Name: Un gruppo motore funzionale nella piastra di coltura: Co-coltura degli espianti midollo spinale e le cellule muscolari (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-12T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 6 s
Description: Scopri come riprodurre un'unità motoria funzionale in vitro co-colivando cellule muscolari umane primarie con espianti di midollo spinale di embrioni di ratto. Questo metodo permette di studiare l'innervazione muscolare.

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Il nostro lavoro è sostenuto dal Fondo Nazionale Svizzero (FNS), l&#39;iniziativa svizzera in Systems Biology (SystemsX.ch), la Distrofia Muscolare USA Association (MDA), la Association Française contre les Myopathies (AFM), il Regno Unito mitocondriale Disease Foundation (UMDF), la Fondazione Gebert-Rüf Programma Malattie Rare (GRF), la Società svizzera per la ricerca delle malattie muscolari (SSEM / FSRMM), la Swiss Life &quot;Jubiläumsstiftung Volksgesundheit für Forschung und medizinische&quot;, la Roche Research Foundation e l&#39;Università di Basilea.

1. Preparazione della coltura principale umano delle cellule muscolari <ol><li> Stabilire le colture di cellule muscolari umane secondo il espianto-re-tecnica di espianto 4. In primo luogo, rimuovere non-tessuto muscolare dalle biopsie. Poi, incorporare 1 mm 3 espianti muscolari in un coagulo di plasma, che consente di fibroblasti di emergere dalle espianti. </li><li> Gli espianti sono incorporati trasferita su un piatto di plasma-gelatina rivestita e farli crescere in mezzo di crescita normale (MEM supplementato con 25% di media 199, 10% siero bovino fetale [FBS], 1% di penicillina / streptomicina, 10 ug / ml di insulina, 10 ng / ml di fattore di crescita epidermico umano [EGF], 12,5 ng / ml di fattore di crescita dei fibroblasti umani [FGF]) in un monostrato. Le cellule che emergono dalle espianti in queste condizioni sono cellule muscolari. Queste cellule continuerà a crescere in un monostrato dopo la rimozione degli espianti. </li><li> Coltivare le cellule aneurally sul 0,1% di gelatina rivestite con lastre in terreno di crescita normali. Le cellule possono essereaneurally coltivate e amplificato come necessario. È preferibile usare cellule muscolari a un passaggio tra 3 e 8 per eseguire i co-culture. E &#39;fondamentale per innervare miotubi giovani, dopo questo punto, i co-culture hanno un alto rischio di fallire. Inoltre, miotubi non deve essere troppo grande e troppo spessa. </li><li> Due giorni prima della innervazione è previsto, piatto le cellule muscolari su piastre da 35 mm di coltura tissutale (o piastre da 6 pozzetti) ad una densità di 500.000 cellule per piatto in mezzo una crescita normale. A tale densità, le cellule sono a confluenza corretto per avviare la fusione il giorno seguente, e la successiva innervazione il giorno dopo. Utilizzando queste condizioni, i miotubi sono allo stadio giusto per innervazione ottimale e quindi la successiva contrazione della fibra. </li><li> Il giorno successivo, sostituire il mezzo di crescita normale con un mezzo fusione composta MEM supplementato con 25% di media 199, 5% FBS, 10 ug / ml di insulina e 1% di penicillina / streptomicina. </li></ol> 2. Intercettaz<html> Uno degli Rat Espianti embrionali del Midollo Spinale L&#39;intera procedura di isolare gli espianti midollo spinale viene eseguita al microscopio binoculare, in soluzione salina bilanciata di Hank (HBSS, Gibco / ref 14.170 Invitrogen) contenente 10% siero fetale bovino (FBS). <ol><li> E &#39;fondamentale che gli embrioni di ratto sono tra ED 13 e 14, come uno stadio di sviluppo diverso metterebbe a repentaglio l&#39;intera procedura. Sacrifica una femmina gravida di CO 2 e raccogliere l&#39;intera catena embrione in media HBSS. Isolare ogni embrione e decapitare per loro l&#39;eutanasia. </li><li> Sezionare il midollo spinale embrione dal resto del corpo in un unico pezzo e rimuovere muscolo circostante e tessuto connettivo. Fate molta attenzione a mantenere i gangli della radice dorsale (DRG) collegati al midollo spinale per assicurare innervazione funzionale. </li><li> Tagliare ogni midollo spinale trasversalmente in modo che ogni espianto contiene almeno 2 DRG collegato ad esso (espianti di 1 mm 3). </li></ol><html> ove_title &quot;&gt; 3. innervazione delle cellule muscolari embrionali umane con Espianti Spinal Cord Rat <ol><li> Rimuovere il mezzo fusione sulla coltura cellula muscolare, lasciando uno strato sottile di supporto sul monostrato. </li><li> Porre gli espianti attenzione sul livello delle cellule muscolari, cinque espianti equidistanti per piastra da 35 mm. </li><li> Aggiungere molto lentamente, goccia a goccia, la fusione di media su ogni espianto. È necessario aggiungere mezzo per le cellule muscolari per sopravvivere, ma non troppo per consentire gli espianti di aderire prima e in contatto con le cellule. Se il mezzo non viene aggiunto correttamente (troppo forte o media troppo), gli espianti galleggia e non riescono a innervare le cellule muscolari. </li><li> Una volta che gli espianti iniziano ad aderire, all&#39;inizio del mezzo di fusione a 2 ml per piastra da 35 mm, e mettere i piatti con molta attenzione nuovamente dentro l&#39;incubatrice. </li></ol> 4. Manutenzione delle eterologhe nervo-muscolo Co-culture <ol><li> Cambia il mezzo di fusione due volte a settimana. </li></ol>_title &quot;&gt; 5. rappresentativi Risultati Appena due giorni dopo l&#39;innervazione, è possibile vedere le neuriti emergono da ciascun espianto e stabilire contatti con le cellule muscolari, rappresentati dai pulsante strutture simili (Fig. 1). Già nel 4-6 giorni dopo l&#39;innervazione, poche fibre singole inizierà a contrarsi. Le contrazioni persistono per molti mesi, mantenuto semplicemente cambiando il terreno di coltura due volte a settimana. Dopo circa 2 settimane, l&#39;espianto del midollo spinale si degenera, ma l&#39;innervazione è conservata. Questo è normale. Uno strato sottile di componente nervo rimane sulla superficie dello strato di cellule muscolari. Questa rete nervosa è sufficiente a mantenere la funzionalità del gruppo motore. Se gli espianti galleggiano nel mezzo il giorno dopo innervazione, non potranno mai aderire. Ciò accade quando lo strato cellula muscolare ènon sufficientemente confluenti, o quando il mezzo viene aggiunto troppo grosso. A volte, aderisce espianti, ma non neuriti emergerà. Ciò è probabilmente dovuto alla mancanza di DRG attaccata ad essa. In questo caso anche l&#39;innervazione non verrà stabilita. Manipolare i piatti con molta attenzione la prima settimana, come gli espianti può ancora staccare facilmente. Per scambiare i mezzi di comunicazione di fusione, aggiungere il liquido goccia a goccia con una velocità minima per evitare il distacco delle cellule. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3616/3616fig1.jpg" /> Figura 1. Midollo spinale espianti-cellule muscolari co-colture dal giorno 1 al giorno 15.

