Name: Rotazione Cultura sistemi cellulari per colture cellulari umane: cellule del trofoblasto umano come modello (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-18T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 54 s
Description: Impara a coltivare cellule del trofoblasto umano in 3D con il sistema RCCS per studiare differenziazione cellulare e espressione genica. Questo metodo migliora la riproduzione delle condizioni fisiologiche in vivo rispetto alle colture monostrato tradizionali.

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Questo lavoro è stato sostenuto dal National Institutes of Health statunitensi concedere NIH / NICHD # HD051998 (per CAM).

1. Collagene Bead Preparazione <ol><li> Prima di EVTS di carico per 3-D di coltura cellulare, si ha la necessità di preparare il Cytodex-3 perle microcarrier: <ol><li> Pesare la quantità appropriata di Cytodex-3 perline richieste per l'esperimento. Questo protocollo è stato adattato per la nave 10ml RCC, in cui 0.05g di perline sono necessari. Per una nave da 50 ml RCC, scala di conseguenza. In un tubo 50mL autoclavabile conica, miscelare 250 mg Cytodex-3 perle con fosfato 12mL soluzione tamponata Dulbecco (DPBS). Questa quantità è sufficiente per 5 vasi RCC. </li></ol></li><li> Garantire un adeguato volume è presente nel tubo conico, come il processo in autoclave si tradurrà in evaporazione. Liberamente tappo del tubo e autoclave per 10 min a 110 ° C. </li><li> Rimuovere il tubo conico al completamento del ciclo di autoclave e permettere al Cytodex-3 tallone soluzione per il raffreddamento. </li><li> Dopo che il tubo conico è raffreddata a temperatura ambiente, utilizzare una tecnica sterile per portare il volume complessivo a 12.5mL usando 1X DPBS. </li><li> Cap e conservare il preparato Cytodex-3 perline a temperatura ambiente. Lasciare le perline pronti a gonfiarsi e raffreddare a temperatura ambiente prima dell'uso. La preparazione di sopra di Cytodex-3 perle fornirà per cinque vasi da 10 ml RCC. Abbiamo osservato che lo stoccaggio prolungato di Cytodex-3 perline a temperatura ambiente si tradurrà in un peggioramento delle prestazioni, come il collagene destabilizzerà dopo circa un mese. Cytodex-3 perle variano nel formato 133-215 micron. </li></ol> 2. Preparazione dei media <ol><li> Preparare 1L di RCC ottimizzato GTSF-2 media (adattato da 22), che consiste di 40% MEM alfa, oltre a integratori e il 60% L-15 Leibovitz media (adattato da 22). In primo luogo, preparare 400mL nel volume totale di MEM alfa integrato con: Bicarbonato di sodio 21.2mM 0,06% peptone Fruttosio 0,7 mm Galattosio 1,4 mm Glucosio 5,6 mm 1% HEPES 1% di L-glutammina 0,5% ITS 10% FBS </li><li> Per preparare una soluzione madre di ITS, si sciolgono in 5 ml sterili acidificato H 2 O preparato con l'aggiunta di acido acetico glaciale (circa 0,05 ml). Swirl per sciogliere, seguire con 45ml di acqua sterile. </li><li> Pesare abbastanza L-15 Leibovitz polvere per 600ml di media sciogliendo in tessuto-cultura di grado H 2 O. </li><li> Portare il volume totale di terreno di coltura cellulare per 1L con L-15 di media Leibovitz. Filtro-sterilizzare e conservare a 4 ° C al buio. Aggiungere 1% penicillina-streptomicina singolarmente a ciascuna aliquota del supporto utilizzato. </li><li> Molte formulazioni supporti diversi GTSF-2 media sono stati testati con successo nel RCC. I singoli laboratori devono decidere da soli quale mezzo è ottimale per l'esperimento in corso. </li></ol> 3. Cellule e incubazione Bead <ol><li> Propagare la EVTS al ~ 80% confluenza, trypsinize e contare utilizzando pratiche accettate colture cellulari. </li><li> Sospendere 1x10 6 EVTS in 4 ml di caldoed i media. </li><li> Mescolare delicatamente preparato Cytodex-3 