Name: Tracciamento di segnalazione allinterno di aggregati di cellule ipossiche Encapsulated (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-12-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 14 s
Description: Scopri il tracciamento della segnalazione ipossica in aggregati cellulari di insulinoma murino incapsulati in idrogel PEG. Questa tecnica consente di monitorare l'attività del fattore inducibile dall'ipossia tramite microscopia fluorescente.

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Grazie alla Anseth Kristi laboratorio della University of Colorado, Boulder generosamente per fornire MIN6 cellule. Il finanziamento per questo progetto è stato fornito dalla NSF.

1. PEGDM sintesi e PEGDM fotoattivi preparazione macromer soluzione <ol><li> Pesare 2 g di PEG (lineari, 10.000 Da) in un flacone di vetro 40ml con tappo in plastica rigida. </li><li> Aggiungere circa 308μL di anidride metacrilico e vagamente tappo del flaconcino. </li><li> Microonde la fiala in alto per 2 minuti in un forno a microonde standard ad uso privato. Indossare guanti resistenti al calore, completamente vortice il flacone, poi in alto a microonde per altri 5 minuti. </li><li> Brevemente il flacone permettono di raffreddare abbastanza da essere maneggiato con i guanti. Stappare e aggiungere lentamente il cloruro di metilene, mentre agitando il flaconcino. Aggiungi sufficiente in modo che la soluzione appare chiara ed omogenea, vortex il campione, se necessario. Il volume totale del cloruro di metilene utilizzato deve essere 1,5 - 2 ml. </li><li> PEGDM precipitato in 200 ml di freddo, agitato dietiletere aggiungendo goccia a goccia la soluzione. </li><li> Raccogliere il PEGDM filtrazione sotto vuoto e lasciarlo asciugare. </li><li> Sciogliere il PEGDM in quantità adeguatadi acqua deionizzata (tipicamente 100 -150 ml). </li><li> Dializzare la soluzione contro l'acqua deionizzata per 5 giorni in tubi di dialisi, con un peso molecolare di cut-off di 1.000 Da. Sostituire l'acqua una volta al giorno. </li><li> Aliquota della soluzione in appositi contenitori e congelare a -80 ° C durante la notte. Liofilizzare la soluzione per 4 giorni fino ad ottenere una polvere bianca PEGDM purificata. Conservare la polvere a 4 ° C, quando non in uso. </li><li> Per preparare una soluzione PEGDM fotoattivi, prima preparare una percentuale 0,5 Peso soluzione fotoiniziatore magazzino sciogliendo Irgacure 2959 in acqua deionizzata. Vortex la soluzione e conservarla nel buio. </li><li> Preparare un 10% in peso PEGDM e 0,025% in peso Irgacure 2959 soluzione in soluzione salina bilanciata di Hank (HBSS). Vortex a fondo per garantire lo scioglimento del PEGDM. Noi di solito preparare 1 ml di questa soluzione in un momento. </li><li> Sterilizzare la soluzione filtrandola attraverso un filtro 0,2 micron siringa in una provetta per microcentrifuga da 1,8 ml. Avvolgere il tubo in alluminioe conservare a 4 ° C </li></ol> 2. Cultura, l'infezione e l'aggregazione di cellule MIN6 <ol><li> MIN6 cellule sono coltivate in RPMI 1640 medium supplementato con 10% FBS, glucosio 7mm, 100 unità / mL penicillina / streptomicina, e 0,5 mg / ml amphotercin B in un ambiente umidificato a 37 ° C e 5% di CO 2. </li><li> Per rilasciare le cellule dalla superficie coltura trattata fiasco, aspirare il terreno, lavare le cellule con 37 ° C di calcio / magnesio senza HBSS, aspirare il HBSS, poi aggiungere 2 ml di 37 ° C tripsina-EDTA soluzione e permettono alle cellule di incubare per 3 minuti. </li><li> Saldamente vaso sul lato del pallone per battere il celle libere, quindi aggiungere 8 mL di 37 ° C di media e vigorosamente pipetta la sospensione cellulare su e giù facendo attenzione a non introdurre bolle. </li><li> Pipettare le cellule in una provetta sterile 15 ml centrifuga ed effettuare un conteggio delle cellule utilizzando un emocitometro o una cella di altri procedura di conteggio. </li><li> Nella preparazione di infettare le cellule con il produttorevirus, in primo