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Iniziare con fibre muscolari murine fissate chimicamente e permeabilizzate posizionate nei pozzetti di una piastra multipozzetto.
Incubare in una soluzione bloccante per ridurre al minimo il legame di anticorpi non specifici.
Aggiungere anticorpi primari che hanno come bersaglio una proteina presinaptica espressa alla giunzione neuromuscolare o NMJ.
Lavare con tampone per rimuovere gli anticorpi non legati.
Incubare con anticorpi secondari coniugati con fluorofori che hanno come bersaglio gli anticorpi primari e una neurotossina coniugata con fluorofori che si lega ai recettori postsinaptici dell'acetilcolina.
Lavare con tampone per rimuovere i reagenti non legati.
Posizionare le fibre su un vetrino con supporti di montaggio, posizionare un vetrino coprioggetti e fissarle con magneti cilindrici per appiattire le fibre.
Iniziare l'imaging utilizzando un microscopio confocale-STED.
Dopo l'illuminazione laser, le proteine marcate diventano fluorescenti.
La
microscopia confocale non riesce a risolvere con chiarezza le strutture NMJ più fini a causa della sua risoluzione limitata e della diffusione della fluorescenza.
Al contrario, la microscopia STED utilizza un laser a deplezione per sopprimere la diffusione della fluorescenza, consentendo una chiara visualizzazione NMJ.
Dopo l'eutanasia, inizia a stuzzicare i muscoli tibiale anteriori in piccoli fasci di fibre di circa 1 millimetro di larghezza utilizzando due pinze seghettate fini. Quindi trasferire questi fasci muscolari in una piastra a 24 pozzetti contenente l'1% di Triton X-100 preparato in PBS e lasciarlo agitare delicatamente per un'ora a temperatura ambiente o cinque ore a 4 gradi Celsius.
Dopo aver lavato i campioni tre volte per 5 minuti con PBS a temperatura ambiente, incubare i campioni con una soluzione bloccante composta da BSA al 4% preparata in PBS con Triton X-100 all'1% per quattro ore a 4 gradi Celsius sotto leggera agitazione. Quindi incubare i campioni durante la notte con la stessa soluzione bloccante contenente anticorpi monoclonali primari contro il neurofilamento M o la glicoproteina 2 della vescicola sinaptica per marcare rispettivamente i terminali degli assoni presinaptici o le zone attive.
Il giorno seguente, lavare i fasci muscolari etichettati tre volte per 5 minuti con PBS sotto leggera agitazione. Quindi incubarli con anticorpi secondari appropriati ponendoli su uno shaker per due ore a temperatura ambiente. Dopo aver lavato nuovamente i fasci muscolari, posizionarli su uno scivolo con mezzo di montaggio. Quindi posizionare un vetrino coprioggetti di vetro di grado 1,5 sulla parte superiore, seguito da magneti cilindrici su entrambi i lati del vetrino per applicare pressione e appiattire i muscoli.
Per acquisire immagini utilizzando il microscopio confocale, avviare il software del microscopio e scegliere Macchina come modalità di configurazione e raccogliere pile di immagini delle giunzioni neuromuscolari in ciascun gruppo sperimentale secondo le impostazioni menzionate nel manoscritto del testo. Al termine della sessione, fare clic su Apri in visualizzatore 3D e scegliere una giunzione neuromuscolare rappresentativa di un gruppo sperimentale per visualizzare l'etichettatura 3D.