Name: Modellazione e imaging 3-Dimensional Invasion cella Collettiva (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-12-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 8 s
Description: Impara a caratterizzare l'invasione cellulare tumorale in matrice 3D utilizzando microscopia confocale e saggi di transmigrazione. Questo metodo consente analisi quantitative e qualitative del comportamento invasivo in vivo.

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Il finanziamento per questa ricerca è da Cancer Research UK.

1. Etichettatura retrovirali di cellule con le proteine ​​fluorescenti <ol><li> Piastra di cellule imballaggio retrovirali (ad esempio Phoenix) fuori a 0,25 x 10 6 cellule per pozzetto di un 6-bene piatto nel 10% siero fetale bovino (FBS) / DMEM. </li><li> Trasfezione delle cellule con il DNA retrovirale 48 ore più tardi le cellule usando Effectene secondo le istruzioni dei produttori '. </li><li> Sciacquare due volte con pozzi di media 24 ore più tardi, quindi aggiungere 1,5 ml di 10% FBS / DMEM per bene. </li><li> Raccogliere virus confezionato in colture di tessuti di media dopo 48 ore pipettando e trasferendo ai tubi microcentrifuga da 2 ml. </li><li> Centrifugare a 1600 rpm per 5 minuti per far sedimentare tutte le cellule. </li><li> Rimuovere il supernatante in una provetta pulita e conservare a -80 ° C. </li><li> Celle da retrovirally trasdotte sono placcati fuori a 1,5 x 10 5 cellule per pozzetto di un piatto ben 6 e posto in un incubatore umidificato a 37 ° C durante la notte. </li><li> Il giorno successivo, rimuovere il supporto da parte delle cellule e add 1 ml di brodo virus integrato con 4 polibrene microlitri (2 mg / ml) in ciascun pozzetto. Sostituire le piastre in incubatrice. </li><li> In seguito a incubazione per 5-6 ore, aggiungere 2 ml 10% FBS / DMEM in ciascun pozzetto e le piastre sono sostituiti in inbubator 37 ° C durante la notte. </li><li> Il giorno successivo, sostituire i media e consentono alle cellule 24 ore prima di aggiungere appropriati terreni selettivi. </li><li> Quando confluenti (che dipende dal tasso di crescita delle cellule, e l'efficienza della trasduzione retrovirale, ma richiede in genere 4-14 giorni), trypsinize cellule e di ordinamento per le celle a fluorescenza utilizzando non trasdotte come riferimento, raccogliere e cellule con piscina fluorescenza maggiore rispetto ai non-trasdotte aliquote e congelare a -80 ° C per uso futuro. </li></ol> 2. Inversa Matrigel invasione test <ol><li> Lentamente scongelare un'aliquota del Matrigel completa (cioè che contiene fattori di crescita) sul ghiaccio (Figura 1A). </li><li> Una volta scongelato, diluire Matrigel ghiaccio 1:1 in PBS freddo (insieme a qualsiasi altra ulterioretrattamenti a concentrazione 2x nella PBS prima della diluizione; Figura 1B). Per rendere più facile da maneggiare Matrigel prima della polimerizzazione, tutti Plasticware (ad esempio punte, tubi, ecc) dovrebbe essere ghiacciato. </li><li> Inserisci come molti pori di 8 micron 6,5 mm di diametro rivestito Transwells come richiesto nei pozzetti di una piastra ben 24 colture di tessuti, poi accuratamente pipetta 100 microlitri della Matrigel diluito nei pozzetti e lasciare incubare per circa 30 minuti a 37 ° C a solidificare (Figura 1C). </li><li> Durante questo tempo, preparare uno o più fluorescenza marcata con sospensioni cellulari tra 1 a 4 x 10 5 cellule per ml, a seconda della linea cellulare, da ogni pre-trattati condizione (e. g. SiRNA, trattamento farmacologico) nella loro crescita normale medio (Figura 1D). </li><li> Quando il Matrigel si è solidificato, invertire la Transwells e pipettare 100 l di sospensione cellulare sul lato inferiore rivolta verso l'alto del filtro (Figura 1E). </li><li> Coprire attentamente la Transwells con la base di un tessuto ben 24piastra di coltura, prendere contatto con ogni goccia di sospensione cellulare (Figura 1F). </li><li> Incubare la piastra in stato invertito per 4 ore per consentire l'attacco delle cellule (Figura 1G). </li><li> In seguito a questo punto, girare i piatti destra-up e lavare ogni Transwell per immersione sequenziale in 2 x 1 ml di mezzo di siero libero (Figura 2A). </li><li> Lasciare il Transwells in un terzo pozzo contenente farmaci o trattamenti necessari (Figura 2B). </li><li> Delicatamente pipetta 100 l di 10% FBS / DMEM più chemiotattico (e. g. FEG a 25 ng / ml) nel Transwell in cima alla Matrigel solidificato / miscela PBS, sostituire il coperchio e incubare per 3-5 giorni a 37 ° C con il 5% di CO 2 (Figura 2C). </li></ol> 3. Colorazione e la visualizzazione <ol><li> Cellule che esprimono proteine ​​fluorescenti possono saltare i passaggi riportati di seguito prima di microscopia confocale </li><li> Per l'immagine non fluorescenti le cellule invadono Matrigel, Transwells luogo fresco in 24 piatti bene e pipettare 1 ml di 4 mMCalceina AM soluzione macchia sulla parte superiore di ogni spina Matrigel, permettendo