luogo determinare il numero totale delle cellule di essere infetti e calcolare il volume di sospensione di virus necessari per raggiungere il desiderato molteplicità di infezione (MOI) (da 50 a 100 particelle infettive per cella). </li><li> Diluire il virus in HBSS con attenzione pipeting la giusta quantità di sospensione di virus in un pre-aliquotati volume di HBSS in una provetta da microcentrifuga da 1,8 ml. 50 ml di HBSS per pozzetto di cellule aggregazione è appropriato. </li><li> Disperdere le cellule pipeting su e giù nel loro tubo, poi pipettare il volume necessario per raggiungere 400.000 cellule per pozzetto nei pozzetti di un 6-pozzetti sospensione cultura. </li><li> Aggiungere il volume appropriato di virus diluito in ciascun pozzetto per ottenere il desiderato MOI. </li><li> Aggiungi medio in ciascun pozzetto per portare il volume totale fino a 1,7 ml. </li><li> Posizionare la piastra su un agitatore orbitale all'interno dell'incubatore. Impostare l'agitatore in un ambiente basso in modo che il mezzo lava delicatamente intorno ai pozzi (~ 100 rpm). Permettono alle cellule di aggregazionete per 24-36 ore. Aggregati con un diametro approssimativo di 75-175 micron dovrebbe essere formato. </li></ol> 3. Incapsulamento delle celle a PEGDM <ol><li> Le cellule possono essere incapsulati come una dispersione (passo 2.4) o l'aggregazione seguente (punto 2.10). Dal momento che il precursore soluzione idrogel PEGDM è un liquido, le cellule possono tendere a risolvere prima di reticolazione e la formazione di idrogel. Se il regolamento dovrebbe avvenire rapidamente, come nel caso di grandi aggregati, può essere utile per produrre l'idrogel in due fasi in modo che le cellule risolvere su un piano centrale del gel. Un one-step procedura di sintesi idrogel appropriata per le cellule disperse è mostrato (Figura 2) e la procedura in due fasi è mostrato così (Figura 3) e di dettaglio di seguito (3,2-3,9). </li><li> Creare un vaso in cui l'idrogel sarà formata da taglio la punta affusolata off di una siringa da 1 ml di plastica e l'immissione aprirlo finire in un rack. </li><li> Pipettare 20 ml di PEGDM fotoattivi cosìluzione in l'estremità aperta della siringa sul pistone assicurandosi il volume copre l'intera superficie dello stantuffo. Regolare lo stantuffo in piccoli incrementi per ottenere una superficie piana fluido. </li><li> Posizionare la pipetta nel rack e la posizione del rack sotto una lampada UV (365nm, ~ 7 mW / cm 2) per circa 8 minuti per consentire la reticolazione idrogel. Durante questo tempo, la preparazione delle cellule può essere iniziata </li><li> Pipettare un volume contenente il numero desiderato di cellule / aggregati in un tubo di 1,8 ml microcentrifuga, berretto, e centrifugare la provetta a 130 g per 5 minuti. </li><li> Utilizzando un micropipettor, rimuovere con attenzione i media senza disturbare il pellet di cellule sulla punta del tubo. Come capo dei media si avvicina il pellet, può essere utile utilizzare una più fine, 10 punta della pipetta microlitri. </li><li> Delicatamente risospendere il pellet cellulare in 20 ml di soluzione fotoattivi PEGDM (usare una bocca larga punta della pipetta se si lavora con aggregati) e aggiungere la sospensione cellulare alla siringa sulla parte superiore del secoloe precedentemente reticolato porzione idrogel. </li><li> Esporre la siringa per ulteriori 8 minuti di luce UV per completare la costruzione del idrogel. Al termine, le cellule devono essere completamente incapsulato all'interno del idrogel cilindrico (Figura 3). </li><li> Espellere l'idrogel dalla siringa e in 1 ml di HBSS nel pozzo di un 24-pozzetti per lavare brevemente il gel. Trasferire il gel per 1 ml di media nel pozzo di un 24-pozzetti e cultura sotto le condizioni desiderate. </li></ol> 4. Monitoraggio ipossia <ol><li> In qualsiasi momento durante l'immagine della cultura, le cellule usando la microscopia a fluorescenza per monitorare l'avvio di segnalazione ipossiche. A seconda di