perline. Usando tecniche sterili, rimuovere 2,5 ml di perline preparati con una punta larga, 10mL sierologici pipetta e trasferire ad un tubo di 15 ml conica inutilizzato. Si noti che ci può essere una piccola perdita di perle come essi attribuiscono alla pipetta. </li><li> Lasciare che il Cytodex-3 perline a depositarsi sul fondo della provetta. Dopo la sedimentazione, utilizzare una pipetta per rimuovere lo strato superiore della DPBS senza disturbare il Cytodex-3 perline. </li><li> Mescolare la 1x10 6 EVTS preparato in media con il preparato Cytodex-3 perline. </li><li> Incubare le cellule tallone miscela a temperatura ambiente per 30 min. Periodicamente mescolare delicatamente. Incubare per altri 30 minuti a 37 ° C e 5% di CO 2. Periodicamente mescolare delicatamente. </li></ol> 4. Caricamento del RWV <ol><li> In una cappa a flusso laminare, rimuovere un RCC 10 ml dalla confezione e collocarlo in una sterile, 6-ben piastra di coltura per la stabilità. Fare riferimento alla Figura 1 per un diagramma etichetta della RCCS. </li><li> Togliere il tappo di grandi dimensioni dal porto. </li><li> Portare il volume totale del incubando cellule tallone miscela di 10 ml con i media riscaldato. </li><li> Caricare il cellulare / tallone miscela nel RCC attraverso il grande porto. Il RCC dovrebbe essere inclinato a 45 ° (fino grande porto) durante il caricamento per favorire l'eliminazione delle bolle d'aria potenziale. Evitare l'accumulo di pressione positiva compilando la nave lentamente e costantemente. </li><li> Sostituire il fermo nel porto di grandi dimensioni. </li><li> Rimuovere i pistoni dal 3-ml siringhe e le siringhe vuoto sul piccoli porti. Aggiungere 1-3 ml di media per ogni siringa. Aprire lentamente le due valvole. Sostituire i pistoni siringa sul siringhe delicatamente. Aggiungere i media da una siringa fino a quando tutte le bolle vengono rimossi dalla camera interna. </li><li> Sollevare il RCC e picchiettare delicatamente sul lato mentre ruotando di fronte a voi per verificare le bolle. Se ci sono delle bolle, è necessario uscire dalla camera, come bolle d'aria si interferisce con la formazione of aggregati cellulari e introdurre forze di taglio. Eliminare le bolle ruotando il RCC fino a quando le bolle sono sotto il piccolo porto. Quindi spingere delicatamente verso il basso la siringa sul lato opposto per costringere le bolle nella porta e fuori della camera. </li><li> Chiudere una porta laterale. Premere delicatamente il pistone siringa altro di introdurre una piccola quantità di pressione positiva nel vaso, che impedisce la formazione di bolle. Chiudere la valvola secondo. </li><li> Caricare il RCC sul rotore. Avviare la rotazione a 19rpm a 37 ° C CO 2 incubatore. </li></ol> 5. Modifica della media <ol><li> Cambiare il supporto a giorni alterni per i primi tre giorni, poi ogni giorno successivo. </li><li> Spegnere il rotore e rimuovere il RCC. Tirare i pistoni fino a creare qualche aspirazione, rimuovere le siringhe da ogni piccolo porto e posizionare il RCC in un angolo in modo che le perline risolvere opposto del porto grande. </li><li> Dopo le perle hanno risolta, aperta una delle valvole piccole epermettere ai media di flusso fuori del RCC e in un contenitore dei rifiuti. Rimuovere 2 / 3 dei media in questo modo. Essere sicuri di non disturbare le perline e scartare qualsiasi non aggregati. </li><li> Chiudere la valvola di piccole e aprire la porta di grandi dimensioni. Aggiungi supporti indietro nel RCC attraverso il grande porto. Sostituire il fermo nel porto di grandi dimensioni. </li><li> Ripetere i passaggi 4,6-4,9. </li><li> Come gli aggregati aumento delle dimensioni, è necessario aumentare la velocità di rotazione per tenerli in sospensione