così di versare sopra i lati e macchia dalla parte superiore e inferiore. Calceina AM (estere acetossimetil di calceina) è un colorante cellule vive che macchia le cellule intera verde e non richiede fissazione. </li><li> Incubare per 1 ora a 37 ° C in 5% CO 2 atmosfera umidificata, in cui le cellule punto sono completamente colorati e pronti per essere ripreso al microscopio confocale. </li><li> In alternativa, non fluorescenti le cellule invadono Matrigel possono essere fissate e colorate come descritto di seguito in 3,5-3,9. </li><li> Trasferimento di ogni Transwell a un nuovo 24-pozzetti. Sovrapposizione 1 ml del 4% para-formaldehyde/0.2% Triton X-100. </li><li> Incubare a temperatura ambiente per 0,5 ore. </li><li> Rimuovere il fissativo e lavare 3 volte con 1 ml di PBS. </li><li> Rimuovere RNA citoplasmatici con 30 minuti di trattamento RNasi con 100 mcg / ml RNasi. Lavare 2 volte con PBS. </li><li> Per la visualizzazione aggiungere 0,01 mg / ml di ioduro di propidio (PI) diluito in PBS e lasciare a temperatura ambiente in dark per 0,5 ore. Lavare 3 volte con PBS. In questa fase, PI macchiato transwell possono essere conservati a temperatura ambiente al buio per almeno 1 mese. </li><li> Metodi di imaging preciso mediante microscopia confocale sono dipendenti dalle risorse disponibili. Utilizzando un microscopio invertito confocale, Transwell luogo con una piccola quantità di residuo PBS su largo coprioggetti (garantire l'assenza di bolle sono presenti) per il mancato obiettivo immersione 20 X e catturare sezioni ottiche ogni 10-15 micron dalla parte inferiore della spina matrigel. Singoli fette ottico può essere utilizzato per quantificare l'entità di invasione (Figura 3A) o di costruire in 3-oggetti tridimensionali utilizzando un software appropriato, come Volocity (Figura 3B). </li></ol> 4. Rappresentante Risultati Un esempio di serie Z di fette ottica è mostrata in figura 3a. In questo caso, le cellule sono state colorate con calceina AM e il numero di cellule invasori fino dal filtro può essere visto a diminuire con la distanza. Quantificazione dellevasion può essere fatto analizzando il rapporto di calceina AM pixel per pixel positivo negativo ad ogni intervallo, oppure utilizzando la fissazione / colorazione metodo sopra descritto e il conteggio dei nuclei PI positivo in ogni posizione. Un vantaggio di calceina AM colorazione è che il 3-dimensionale ricostruzioni di invasione delle cellule possono essere assemblati utilizzando software come Volocity, dando una descrizione visiva del modo di invasione (Figura 3B). Se le cellule sono etichettati con l'espressione di proteine ​​fluorescenti, poi le posizioni di ogni cella del colore possono essere visualizzati in 3-dimensionale ricostruzioni, sia visti di lato (Figura 3C) o facendo fette attraverso la ricostruzione (Figura 3D). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3525/3525fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Schema delle tappe per la creazione di test inverso invasione. A) Matrigel ECM scongelati sul ghiaccio. B) Matrigel viene diluito 1:1 con PBS contenente eventuali trattamenti farmaco ad una concentrazione finale due volte. C) Inserti Transwell sono posti in piastre a pozzetti multipli, e in ogni Matrigel pipettati. D) le sospensioni cellulare fatto a concentrazione desiderata. E) Una volta che il Matrigel ha fissato, il piatto è invertito e rimosso, le cellule sono placcati sul filtro inferiore del inserti Transwell. F) in posizione capovolta, la lastra alveolare viene accuratamente posizionato sopra inserti Transwell, prendere contatto con la sospensione cellulare. G) Le cellule possono aderire al filtro per 4 ore. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3525/3525fig2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Proseguimento dello schema per il saggio invasione inverso. A) Una volta che le cellule hanno aderito, ciascuno Transwell tuffo in serum-free dei media due volte per rimuovere le cellule sciolto. B) Luogo lavati Transwell in un media finale contenente ben più trattamenti come richiesto. C) Media contenente chemiotattico (es. 10% di siero fetale bovino) con trattamenti come richiesto viene accuratamente a strati su Matrigel. ENT "&gt; <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3525/3525fig3.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Immagini rappresentative dei risultati del test invasione inversa. A) sezioni ottiche di cellule colorate con calceina AM invasori Matrigel, prese a intervalli di 15 micron al microscopio confocale. B) Ricostruzione di una 3-dimensionale ricostruzione di invasione delle cellule da una pila di confocale serie Z immagini, viste dal lato. Ristampato da riferimento 10. C) Ricostruzione tridimensionale di cellule GFP e RFP-etichettati invasori Matrigel visto di lato. D) fetta ottico attraverso la 3-dimensionale ricostruzione delle cellule GFP e RFP-etichettati. Ristampato da riferimento 10.