cosa viene esposta si può immagine nel multi-pozzetti o trasferire il gel di un vetrino da microscopio prima del posizionamento sul palco microscopio. Eccitazione picco di Ds Rosso è raggiunta a 556nm e picco di emissione avviene a 586nm. Emissione è abbastanza intenso, e quindi photobleaching non è stato osservatoried per essere problematico. Intervallo di tempo tra l'inizio della produzione di proteine ​​e il rilevamento primo segnale è di circa 12 ore. Il segnale è sufficientemente specifica da identificare le singole cellule di segnalazione, ma la risoluzione può essere inadeguato per determinare la localizzazione del segnale intracellulare. Nelle cellule di segnalazione, il segnale si osserva tipicamente in modo uniforme in tutto il citoplasma. Intensità del segnale può anche aumentare con l'esposizione estesa a ipossia, anche se non abbiamo ancora pienamente determinato se questo è dovuto alla maggiore espressione della proteina, accumulo di proteine ​​nel complesso, o ritardata maturazione delle proteine. </li></ol> 5. Rappresentante risultati Un esempio rappresentativo di MIN6 aggregati incapsulato in un idrogel PEG è mostrato in Figura 4. Il gel reticolato sarà solido in tutto, prendendo la forma del recipiente in cui è stata eseguita la reazione. Un gel con lisce superfici esterne è preferibile per l'impianto di aiuto nella prevenzione di un nuovo corpo estraneosponse. All'interno il gel, aggregati di cellule dovrebbe essere completamente chiusa nella matrice e omogeneamente distribuita in modo da migliorare il trasporto dei nutrienti. Immagini rappresentative di segnalazione ipossiche in MIN6 aggregati sono illustrati nella Figura 5. Identico MIN6 aggregati infettati con il virus marcatore sono state coltivate in entrambe il 20% O 2 (5a) o 1% O 2 (5b) per 44 ore prima della cattura dell'immagine. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig1.jpg"> Figura 1. Schematica delle attività del nostro sistema marcatore ipossia. Inserimento adenovirali della Red Ds DR gene a monte e promotore HRE permette di ipossia indotta la produzione della proteina fluorescente sotto il controllo di HIF-1. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig2.jpg"> Figura 2. Diagramma di flusso procedurale per l'unico passaggio incapsulamento di dispersi MIN6 celle di una crosslinked idrogel PEGDM. Per ogni gel, le cellule disperse sono sospese in 40μL della soluzione macromer fotoattivi PEGDM. Questo è posto in una siringa 1 ml e decapitato l'idrogel è formata sotto la luce UV 365nm dopo 10-12 minuti. Al termine, il disco idrogel è rimosso dalla siringa, lavato e messo in un mezzo pieno di pozzetti per l'incubazione. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig3.jpg"> Figura 3. Diagramma di flusso procedurale per il doppio passo incapsulamento di aggregati MIN6 cellule in un idrogel PEGDM reticolato. Per ogni gel, un mezzo-gel è il primo formato da reticolazione UV 20μL della soluzione macromer PEGDM fotoattivi per 8 minuti. MIN6 aggregati sono accuratamente sospesi in un 20μL addizionale di soluzione fotoattivi macromer che viene aggiunto in cima alla pre-formata a metà gel. Il gel completo è formato da un ulteriore 8 minuti di esposizione ai raggi UV con aggregati completamente incapsulato nel medialepiano del gel. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig4.jpg"> Figura 4. Immagine di un idrogel 40μL sotto ingrandimento 20X. MIN6 aggregati (~ 400.000 cellule totali) si vedono chiaramente all'interno del gel. Diametro idrogel è di circa 6mm (bar = 1mm). <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig5.jpg"> Ipossia Figura 5. Fluorescente di segnalazione in forma aggregata MIN6 cellule in un idrogel PEGDM. Le cellule che sono state incapsulate e poi messe in incubazione a 20% O 2 per 44 ore non vengono visualizzati segnalazione ipossia (a), mentre le cellule che sono state incapsulate poi incubate in 2 O 2% per 44 ore visualizzare segnale chiaro e onnipresente. (Bar = 100μm) (b).