in ogni momento, idealmente in un pattern circolatorio piccolo a velocità ottimale. In generale, aumentare la velocità tra 0,3-0,7 giri dopo ogni poppata, una volta aggregati iniziano a crescere visibilmente. </li></ol> 6. Raccolta di propagazione delle cellule <ol><li> Rimuovere il RCC dal rotore. Rimuovere le siringhe da ogni piccolo porto e posizionare il RCC in un angolo in modo che le perline può risolvere opposto del porto grande. </li><li> Dopo le perle sono tutti sistemati, aprire una delle piccole valvole e consentire ai media di defluiredel RCC e in un contenitore dei rifiuti. Togliere 1 / 3 della media in questo modo. </li><li> Chiudere la valvola di piccole e aprire la porta di grandi dimensioni. Agitare delicatamente la nave per disperdere gli aggregati riportare in soluzione. Vuoto miscela liquida in una sterile da 50ml tubo conico. Lasciare che il aggregati raccolti a stabilirsi nel tubo conica prima di utilizzare il surnatante per lavare a fondo la nave cultura a massimizzare il recupero degli inerti. Gli aggregati possono essere utilizzati per le analisi immediatamente a valle, come la citometria a flusso, saggi di invasione, immunofluorescenza e altri. </li></ol> 7. Rappresentante Risultati Un esempio di come le cellule-EVT (SGHPL-4 linea cellulare trofoblasto) coltivate nella RCC di Cytodex-3 perline è mostrato in Figura 2. La EVT-come linea cellulare mostra le proiezioni si estende lontano dal cluster principale e allegando ai cluster vicini. Molte delle perle sono completamente coperte con le cellule di propagazione. Una volta tolto dal RCC e plaTed su una matrice extracellulare, la EVT-come le cellule coltivate in 3-D aggressivamente invadere e / o migrare (Figura 3). RT-PCR dati confermano l'aumentata espressione di MMP visto in 3-D aggregati al contrario di monostrati tradizionali colture cellulari (Figura 4). È interessante notare che i geni non sono associati con invasione anche sovraregolati in RCC (Tabella 1) e può aiutare a delineare aree come le interazioni con l'invasione delle cellule immunitarie trophoblasts. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3367/3367fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Cartoon rappresentazione del Cell System Rotating Cultura (CCR). <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3367/3367fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Micrografia contrasto di fase di un aggregato rappresentante crescita dopo 5 giorni in un RCC. Le frecce indicano le cellule invadono e * denota la Cytodex-3 perline microcarrier. <imgalt src='"/' files></imgalt> Figura 3. Aggregati RCC Grown sono stati incorporati in gel di fibrina. Invasione attraverso il gel di fibrina è stato osservato già nel (A) 24 ore dopo la fibrina embedding e (B) ha continuato per 48 ore. Le frecce indicano le cellule invadono e * denota la Cytodex-3 perle microcarrier (Adattato, con il permesso, dal rif. 7). <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/3367/3367fig4.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Comparativa zymogram gelatina di monostrato e RCC propagato SGHPL EVT-4-come le cellule. Forme e pro-attiva di MMP-2 e MMP-9 sono stati secreti dalle cellule del trofoblasto cresciuto RCC (Adattato, con il permesso, dal rif. 7). <img alt="Tabella 1" src="/files/ftp_upload/3367/3367table1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tabella 1"> Tabella 1. Sintesi dei risultati da microarray SGHPL-4 cellule coltivate in RCC (Adattato, con il permesso, dal rif. 7). <ol class="lalpha"><liinduzione piegare in aggregati stato calcolato come segue: normalizzato gene valore monlayer.><li> Indica geni che erano al di sotto del limite di rilevamento in monostrati. </li></liinduzione></ol>