<ol><li>Olson, M. F., Sahai, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+actin+cytoskeleton+in+cancer+cell+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Metastasis%22%5BJournal%5D)">The actin cytoskeleton in cancer cell motility.</a> Clin. Exp. Metastasis. 26, 273-287 (2008).</li>
<li>Hoelzinger, D. B., Demuth, T., Berens, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autocrine+factors+that+sustain+glioma+invasion+and+paracrine+biology+in+the+brain+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Natl.+Cancer.+Inst%22%5BJournal%5D)">Autocrine factors that sustain glioma invasion and paracrine biology in the brain microenvironment.</a> J. Natl. Cancer. Inst. 99, 1583-1593 (2007).</li>
<li>Chaffer, C. L., Weinberg, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+perspective+on+cancer+cell+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A perspective on cancer cell metastasis.</a> Science. 331, 1559-1564 (2011).</li>
<li>Hanahan, D., Weinberg, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Hallmarks+of+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The Hallmarks of Cancer.</a> Cell. 100, 57-70 (2000).</li>
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<li>Croft, D. R., Olson, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulating+the+conversion+between+rounded+and+elongated+modes+of+cancer+cell+movement%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Regulating the conversion between rounded and elongated modes of cancer cell movement.</a> Cancer Cell. 14, 349-351 (2008).</li>
<li>Wolf, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-step+pericellular+proteolysis+controls+the+transition+from+individual+to+collective+cancer+cell+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Multi-step pericellular proteolysis controls the transition from individual to collective cancer cell invasion.</a> Nat. Cell. Biol. 9, 893-904 (2007).</li>
<li>Hennigan, R. F., Hawker, K. L., Ozanne, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fos-transformation+activates+genes+associated+with+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Fos-transformation activates genes associated with invasion.</a> Oncogene. 9, 3591-3600 (1994).</li>
<li>Scott, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LIM+kinases+are+required+for+invasive+path+generation+by+tumor+and+tumor-associated+stromal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">LIM kinases are required for invasive path generation by tumor and tumor-associated stromal cells.</a> J. Cell. Biol. 191, 169-185 (2010).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Saggi di invasione Matrigel sono tradizionalmente stati istituiti con le cellule posto su uno strato di proteine ​​della matrice extracellulare con chemoattractant indotta motilità verso e attraverso un filtro in basso. L&#39;invasività è stata valutata in funzione del numero di cellule potevano contare sulla parte inferiore del filtro. Anche se in pratica vi è poca differenza con il saggio &quot;inversa&quot; invasione di cui sopra, ci sono informazioni molto più sul processo di invasione che può essere determinato da ...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome del reagente </th><th> Azienda </th><th> Numero di catalogo </th></tr><tr><td> DMEM (Medium Dulbecco Modified Eagle) </td><td> GIBCO </td><td> 21969 </td></tr><tr><td> Siero bovino fetale </td><td> PAA </td><td> A15-101 </td></tr><tr><td> Penicillina Streptomicina </td><td> GIBCO </td><td> 15140 </td></tr><tr><td> 200 mM L-glutammina (100x) </td><td> GIBCO </td><td> 25050-032 </td></tr><tr><td> Puromicina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P8833 </td></tr><tr><td> 0,05% tripsina EDTA </td><td> GIBCO </td><td> 25300 </td></tr><tr><td> Polibrene </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> AL-118 </td></tr><tr><td> Lipofectamine 2000 reagente </td><td> Invitrogen </td><td> 11668019 </td></tr><tr><td> Transwells 6.5mm, 8,0 micron diametro dei pori </td><td> Corning </td><td> 3422 </td></tr><tr><td> Completa Matrigel </td><td> BD Biosciences </td><td> 354234 </td></tr> &lt;tr&gt; <td> Calceina AM </td><td> Invitrogen </td><td> C1430 </td></tr><tr><td> RNasi </td><td> Qiagen </td><td> 19101 </td></tr><tr><td> Propidio ioduro </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P4864 </td></tr><tr><td> Confocale microcope </td><td> Leica </td><td> SP2MP </td></tr></tbody></table>