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Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Il metodo presentato qui offre una tecnica rapida e semplice per l&#39;incapsulamento delle cellule in un idrogel PEG con il minimo uso di non-fisiologiche condizioni. PEG rappresenta un materiale di incapsulamento molto utile per la sua biocompatibilità e la facilità di modifica. Semplice variazione di percentuale PEG nella soluzione fotoattivi, per esempio, possono essere utilizzati per regolare le proprietà meccaniche, come modulo di compressione, e proprietà di trasporto attraverso la dimensione dei pori. Inoltre, PEG è facilmente modificabile con l&#39;aggiunta di catene laterali. Idrogel PEG, quindi, rappresentano sia un dispositivo promettente clinico e una piattaforma flessibile per la ricerca in vitro Un metodo per il monitoraggio ipossia nel PEG-incapsulato cellule è stato presentato. Questo metodo è utile per la semplicità di rilevazione ipossia e per evitare la necessità di sacrificare le cellule di interesse. La tecnica può essere applicata ad una varietà di tipi di cellule in una varietà di condizioni che rendono le sue noiefulness ampio. Per esempio, l&#39;ipossia come spunto per la differenziazione delle cellule staminali possono essere rintracciati in colture di cellule staminali Micromass. Tuttavia, questo metodo può essere applicato solo per disperdere i sistemi cellulari o sistema in cui le cellule sono disperse in seguito aggregate. Inoltre, il rilevamento del segnale fluorescente può essere difficile nei tessuti più grandi o più dense.

<table border="1"><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti (opzionale </td></tr><tr><td> PEG </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 309028-500G </td><td></td></tr><tr><td> Anidride metacrilico </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 276685-100ML </td><td></td></tr><tr><td> Microonda </td><td> Emerson </td><td> MW8784SB </td><td></td></tr><tr><td> Vortex </td><td> Settori scientifico </td><td> SI-A236 </td><td></td></tr><tr><td> Cloruro di metilene </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D65100-1L </td><td></td></tr><tr><td> Etere dietilico </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 346136-1L </td><td></td></tr><tr><td> Dialisi Tubi </td><td> Spettro </td><td> 132640 </td><td></td></tr><tr><td></td><td> Laboratori </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Congelatore </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td&gt; Liofilizzatore </td><td> Labconco </td><td> 7670521 </td><td></td></tr><tr><td> Pompa del vuoto </td><td> Welch </td><td> 8917Z-01 </td><td></td></tr><tr><td> Irgacure 2959 </td><td> Ciba-Geigy </td><td> 029891301PS04 </td><td></td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Mediatech </td><td> 21-022-CV </td><td></td></tr><tr><td> Filtro siringa </td><td> VWR </td><td> 28145-477 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> Mediatech </td><td> * </td><td> * Formulazione personalizzati </td></tr><tr><td> FBS </td><td> PAA Laboratories </td><td> A15-351 </td><td></td></tr><tr><td> Penicillina-Streptomicina </td><td> Mediatech </td><td> 30-002-CI </td><td></td></tr><tr><td> Amfotericina B </td><td> Mediatech </td><td> 30-003-CF </td><td></td></tr><tr><td> Incubatrice </td><td> Thermo Scientific </td><td> 3597 </td><td> NAPCO Serie 8000 WJ w / O2 soppressione </td></tr><tr><td> Tripsina EDTA </td><td> Mediatech </td><td> 25-052-CI </td><td></td></tr><tr><td> Shaker orbitale</td><td> VWR </td><td> 12620-926 </td><td></td></tr><tr><td> Lampada UV </td><td> Sanyo Denri </td><td> FLR40SBLB / M </td><td> Tiene due 40W, lampade UV 365nm blu blacklight </td></tr><tr><td> Centrifuga </td><td> Eppendorf </td><td> 5811 000.010 * </td><td> * Numero d&#39;ordine. Modello 5810 R </td></tr><tr><td> Microscopio </td><td> Nikon </td><td> TI-ND6-PFS </td><td> Con filterset di eccitazione 556nm / 586nm emissione </td></tr></table>

tracciamento di segnalazione all&#39;interno di aggregati di cellule ipossiche encapsulated

Tracking Hypoxic Signaling within Encapsulated Cell Aggregates

Nel diabete mellito di tipo 1, la distruzione autoimmune delle cellule β pancreatiche provoca la perdita della produzione di insulina e potenzialmente un'iperglicemia letale. Come opzione terapeutica alternativa all'iniezione di insulina esogena, è stata esplorata la trapianto di tessuto pancreatico funzionale1,2. Questo approccio offre la possibilità di un ripristino più naturale e a lungo termine della normoglicemia. È necessaria la protezione del tessuto donatore dal sistema immunitario dell'ospite per prevenire il rigetto, e l'incapsulamento è un metodo utilizzato per contribuire a raggiungere questo obiettivo.