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</ol>

Non abbiamo nulla da rivelare.

La tecnica di cultura qui presentata fornisce investigatori altamente invasiva EVT-come le cellule. Ora è stato riconosciuto che una perdita di differenziazione avviene in monostrati a causa dell&#39;inibizione della risposta cellulare ad agenti chimici e spunti molecolare in tre dimensioni (superficie delle cellule apicali, basali e laterali), 10,13. Questa tecnica riflette le caratteristiche indicate in utero a invadere le cellule EVT. Poiché la procedura imita convenzionale monostrato tessuto cine...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> Cytodex microcarrier perline </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C3275 </td><td></td></tr><tr><td> Rotazione Cultura Cell System (CCR) </td><td> Synthecon </td><td> RCC-D </td><td> Include rotore di base, alimentatore, 4 unità usa e getta RCC </td></tr><tr><td> Unità RCC monouso </td><td> Synthecon </td><td> Contatta Synthecon </td><td></td></tr><tr><td> 3 ml Luer-Lock siringa </td><td> BD </td><td> 309585 </td><td></td></tr><tr><td> 10ml di ampio punta della pipetta sierologica </td><td> BD </td><td> 357504 </td><td></td></tr><tr><td> MEM Alpha </td><td> Invitrogen </td><td> 12561-072 </td><td></td></tr><tr><td> L-15 Leibovitz media, in polvere </td><td> Invitrogen </td><td> 41300-039 </td><td></td></tr><tr><td> H 2 O, endotossine libero </td><td> Pescatore </td><td> MT-25-055-CM </td><td></td></tr><tr><td> Bicarbonato di sodio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S-7795 </td><td></td></tr><tr><td> Peptone </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP1420-100 </td><td></td></tr><tr><td> Fruttosio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> F3510-100 </td><td></td></tr><tr><td> Galattosio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G5388-100 </td><td></td></tr><tr><td> Glucosio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G7528-250 </td><td></td></tr><tr><td> HEPES </td><td> Invitrogen </td><td> 15630-080 </td><td></td></tr><tr><td> L-Glutammina </td><td> Invitrogen </td><td> 25030 </td><td></td></tr><tr><td> Insulino-transferrina-Sodio Selenite (ITS) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> I1884 </td><td></td></tr><tr><td> FBS </td><td> Invitrogen </td><td> 10437 </td><td></td></tr><tr><td> Penicillina-Streptomicina </td><td> Invitrogen </td><td> 15140 </td><td></td></tr></tbody></table>

rotazione cultura sistemi cellulari per colture cellulari umane: cellule del trofoblasto umano come modello

Rotating Cell Culture Systems for Human Cell Culture: Human Trophoblast Cells as a Model

Il campo di ricerca trofoblasto umano aiuta a comprendere il complesso ambiente stabilito durante placentazione. A causa della natura di questi studi, umano nella sperimentazione in vivo è impossibile. Una combinazione di colture primarie, culture espianto e linee cellulari trofoblasto 1 supporto la nostra comprensione di invasione della parete uterina 2 e rimodellamento delle arterie spirali uterine 3,4 da parte delle cellule del trofoblasto extravilloso (EVTS), che è richiesto per la costituzione di successo della gravidanza. Nonostante la ricchezza di conoscenze scaturite da tali modelli, si accetta che in modelli di coltura cellulare in vitro utilizzando EVT-come linee cellulari visualizzare alterato proprietà cellulari rispetto alle loro controparti in vivo 5,6. Cellule in coltura delle cellule nel sistema di rotazione cultura (CCR) visualizzare le proprietà morfologiche, fenotipiche e funzionali di EVT-come linee cellulari che più da vicino imitano differenziare in uEVTS Tero, con aumentata espressione di geni che mediano l&#39;invasione (ad esempio metalloproteinasi della matrice (MMP)) e la differenziazione trofoblasto 7,8,9. Il Saint Georges Hospital cellula placentare Linea-4 (SGHPL-4) (gentilmente donato dal Dr. Guy Whitley e il dottor Judith Cartwright) è un EVT-come linea cellulare che è stato utilizzato per la sperimentazione in RCC. Il progetto della nave cultura RCC si basa sul principio che organi e tessuti funzione in una tridimensionale (3-D) dell&#39;ambiente. A causa delle condizioni di coltura dinamica della nave, comprese le condizioni di taglio fisiologicamente rilevanti, cellule cresciute in tre dimensioni, la forma aggregati sulla base di affinità naturale cellulare e di differenziarsi in tessuti come organotipica assemblee 10,11,12. Il mantenimento di un orbita fluido fornisce un basso taglio, a bassa turbolenza ambiente simile alle condizioni presenti in vivo. Sedimentazione delle cellule in coltura, si contrappone regolando la rotazionevelocità del RCC di assicurare una costante caduta libera delle cellule. Scambio dei gas avviene attraverso una membrana idrofobica permeabile trova sul retro del bioreattore. Come i loro genitori tessuti in vivo, RCC-grown cellule sono in grado di rispondere ad agenti chimici e pendenze molecolare in tre dimensioni (vale a dire la loro superficie apicale, basale e laterale) perché sono colto sulla superficie delle perline microcarrier porosa. Quando coltivate come bidimensionali monostrati su superfici impermeabili come plastica, le celle sono privati ​​di questa importante comunicazione a loro superficie basale. Di conseguenza, i vincoli spaziali imposti dall&#39;ambiente profondamente influenzano il modo in senso cellule e decodificare i segnali dal microambiente circostante, ciò implica un ruolo importante per l&#39;ambiente 3-D 13. Abbiamo usato il RCC di ingegnere biologicamente significativi modelli 3-D dei vari tessuti epiteliali 7,14,15,16. Infatti, molte relazioni precedenti demonstrated che le cellule coltivate in RCC può assumere fenotipi fisiologicamente rilevanti che non sono stati possibili con altri modelli 10,17-21. In sintesi, la cultura nel RCC rappresenta un modo semplice, riproducibile, high-throughput piattaforma che offre un gran numero di cellule differenziate che sono riconducibili a una serie di manipolazioni sperimentali. Nel seguente protocollo, utilizzando EVTS come esempio, si descrivono chiaramente i passaggi necessari per tridimensionalmente cellule aderenti cultura nel RCC.