<ol><li>Delaporte, C., Dautreaux, B., Fardeau, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+myotube+differentiation+in+vitro+in+different+culture+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Human myotube differentiation in vitro in different culture conditions.</a> Biol. Cell. 57, 17-22 (1986).</li>
<li>Kobayashi, T., Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+muscle+cultured+in+monolayer+and+cocultured+with+fetal+rat+spinal+cord%3A+importance+of+dorsal+root+ganglia+for+achieving+successful+functional+innervation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Human muscle cultured in monolayer and cocultured with fetal rat spinal cord: importance of dorsal root ganglia for achieving successful functional innervation.</a> J. Neurosci. 7, 3131-3141 (1987).</li>
<li>Braun, S., Croizat, B., Lagrange, M. C., Warter, J. M., Poindron, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Constitutive+muscular+abnormalities+in+culture+in+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Constitutive muscular abnormalities in culture in spinal muscular atrophy.</a> Lancet. 345, 694-695 (1995).</li>
<li>Askanas, V., Engel, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+program+for+investigating+adult+human+skeletal+muscle+grown+aneurally+in+tissue+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">A new program for investigating adult human skeletal muscle grown aneurally in tissue culture.</a> Neurology. 25, 58-67 (1975).</li>
<li>Guettier-Sigrist, S., Coupin, G., Warter, J. M., Poindron, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+types+required+to+efficiently+innervate+human+muscle+cells+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cell types required to efficiently innervate human muscle cells in vitro.</a> Exp. Cell Res. 259, 204-212 (2000).</li>
<li>Lefebvre, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+a+spinal+muscular+atrophy-determining+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of a spinal muscular atrophy-determining gene.</a> Cell. 80, 155-165 (1995).</li>
<li>Schrank, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+of+the+survival+motor+neuron+gene%2C+a+candidate+gene+for+human+spinal+muscular+atrophy%2C+leads+to+massive+cell+death+in+early+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Inactivation of the survival motor neuron gene, a candidate gene for human spinal muscular atrophy, leads to massive cell death in early mouse embryos.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94, 9920-9925 (1997).</li>
<li>Hsieh-Li, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mouse+model+for+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">A mouse model for spinal muscular atrophy.</a> Nat. Genet. 24, 66-70 (2000).</li>
<li>Monani, U. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+human+centromeric+survival+motor+neuron+gene+%28SMN2%29+rescues+embryonic+lethality+in+Smn%28-%2F-%29+mice+and+results+in+a+mouse+with+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">The human centromeric survival motor neuron gene (SMN2) rescues embryonic lethality in Smn(-/-) mice and results in a mouse with spinal muscular atrophy.</a> Hum. Mol. Genet. 9, 333-339 (2000).</li>
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<li>Durbeej, M., Campbell, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscular+dystrophies+involving+the+dystrophin-glycoprotein+complex%3A+an+overview+of+current+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Muscular dystrophies involving the dystrophin-glycoprotein complex: an overview of current mouse models.</a> 12, 349-361 (2002).</li>
<li>Schnabel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroscience%3A+Standard+model%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neuroscience: Standard model.</a> Nature. 454, 682-685 (2008).</li>
<li>Benatar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lost+in+translation%3A+treatment+trials+in+the+SOD1+mouse+and+in+human+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Lost in translation: treatment trials in the SOD1 mouse and in human ALS.</a> Neurobiol. Dis. 26, 1-13 (2007).</li>
<li>Dorchies, O. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+innervation+and+differentiation+of+X-linked+myotubular+myopathy+muscle+cells+in+a+nerve-muscle+coculture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromuscul.+Disord%22%5BJournal%5D)">Normal innervation and differentiation of X-linked myotubular myopathy muscle cells in a nerve-muscle coculture system.</a> Neuromuscul. Disord. 11, 736-746 (2001).</li>
<li>McFerrin, J., Engel, W. K., Askanas, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+innervation+of+cultured+human+muscle+overexpressing+betaAPP+experimentally+and+genetically%3A+relevance+to+inclusion-body+myopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Impaired innervation of cultured human muscle overexpressing betaAPP experimentally and genetically: relevance to inclusion-body myopathies.</a> Neuroreport. 9, 3201-3205 (1998).</li>
</ol>