I materiali di origine biologica, come l'alginato3 e l'agarosio4, sono stati tradizionalmente utilizzati per la costruzione di capsule, ma possono indurre infiammazione o crescita fibrotica eccessiva5, che può ostacolare il trasporto di nutrienti e ossigeno. In alternativa, gli idrogeli sintetici a base di polietilenglicole (PEG) non subiscono degradazione, sono facilmente funzionalizzabili, disponibili ad alta purezza, presentano dimensioni dei pori controllabili ed sono estremamente biocompatibili6,7,8. Un ulteriore vantaggio è che gli idrogeli a base di PEG possono essere formati rapidamente mediante una semplice reazione di fotoindurimento che non richiede l'applicazione di temperature non fisiologiche6,7. Una procedura di questo tipo viene descritta qui di seguito. Nella reazione di reticolazione, la degradazione UV del fotoiniziatore, 1-[4-(2-idrossietossi)-fenil]-2-idrossi-2-metil-1-propano-1-one (Irgacure 2959), genera radicali liberi che attaccano i doppi legami carbonio-carbonio vinilici del PEG dimetacrilato (PEGDM), inducendo la reticolazione alle estremità delle catene. La reticolazione può essere completata entro 10 minuti. È stato dimostrato che gli idrogeli di PEG costruiti in questo modo supportano favorevolmente le cellule7,9, e la bassa concentrazione di fotoiniziatore e la breve esposizione alle radiazioni UV non compromettono la vitalità e la funzionalità del tessuto incapsulato10. Sebbene noi metacriliamo il nostro PEG con il metodo descritto di seguito, il PEGDM può anche essere acquistato direttamente da fornitori come Sigma.
Una conseguenza intrinseca dell'incapsulamento è l'isolamento delle cellule da una rete vascolare. La fornitura di nutrienti, in particolare l'ossigeno, è pertanto ridotta e limitata alla diffusione. La disponibilità ridotta di ossigeno può influenzare in particolare le cellule β, la cui funzione secretoria di insulina dipende fortemente dall'ossigeno11-13. Anche la composizione e la geometria della capsula influenzeranno le velocità e le distanze di diffusione dell'ossigeno. Descriviamo quindi anche una tecnica per identificare le cellule ipossiche all'interno delle nostre capsule di PEG. L'infezione delle cellule con un adenovirus ricombinante consente la produzione di un segnale fluorescente quando vengono attivati i percorsi intracellulari del fattore inducibile da ipossia (HIF)14. Poiché gli HIF sono i principali regolatori della risposta trascrizionale all'ipossia, rappresentano un marcatore ideale per il rilevamento del segnale ipossico15. Questo approccio permette un rilevamento semplice e rapido delle cellule ipossiche. In breve, l'adenovirus contiene la sequenza di una proteina fluorescente rossa (Ds Red DR di Clontech) posta sotto il controllo di un trimer dell'elemento rispondente all'ipossia (HRE). La stabilizzazione di HIF-1 in condizioni di bassa concentrazione di ossigeno indurrà la trascrizione della proteina fluorescente (Figura 1). Ulteriori dettagli sulla costruzione di questo virus sono stati pubblicati in precedenza15. Il virus viene conservato in glicerolo al 10% a -80° C, in molteplici aliquote da 150 μL in provette da centrifuga da 1,5 mL, a una concentrazione di 3,4 x 1010 pfu/mL.