Tradizionale, bidimensionale tecniche di coltura cellulare spesso sfociano in caratteristiche alterate rispetto ai marcatori di differenziazione, citochine e fattori di crescita. Tridimensionale di coltura cellulare nel sistema delle cellule di rotazione cultura (CCR) ristabilisce l&#39;espressione di molti di questi fattori, come illustrato qui con una linea di cellule extravilloso trofoblasto.

Rotazione Cultura sistemi cellulari per colture cellulari umane: cellule del trofoblasto umano come modello

Il campo della ricerca sul trofoblasto umano contribuisce a comprendere l'ambiente complesso che si stabilisce durante la placentazione. A causa della natura di questi...

Questa procedura utilizza un sistema di coltura cellulare tridimensionale per imitare la cinetica cellulare in vivo. Iniziare incubando le cellule con microsfere rivestite di collagene ENC. Successivamente, caricare le cellule e le microsfere in un sistema di coltura cellulare rotante e far crescere aggregati cellulari tridimensionali in un ambiente a basso taglio e bassa turbolenza.Infine, raccogliere le cellule per l'uso in applicazioni successive rispetto all'espressione genica e alla differenziazione cellulare di cellule coltivate in un tipico monocstrato. Le colture 3D risultanti dimostrano una cinetica e un comportamento cellulare che assomigliano strettamente a quelli osservati in vivo.Abbiamo utilizzato il RCCS per ingegnerizzare modelli tridimensionali biologicamente significativi di diversi tessuti epiteliali umani. La dottoressa Jessica Warner, ex studentessa laureata nel laboratorio del mio collaboratore, il dottor Sydney Morris, illustrerà ora questa procedura con cellule EVT in un tubo conico da 50 millilitri. Autoclavare 250 milligrammi di microsupporti, perle CytoDex Three, in 12 millilitri di DPBS. Lasciare gonfiare le perle preparate e raffreddare a temperatura ambiente.Quindi, in condizioni sterili, portare il volume totale a 12,5 millilitri. Utilizzando DPBS, raccogliere ora una coltura di cellule trofoblastiche extravillotiche al 80% confluenti. Mediante digestione con tripsina, mescolare delicatamente le perle di Cytodex tre preparate e, utilizzando una pipetta sierologica da 10 millilitri con punta larga, trasferire 2,5 millilitri in un tubo conico da 15 millilitri.Dopo che le perline cyto dex three si sono depositate sul fondo del tubo, pipettare lo strato superiore di DPBS senza disturbare le perline cyto Dex three. Mescolare le cellule EVT con le perline cyto Dex three.Incubare a temperatura ambiente per 30 minuti con mescolamento periodico, seguito da 30 minuti in incubatore per colture cellulari con mescolamento occasionale. Posizionare un RCCS da 10 millilitri in una piastra sterile per colture da sei pozzetti e rimuovere il tappo grande. Aggiungere ora il mezzo GTSF due riscaldato per portare il volume totale della miscela di cellule e perle a 10 millilitri e caricare il tutto nel RCCS attraverso il porto grande.Sostituire il tappo del grande orifizio e chiudere i piccoli orifizi. Successivamente, posizionare siringhe da tre millilitri vuote sui due piccoli orifizi. Aggiungere il mezzo in ciascuna siringa.Aprire lentamente le due valvole e sostituire i pistoni delle siringhe. Aggiungere delicatamente il mezzo da una siringa fino a quando tutte le bolle d'aria non sono state espulse dalla camera interna. Prendere il RCCS e battere leggermente sui lati ruotandolo per controllare la presenza di bolle. Rimuovere le bolle residue ruotando il RCCS finché le bolle non si trovano sotto il piccolo attacco. Quindi premere delicatamente sulla siringa sul lato opposto per forzare le bolle all'interno dell'attacco ed espellerle dalla camera. Continuare chiudendo delicatamente un attacco laterale e premendo delicatamente sul pistone dell'altra siringa per introdurre una piccola quantità di pressione positiva nel recipiente, quindi chiudere la seconda valvola mantenendo la pressione.Infine, caricare l'RCCS sul rotore. Avviare la rotazione a 