'intensità della fluorescenza.
La rimozione della pelle migliora la penetrazione della luce per aumentare l'intensità della fluorescenza, facilitando la visualizzazione dei neuroni.
Per incorporare la larva, utilizzare una pipetta Pasteur per trasferire la larva anestetizzata in una camera di montaggio sotto uno stereomicroscopio. Se una larva è ancora in grado di muoversi, non usare il pesce per l'esperimento fino a quando i pesci non sono completamente in grado di muoversi. Quando la larva è immobile, rimuovere con cura il terreno in eccesso e aggiungere immediatamente almeno 1 millilitro di agarosio a basso punto di fusione sulla larva.
Orientare il pesce zebra con la regione dorsale rivolta verso l'alto il più vicino possibile alla superficie dell'agarosio. Se le larve verranno visualizzate utilizzando un microscopio invertito, dopo la solidificazione, tagliare l'agarosio contenente la larva in un piccolo blocco cuboide. Per esporre il cervello per l'imaging, tagliare l'agarosio in eccesso sulla regione cerebrale di interesse, se necessario, e utilizzare un ago di vetro per praticare una piccola incisione attraverso la pelle vicino ma non sopra la regione di interesse, senza penetrare troppo in profondità nel tessuto.
Muovendo a malapena l'ago appena sotto la superficie della pelle, continuare a fare con cura tagli molto piccoli intorno alla regione di interesse fino a quando la pelle sopra la regione di interesse può essere rimossa o spinta da parte. Quando il tessuto è stato rimosso da tutti gli embrioni, aggiungere una piccola goccia di agarosio a basso punto di fusione a una camera di imaging precedentemente preparata di un microscopio invertito e utilizzare una piccola spatola per capovolgere il blocco di agarosio cuboide di 180 gradi sulla goccia di agarosio nella camera di imaging. Quando l'agarosio si è solidificato, riempire la camera di imaging con ACSF fresco e iniziare l'imaging della larva.
In questo articolo viene descritto un metodo per l'immagine di neuroni di Purkinje geneticamente modificati in larve di pesce zebra transgenico. La tecnica prevede l'anestesia delle larve, il loro immobilizzo in agarosio e l'utilizzo della microscopia confocale per visualizzare l'attività neuronale.
L'imaging in vivo dei cervelli di larve di pesce zebra permette la visualizzazione diretta di neuroni marcati geneticamente, supportando la validazione degli obiettivi nella scoperta nel campo delle neuroscienze. Questo approccio aumenta la fiducia predittiva fornendo dati quantitativi e riproducibili sulla struttura e sulla funzione neuronale in un sistema rilevante per la malattia. Il metodo favorisce la riduzione del rischio meccanicistico nelle fasi iniziali del processo di scoperta, consentendo l'osservazione in tempo reale dell'attività dei neuroni cerebellari in tessuto intatto e vivo.
Il metodo si inserisce nel percorso iniziale della scoperta, supportando la verifica delle ipotesi nella validazione del bersaglio e consentendo lo sviluppo di saggi per lo screening di composti successivi in neurofarmacologia.
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Ultimo aggiornamento: 29 agosto 2026