Studi precedenti condotti nel nostro laboratorio hanno dimostrato che le cellule MIN6 incapsulate sotto forma di aggregati mantengono la loro vitalità per tutta la durata di una coltura di 4 settimane in un'atmosfera al 20% di ossigeno. Gli aggregati di MIN6 coltivati al 2% o all'1% di ossigeno hanno mostrato segni di necrosi (con una vitalità ancora pari all'85-90%) evidenziati dalla colorazione con bromuro di etidio, nonché cambiamenti morfologici rispetto alle cellule coltivate al 20% di ossigeno. La forma sferica liscia degli aggregati osservata al 20% di ossigeno andava perduta, e gli aggregati assumevano un aspetto più simile a gruppi disorganizzati di cellule. Sebbene lo stress da bassa concentrazione di ossigeno non provochi un marcato calo della vitalità, esso influisce chiaramente sull'aggregazione e sulla funzionalità delle cellule MIN6, come misurato dalla secrezione di insulina stimolata dal glucosio15. L'analisi mediante Western blot delle cellule incapsulate al 20% e all'1% di ossigeno ha inoltre evidenziato un significativo aumento di HIF-1α nelle cellule coltivate in condizioni di bassa ossigenazione, che si correla con l'espressione della proteina DsRed DR.

Un metodo per foto-incapsulamento delle celle in un idrogel PEG reticolato è descritto. Segnalazione ipossiche all&#39;interno incapsulato insulinoma murino (MIN6) aggregati è monitorato attraverso un sistema marcatore fluorescente. Questo sistema permette la visione seriale di cellule all&#39;interno di un idrogel impalcatura e la correlazione di segnalazione ipossia con i cambiamenti nel fenotipo delle cellule.

Tracciamento di segnalazione all&#39;interno di aggregati di cellule ipossiche Encapsulated

Nel diabete mellito di tipo 1, la distruzione autoimmune delle cellule $\beta$ pancreatiche comporta la perdita della produzione di insulina e potenzialmente letale...

L'obiettivo generale di questa procedura è monitorare la risposta cellulare all'ipossia in aggregati cellulari incapsulati in PEG. Nel primo passaggio, le cellule disperse vengono infettate con il virus marcatore e successivamente coltivate in agitazione per favorire la formazione di aggregati. Successivamente, il peg lineare viene funzionalizzato e il dimer PEG DM viene purificato.Successivamente, gli aggregati cellulari vengono incapsulati in un idrogel di PEG DM. Infine, gli idrogeli vengono coltivati in diverse condizioni di ossigeno mentre viene monitorato in modo fluorescente il segnale del marcatore di ipossia. In definitiva, la localizzazione e l'estensione dell'attività del fattore inducibile da ipossia all'interno di aggregati cellulari vitali incapsulati può essere visualizzata mediante semplice microscopia fluorescente.Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nei settori dell'incapsulamento cellulare e della somministrazione terapeutica basata su cellule, come ad esempio: Dove si verifica l'ipossia all'interno delle colture tridimensionali e come influisce sulla sopravvivenza e sulla funzionalità cellulare? Le implicazioni di questa tecnica si estendono alle strategie di medicina rigenerativa e al trattamento delle carenze ormonali, come il diabete mellito, a causa dell'importante impatto dell'ipossia nei tessuti aggregati e incapsulati. È stato dimostrato che l'attività del fattore inducibile da ipossia uno (HIF-1) si correla con una marcata riduzione della secrezione di insulina da parte delle cellule beta, stimolando tentativi di dissociare gli isolotti primari e riformarli in pseudo-isolotti.Aggregati di diametro ridotto. Il nostro marcatore può indicare l'attività del fattore inducibile da ipossia mediante aggregati a livello cellulare all'interno di qualsiasi materiale incapsulante rilasciato. Il PEG è stato scelto come materiale per la capsula grazie alle sue favorevoli proprietà di trasferimento, alla compatibilità citologica e alla facilità con cui può essere modificato funzionalmente.Dopo aver pesato due grammi di PEG in un vial di vetro da 