19 giri/min in un incubatore per colture cellulari per ottenere condizioni di coltura ottimali. Rinnovare il mezzo ogni due giorni per i primi tre giorni e successivamente ogni giorno.Spegnere innanzitutto il rotore e rimuovere l'RCCS. Tirare i pistoni verso l'alto per creare un po' di aspirazione. Rimuovere le siringhe da ciascuna porta piccola, posizionare l'RCCS in posizione inclinata e lasciare sedimentare le perline sul lato opposto rispetto alla porta grande.Ora, aprire una delle piccole valvole per rilasciare due terzi del mezzo dal RCCS in un contenitore di rifiuti senza disturbare le perle. Chiudere la piccola valvola, quindi aprire la porta grande. Aggiungere mezzo nel RCCS, sostituire il tappo, eliminare tutte le bolle d'aria come mostrato in precedenza e posizionare la coltura sul rotatore all'interno dell'incubatrice.Una volta che gli aggregati iniziano a crescere, aumentare visibilmente la velocità di rotazione per garantire che le cellule rimangano in sospensione. Per raccogliere le cellule, rilasciare l'RCCS dal rotore.Scartare le siringhe da ciascuna porta piccola e posizionare l'RCCS con un angolo in modo da dirigere le perle opposte alla porta grande. Dopo che tutte le perle si sono depositate, aprire una delle valvole piccole e scaricare un terzo del mezzo in un contenitore per rifiuti. Chiudere la valvola piccola e aprire la porta grande.Ruotare delicatamente il contenitore per ridisintegrare gli aggregati in soluzione e trasferire le cellule in un tubo conico sterile da 50 millilitri. Dopo aver lasciato sedimentare gli aggregati raccolti nel tubo conico, utilizzare il soprannatante per lavare accuratamente il contenitore di coltura una seconda volta, al fine di massimizzare il recupero degli aggregati. Utilizzando immediatamente una punta per pipetta a largo foro, aliquotare gli aggregati per saggi funzionali successivi.La linea cellulare di trofoblasti S-G-H-P-L costituisce un esempio di cellule simili ai trofoblasti extravillari. In un aggregato tipico coltivato in un RCCS su cyto X tre, molte perle sono completamente ricoperte da cellule in proliferazione. Si notino le protrusioni che si estendono dal gruppo principale e si attaccano a gruppi adiacenti.Dopo il prelievo dal RCCS e la semina su una matrice extracellulare, le cellule coltivate in 3D simili a EVT invadono e/o migrano in modo aggressivo. Infatti, i dati R-T-P-C-R confermano l'aumentata espressione delle MMP osservata negli aggregati in 3D rispetto ai monoculti normali. Curiosamente, anche geni non associati all'invasione risultano sovraespressi nel RCCS.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una chiara comprensione di come utilizzare l'RCCS con la tua linea cellulare, cellule primarie o persino cellule staminali per ottenere colture cellulari tridimensionali che imitano più da vicino la cinetica cellulare in vivo.

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In questo video, dimostriamo l'isolamento di blastocisti mouse e la derivazione di cellule staminali trofoblasto da blastocisti. Abbiamo anche descrivere le condizioni per il mantenimento della proprietà delle cellule staminali e l'induzione della differenziazione nella cultura.

Derivazione di cellule staminali trofoblasto mouse da blastocisti

In questo protocollo, si descrive la dissezione placentae dal mouse sulla gravidanza D10.5, seguito da isolamento di cellule trofoblastiche mediante gradiente di Percoll. Abbiamo poi dimostrare l'utilizzo delle cellule isolate in un saggio di invasione Matrigel.

Isolamento di cellule primarie trofoblasto mouse e Invasion Assay trofoblasto

Questo manoscritto presenta un modello unico in vitro di cellule di citotrofoblasto villoso umano immunopurificate coltivate in ipossia/riossigenazione. Questo modello è adatto per studiare gli effetti protettivi di trattamenti promettenti, come la melatonina, sulle complicanze della gravidanza associate all'aumento dello stress ossidativo e all'alterazione della funzione placentare.