modellazione e imaging 3-dimensional invasion cella collettiva

Modeling and Imaging 3-Dimensional Collective Cell Invasion

Una caratteristica distintiva della malignità del cancro è l&#39;invasione e metastasi 1. In alcuni tipi di cancro (e. g. Glioma 2), invasione locale nel circostante tessuto sano è la causa principale di malattia e morte. Per altri tipi di tumore (e. g. Mammella, polmone, ecc.), È il processo di metastasi, in cui le cellule tumorali passare da una massa tumorale primaria, colonizzare siti distale e in ultima analisi, contribuire alla insufficienza d&#39;organo, che alla fine porta a morbilità e mortalità 3. E &#39;stato stimato che l&#39;invasione e le metastasi sono responsabili del 90% delle morti per cancro 4. Di conseguenza, vi è stato intenso interesse per individuare i processi molecolari e mediatori proteina critica di invasione e metastasi ai fini del miglioramento della diagnosi e del trattamento 5. Una sfida per gli scienziati è quello di sviluppare il cancro test invasione che sufficientemente simile alla situazione in vivoper permettere la modellazione accurata della malattia 6. Bidimensionale saggi di motilità cellulare sono solo informativi circa un aspetto della invasione e non tengono conto della matrice extracellulare (ECM) rimodellamento proteina che è anche un elemento critico. Recentemente, la ricerca ha raffinato la nostra comprensione di invasione delle cellule tumorali e ha rivelato che le singole cellule possono spostare da modalità allungate o arrotondate 7. Inoltre, vi è stata maggiore apprezzamento per il contributo di invasione collettiva, in cui le cellule invadono in fili, fogli e dei cluster, in particolare nei tumori altamente differenziate che mantengono le caratteristiche epiteliali, per la diffusione del cancro 8. Vi presentiamo un metodo raffinato 9 per esaminare il contributo delle proteine ​​candidate per invasione collettiva 10. In particolare, le piscine di ingegneria separati di cellule di esprimere diverse proteine ​​fluorescenti, è possibile sezionare molecolarmente le attività e PROTEIns richiesto nelle cellule principali rispetto a quelli richiesti nelle cellule seguito. L&#39;uso di RNAi fornisce lo strumento molecolare di smontare sperimentalmente i processi coinvolti nell&#39;invasione delle cellule individuali così come in diverse posizioni di invasione collettiva. In questa procedura, le miscele di cellule fluorescenza marcata sono placcati sul fondo di un inserto Transwell precedentemente riempiti con proteine ​​Matrigel ECM, poi il permesso di invadere &quot;verso l&#39;alto&quot; attraverso il filtro e nel Matrigel. Ricostruzione delle serie Z stack immagine, ottenuta da imaging confocale, in rappresentazioni tridimensionali permette la visualizzazione di collettivamente fili invadere e analisi della rappresentazione di cellule fluorescente-etichettato leader contro seguenti posizioni.

Modelli di invasione delle cellule tumorali in tre dimensioni della matrice extracellulare meglio riflettere la<em&gt; In vivo</emSituazione&gt; quelli a due dimensioni saggi di motilità. Usando saggi invasione matrice combinata con l&#39;imaging confocale di cellule fluorescenza-etichettato, informazioni dettagliate sulle modalità di invasione e il contributo distinto di leader rispetto ai seguenti cellule possono essere ottenuti.