40 millilitri, aggiungere circa 308 microlitri di metacrilico, anidride anidra e chiudere leggermente il vial con un tappo di plastica rigida. Sottoporre il vial a irraggiamento nel forno a microonde regolato alla potenza massima per due minuti in un microonde domestico standard. Successivamente, indossando guanti resistenti al calore, vortexare accuratamente il vial e sottoporre nuovamente la soluzione a irraggiamento nel forno a microonde alla potenza massima per altri cinque minuti.Lasciare raffreddare brevemente la provetta fino a renderla maneggiabile, quindi svitarne il tappo mentre si ruota la provetta. Aggiungere lentamente il cloruro di metilene, vorticosando il campione secondo necessità fino a quando la soluzione appare limpida ed omogenea. Successivamente, aggiungere la soluzione goccia a goccia a 200 millilitri di etere dietilico freddo sotto agitazione per far precipitare il PEG dm.Quindi raccogliere il PEG DM mediante filtrazione a vuoto e lasciarlo asciugare. Una volta che il PEG DM è asciutto, scioglierlo in circa 100-150 millilitri di acqua deionizzata. Successivamente, dializzare la soluzione contro acqua deionizzata per cinque giorni in un tubo da dialisi con cutoff di peso molecolare di 1000 Dalton dopo la dialisi.Versare la soluzione in contenitori appropriati e congelarla a meno 80 gradi Celsius durante la notte. Successivamente, liofilizzare la soluzione per quattro giorni per ottenere una polvere bianca purificata di PEG DM da utilizzare per il distacco delle cellule dalla superficie della fiasca da coltura trattata. Per prima cosa, aspirare il mezzo, risciacquare le cellule con HBSS privo di calcio e magnesio a 37 gradi Celsius e aspirare l'HBSS.Ora aggiungere due millilitri di tripsina ed EDTA a 37 gradi Celsius e lasciare incubare le cellule a 37 gradi Celsius per tre minuti. Quindi agitare energicamente il lato del fiasco per staccare le cellule, aggiungere otto millilitri di mezzo a 37 gradi Celsius al fiasco e pipettare vigorosamente la sospensione cellulare su e giù, avendo cura di non introdurre bolle d'aria.Dopo aver trasferito la soluzione cellulare in una provetta sterile da 15 millilitri per centrifuga, contare le cellule mediante emocitometro per determinare il numero totale di cellule da infettare. Aggiungere il volume necessario di sospensione cellulare per ottenere 400.000 cellule per pozzetto nei pozzetti di una piastra per coltura in sospensione a sei pozzetti; aliquotare 50 microlitri di HBSS per ogni pozzetto di cellule da infettare in una provetta microcentrifuga da 1,8 millilitro. Successivamente, pipettare con attenzione la quantità corretta di sospensione virale nella HBSS preparata.Ora aggiungere il volume appropriato di virus diluito in ogni pozzetto per ottenere l'MOI desiderato, quindi aggiungere mezzo di coltura in ogni pozzetto fino a raggiungere un volume totale di 1,7 millilitri. Infine, posizionare la piastra su uno shaker orbitale all'interno dell'incubatore, impostando lo shaker su una velocità bassa, circa 100 giri al minuto, in modo che il mezzo fluisca delicatamente all'interno dei pozzetti, e lasciare aggregare le cellule per 24-36 ore. Iniziare tagliando la punta conica di una siringa di plastica da un millilitro e posizionarla con l'estremità aperta verso l'alto su un supporto, creando un contenitore in cui verrà formato l'idrogel.Successivamente, pipettare 20 microlitri di soluzione di PEG DM fotoattiva nell'estremit&agrave; aperta della siringa, sopra lo stantuffo, assicurandosi che il volume ricopra l'intera superficie dello stantuffo. Regolare lo stantuffo a piccoli incrementi per ottenere una superficie piatta del liquido. Posizionare ora la pipetta nuovamente nel portapipette e collocare il portapipette al di sotto di una lampada UV per circa otto minuti, consentendo la reticolazione dell'idrogel.In questo periodo, prelevare con una pipetta il volume contenente il numero desiderato di cellule e aggregati e trasferirlo in una provetta