Umana Trophoblast primaria coltura cellulare modello per studiare gli effetti protettivi della melatonina contro ipossia / riossigenazione Disruption-indotta

Qui presentiamo un protocollo per la conversione diretta di fibroblasti embrionali murini in cellule staminali del trofoblasto completamente funzionali e stabili mediante sovraespressione di dieci giorni di Tfap2c, Gata3, Eomes ed Ets2.

Protocollo per la conversione diretta dei fibroblasti murini embrionali in trofoblasto cellule staminali

Qui, presentiamo un protocollo per generare in modo efficiente cellule trofoblastiche umane da cellule staminali pluripotenti umane utilizzando la proteina morfogenica ossea 4 e inibitori delle vie Activina/Nodale. Questo metodo è adatto per la differenziazione efficiente delle cellule staminali pluripotenti umane e può generare grandi quantità di cellule per la manipolazione genetica.

La differenziazione in vitro di pluripotenti umane Cellule Staminali in cellule trofoblastiche

Presentato qui è un protocollo per il campionamento del tessuto villous placenta umano seguito da isolamento di cytotrophoblasts per colture cellulari primarie. Trattamento del trofoblasto con TNFα ricapitola l'infiammazione nell'ambiente intrauterino obeso e facilita la scoperta di bersagli molecolari regolati da infiammazione in placente con l'obesità materna.

Un modello di trofoblasto umano primario per studiare l'effetto di infiammazione associata con l'obesità materna sulla regolazione dell'autofagia nella Placenta

Qui, presentiamo un protocollo altamente accessibile per valutare il movimento delle cellule in cellule del trofoblasto umano utilizzando tre saggi in vitro: l'analisi di gratta e Vinci, l'analisi di invasione di transwell e l'analisi di proliferazione delle cellule.

Test in Vitro per valutare la migrazione, invasione e la proliferazione di linee cellulari immortalizzate umano primo-acetonide Trophoblast

Qui, descriviamo un metodo per riscaldare le blastocisti umani vetrificati, maficandoli attraverso il periodo di impianto in vitro, digerindoli in singole cellule e raccogliendo cellule trofoblaste precoci per ulteriori indagini.

Raccolta a cella singola di cellule di trofoblasto in peri-impianto Stadio Embrioni Umani

Gli organoidi rivoluzionano la modellazione tissutale personalizzata per lo sviluppo di organi, la scoperta di farmaci e la ricerca sulle malattie. L'ingegneria degli organoidi avanza nella creazione di tessuti sintetici intricati. L'obiettivo è quello di integrare la morfogenesi, la tecnologia assembloide e le biomatrici per far progredire l'ingegneria tissutale. Questo protocollo aiuta a modellare l'organogenesi epatica e a stabilire linee guida per la costruzione di tessuti sintetici.

Tecniche di coltivazione in vitro per la modellazione dell'organogenesi epatica, la costruzione di assembloidi e la progettazione di tessuti sintetici utilizzando linee cellulari umane

Il protocollo mostra un nuovo modello sperimentale in vitro in grado di ricapitolare la biologia di due tipi di linee cellulari aderenti con un'impalcatura tridimensionale (3D) stampata. Vengono descritte la costruzione di questo modello e le procedure operative, dalla preparazione e coltura cellulare all'analisi e valutazione.

Modello di co-coltura che utilizza due tipi di linee cellulari aderenti

Questo protocollo consente la purificazione, la caratterizzazione e la coltura dei trofoblasti extravillosi primari HLA-G+ (EVT) dalla decidua basali e dalla membrana corionica delle placente a termine umane. Le colture primarie di EVT mantengono la vitalità per 96 ore, permettendo la co-coltura con cellule immunitarie materne abbinate a campioni e la successiva analisi citometrica e molecolare del flusso delle loro interazioni.

Purificazione di trofoblasti extravillosi HLA-G+ da tessuti placentari a termine umani per fenotipizzazione e analisi funzionale

Impara a coltivare cellule del trofoblasto umano in 3D con il sistema RCCS per studiare differenziazione cellulare e espressione genica. Questo metodo migliora la riproduzione delle condizioni fisiologiche in vivo rispetto alle colture monostrato tradizionali.

Rotazione Cultura sistemi cellulari per colture cellulari umane: cellule del trofoblasto umano come modello

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