Modellazione e imaging 3-Dimensional Invasion cella Collettiva

Una caratteristica distintiva della malignità del cancro sono l'invasione e la metastasi 1. In alcuni tipi di cancro (ad es. il glioma 2), l'invasione locale nei tessuti sani circostanti...

Questo sistema sperimentale mira a caratterizzare il contributo di proteine specifiche al processo invasivo. Iniziare con la trasduzione retrovirale delle cellule mediante la proteina fluorescente di interesse. Creare inoltre la matrice 3D di proteina Matrigel negli inserti Transwell e preparare una sospensione cellulare alla diluizione appropriata.Utilizzando il sistema Matrigel transwell, misurare la risposta di transmigrazione verso l'agente chemiotattico con farmaci sperimentali o trattamenti, quindi procedere a visualizzare e analizzare l'invadenza cellulare mediante microscopia confocale. In definitiva, i risultati possono determinare l'entità e la modalità di invasione cellulare in una matrice proteica tridimensionale. Il vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come il saggio tradizionale di invasione Transwell, è la sua capacità di fornire dati sia quantitativi che qualitativi sull'invadenza cellulare in una matrice proteica tridimensionale.La mia collaboratrice, Diane Creighton, illustrerà ora il metodo: coltivare le cellule impacchettanti retrovirali in DMEM contenente 10% di FBS per 48 ore. Trasfettare le cellule con DNA retrovirale seguendo le istruzioni del produttore. Incubare per 24 ore, lavare i pozzetti due volte con mezzo, quindi aggiungere 1,5 millilitri di FBS-DMEM al 10% per pozzetto e incubare per 48 ore per raccogliere il retrovirus impacchettato.Trasferire il mezzo di coltura cellulare in provette microcentrifuga da due millilitri, centrifugare per formare un pellet di eventuali cellule e raccogliere il sopranatante in una provetta pulita. Conservare questa scorta di retrovirus a meno 80 gradi Celsius. Aggiungere ora alle cellule retrotrasdotte il mezzo prelevato da una coltura notturna e aggiungere un millilitro di scorta di retrovirus integrato con poli verde.Dopo un'incubazione di sei ore, aggiungere due millilitri di D-M-E-M contenente il 10% di siero bovino fetale al pozzetto e posizionare le piastre in un incubatore a 37 gradi Celsius. Durante la notte, rinnovare il terreno e dopo 24 ore, aggiungere il terreno selettivo appropriato; quando le cellule sono confluenti, raccoglierle e separarle in base alla fluorescenza utilizzando come riferimento le cellule non trasdotte. Raccogliere le cellule con fluorescenza superiore rispetto alle cellule non trasdotte e congelare aliquote a meno 80 gradi Celsius per utilizzi futuri.Questo metodo si basa sull'espressione di proteine fluorescenti per la visualizzazione e consente di determinare il contributo delle singole cellule. Lasciare il gel di matrice completo sul ghiaccio e quindi diluirlo uno a uno in PBS freddo di ghiaccio. Inserire ora i transwell non rivestiti in una piastra per colture cellulari a 24 pozzetti.Quindi pipettare con attenzione 100 microlitri di matri gel diluito nei pozzetti e far solidificare a 37 gradi Celsius. Nel frattempo, preparare le sospensioni cellulari marcate con fluorocromo nel loro normale mezzo di crescita. Quando il matri gel si sarà solidificato, capovolgere i transwell e pipettare 100 microlitri della sospensione cellulare sul lato inferiore del filtro rivolto verso l'esterno.Coprire con attenzione i transwell utilizzando la base di una piastra da coltura tissutale a 24 pozzetti, facendo aderire ciascun pozzetto a ogni goccia di sospensione cellulare. Incubare la piastra in posizione capovolta per quattro ore per consentire l'adesione delle cellule. Ora ruotare la piastra nella posizione normale ed eseguire un lavaggio di ciascun transwell immergendolo due volte in un millilitro di mezzo privo di siero.Quindi posizionare il transwell in una terza pozzetta contenente farmaci o reagenti per il trattamento. Con una pipetta, aggiungere delicatamente 100 microlitri di mezzo contenente il chemiotrattante all'interno del transwell, sopra la miscela solidificata di Matrigel e PBS. Incubare per tre-cinque giorni a 37 gradi Celsius con il 5% di anidride carbonica per acquisire immagini di cellule non fluorescenti che invadono il Matrigel.Posizionare i transwell in nuove piastre a 24 pozzetti e pipettare. Un millilitro di soluzione di calcio AM a quattro micromolari su ciascun tappo di matri gel, permettendo al liquido di fuoriuscire lateralmente e di colorare sia dalla parte superiore che da quella inferiore. Incubare per un'ora a 37 gradi Celsius in un'atmosfera umidificata con il 5% di anidride carbonica. Successivamente, acquisire le immagini mediante microscopia confocale.Questo primo metodo di colorazione vitale consente la visualizzazione delle modalità di invasione. Trasferire ogni transwell in una nuova piastra a 24 pozzetti, aggiungere un millilitro di paraformaldeide al 4% con Triton X-100 allo 0,2% e incubare a temperatura ambiente per mezz'ora. Dopo aver lavato tre volte con un millilitro di PBS, aggiungere RNAse A per 30 minuti, quindi lavare due volte con PBS per la visualizzazione a 0,01 milligrammi per millilitro.Ioduro di propidio diluito in PBS e lasciare a temperatura ambiente al buio per 30 minuti. Lavare tre volte con PBS. A questo punto, i transwell colorati con ioduro di propidio possono essere conservati a temperatura ambiente al buio per almeno un mese.Il secondo metodo di colorazione cellulare richiede una fissazione, ma permette una quantificazione più rapida dell'invasione. Utilizzando un microscopio confocale invertito, posizionare il transwell con una piccola quantità residua di PBS su un grande vetrino coprioggetto, impiegando un obiettivo da 20 volte non a immersione, e acquisire sezioni ottiche ogni 10-15 micrometri a partire dalla base del tappo di matrigel. Quantificare l'entità dell'invasione utilizzando singole sezioni ottiche. Inoltre, ricostruire oggetti tridimensionali mediante un software appropriato, come Velocity, a partire da questa serie di sezioni ottiche; le cellule sono state colorate con calcio am. Come previsto, il numero di cellule che invadono dal basso verso l'alto attraverso il filtro diminuisce con la distanza. Questa invasione può essere quantificata. Le ricostruzioni tridimensionali dell'invasione cellulare offrono una rappresentazione visiva della modalità di invasione.Se le cellule sono marcate mediante l'espressione di proteine fluorescenti, allora le posizioni di ciascuna cellula colorata possono essere visualizzate in ricostruzioni tridimensionali come mostrato in questa vista laterale. Inoltre, sezioni attraverso la ricostruzione possono offrire informazioni sui meccanismi molecolari. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come utilizzare questo saggio di invasione cellulare per ottenere maggiori informazioni sul processo evasivo rispetto a quanto ottenibile con i metodi standard.