microcentrifuga da 1,8 millilitri. Chiudere il tappo della provetta e centrifugare le cellule e gli aggregati per cinque minuti a 130 ×g. Successivamente, utilizzando una micropipetta, rimuovere con attenzione il soprannatante senza disturbare il pellet cellulare situato alla punta della provetta.Quando la testa della pipetta si avvicina al pellet, utilizzare una punta di pipetta più fine da 10 microlitri, distribuendo uniformemente gli aggregati cellulari in tutta la soluzione precursora del gel e assicurandosi che siano completamente incapsulati. Questa è la parte più delicata della procedura. Durante l'esecuzione di questo passaggio, prestare attenzione a risospendere e trasferire il pellet con delicatezza.Ora, risospendere delicatamente il pellet cellulare in 20 microlitri di soluzione fotoattiva di PEG DM. Utilizzando una punta pipetta a bocca larga, aggiungere la sospensione cellulare nella siringa sopra la porzione di idrogel reticolato ed esporre la siringa ad altri otto minuti di luce UV per completare la costruzione dell'idrogel. Al termine, le cellule dovrebbero essere completamente incapsulate all'interno dell'idrogel cilindrico.Infine, aggiungere un millilitro di HBSS in un pozzetto di una piastra a 24 pozzetti e un millilitro di mezzo in un altro. Quindi espellere l'idrogel dalla siringa nell'HBSS per lavare brevemente il gel. Trasferire il gel nel mezzo e coltivare la piastra nelle condizioni desiderate.In qualsiasi momento durante la coltura, le cellule possono essere osservate mediante microscopia a fluorescenza per seguire l'inizio del segnale ipossico: posizionare la piastra a 24 pozzetti sullo stage del microscopio, centrando il pozzetto con l'idrogel sotto l'obiettivo. Il segnale è sufficientemente specifico da identificare singole cellule attive nella trasduzione del segnale, ma la risoluzione potrebbe non essere adeguata per determinare la localizzazione intracellulare del segnale. Nelle cellule segnalatrici, il segnale viene tipicamente osservato in modo uniforme in tutta la citoplasma.Questa figura mostra un esempio rappresentativo di aggregati di minx incapsulati in un idrogel di PEG all'interno della cella gel. Gli aggregati devono essere completamente racchiusi nella matrice e distribuiti in modo omogeneo per consentire un migliore trasporto dei nutrienti, come mostrato qui. Si noti come il gel reticolato sia solido in tutta la sua estensione, assumendo la forma del contenitore in cui è stata eseguita la reazione.In questa figura viene mostrato un esempio rappresentativo del segnale fluorescente di ipossia in aggregati di almeno sei cellule all'interno di un idrogel PEG DM, cellule che sono state incapsulate e successivamente incubate al 20% di ossigeno per 44 ore. Come raffigurato a sinistra, non mostrano segnalazione di ipossia, mentre le cellule incapsulate e poi incubate al 2% di ossigeno per 44 ore, come mostrato a destra, presentano un chiaro segnale ubiquitario. L’ipossia può essere monitorata anche in altri tipi cellulari.Questa figura mostra un segnale ipossico rappresentativo in aggregati di cellule staminali mesenchimali incapsulati. Come mostrato nella figura a sinistra, il segnale fluorescente non è rilevabile a 12 ore con 2% di ossigeno; successivamente, come visibile nella figura centrale, diventa più evidente dopo 24 ore e 2% di ossigeno. Infine, come osservato nella figura a destra, è fortemente espresso dopo 96 ore e 2% di ossigeno, seguendo questa procedura.Altri metodi come Eliza, l'analisi delle proteine secrete e i saggi di vitalità cellulare possono essere eseguiti per correlare il segnale ipossico con il fenotipo cellulare. Con questo sviluppo, questa tecnica potrebbe aprire la strada ai ricercatori nei campi dell'ingegneria tissutale e del rilascio terapeutico basato su cellule per esplorare la funzione di sopravvivenza e la differenziazione delle cellule all'interno di impalcature e materiali di incapsulamento.

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