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L'attuale protocollo descrive un metodo integrato, indagando la migrazione delle cellule tumorali e l'invasione su un'unica piattaforma in tempo reale, fornendo un'opzione facilmente riproducibile e tempo efficiente per studiare la morfologia e la mobilità delle cellule.

Un flusso di lavoro semplice migrazione/invasione utilizzando un Imager di vivere-cella automatizzata

Il microambiente tumorale è una parte essenziale della crescita e dell'invasione del cancro. Per simulare la progressione del carcinoma, è necessaria una matrice umana biologicamente rilevante. Questo protocollo introduce un miglioramento per il saggio di invasione sferoidale tridimensionale in vitro applicando una matrice a base di leiomioma umano. Il protocollo introduce anche un'analisi di invasione cellulare basata su computer.

Matrice a base di tumore umano in un saggio di invasione sferoide tridimensionale

Presentato qui è un protocollo per la fabbricazione di un dispositivo di imaging sferoide. Questo dispositivo consente l'imaging a fluorescenza dinamica o longitudinale degli sferoidi delle cellule tumorali. Il protocollo offre anche una semplice procedura di elaborazione delle immagini per l'analisi dell'invasione delle cellule tumorali.

Imaging a fluorescenza risolta nel tempo e analisi dell'invasione delle cellule tumorali nel modello sferoide 3D

L'invasione è un importante fenomeno biologico nello sviluppo e nella progressione del cancro. Questo processo è influenzato dalle cellule non neoplastiche e dai componenti del microambiente tumorale. Lo scopo di questo studio è quello di descrivere un metodo alternativo per analizzare l'invasione delle cellule tumorali in vitro utilizzando colture tridimensionali (3D).

Strategia alternativa per analizzare l'invasione cellulare in vitro di colture 3D

Impara a caratterizzare l'invasione cellulare tumorale in matrice 3D utilizzando microscopia confocale e saggi di transmigrazione. Questo metodo consente analisi quantitative e qualitative del comportamento invasivo in vivo.

Modellazione e imaging 3-Dimensional Invasion cella Collettiva

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