Non abbiamo nulla da rivelare.

Uno strumento fisiologico in vitro per studiare la funzionalità delle cellule muscolari in un contesto normale e patologico è di maggior interesse per i myologists, perché le colture di cellule muscolari di solito non ricapitolare l&#39;importanza delle cellule multiple e delle cellule di tipo connessioni. L&#39;aggiunta di purificato motoneuroni di cellule muscolari non è sufficiente per ottenere un&#39;unità funzionale motore in quanto la presenza di cellule di Schwann è richiesto per l&#39;innervazione sia e...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome di reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 14170 </td></tr><tr><td> MEM </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31095 </td></tr><tr><td> Medium 199 </td><td> Gibco / Invitrogen </td><td> 31153 </td></tr><tr><td> Siero fetale bovino </td><td> Fetale Clone Perbio </td><td> SH30066.03 </td></tr><tr><td> Insulina </td><td> Sigma </td><td> I9278 </td></tr><tr><td> EGF umano </td><td> Sigma </td><td> E9644 </td></tr><tr><td> Umana FGF </td><td> Sigma </td><td> F0291 </td></tr><tr><td> Penicillina / streptomicina soluzione </td><td> Gibco </td><td> 15140 </td></tr></tbody></table>

un gruppo motore funzionale nella piastra di coltura: co-coltura degli espianti midollo spinale e le cellule muscolari

A Functional Motor Unit in the Culture Dish: Co-culture of Spinal Cord Explants and Muscle Cells

Le cellule muscolari primarie aneurally coltivate in monostrato raramente contratto spontaneamente perché, in assenza di un componente nervo, la differenziazione cellulare è limitata e la stimolazione motore neurone manca 1. Queste limitazioni ostacolano lo studio in vitro di molte patologie neuromuscolari in cellule muscolari coltivate. È importante sottolineare che i vincoli sperimentali monostrato di coltura, le cellule muscolari possono essere superate innervazione funzionale di miofibre con espianti midollo spinale in co-culture. Qui, si mostrano le diverse fasi necessarie per ottenere un efficiente, innervazione corretto di cellule muscolari primarie, portando a completare contrazione differenziazione e fibra secondo il metodo sviluppato da Askanas 2. Per fare ciò, le cellule muscolari sono co-coltura con espianti del midollo spinale di embrioni di ratto a 13,5 ED, con gangli delle radici dorsali ancora attaccato le fette del midollo spinale. Dopo pochi giorni, il muscolo fibri iniziare a contratto e alla fine diventare cross-striata attraverso innervazione da neuriti funzionali sporgenti dalle espianti del midollo spinale che collegano alle cellule muscolari. Questa struttura può essere mantenuta per molti mesi, semplicemente regolare scambio del terreno di coltura. Le applicazioni di questo prezioso strumento sono numerosi, in quanto rappresenta un modello funzionale per l&#39;analisi multidisciplinari di sviluppo umano e innervazione del muscolo. In realtà, un completo de novo installazione giunzione neuromuscolare avviene in un piatto di coltura, consentendo una misurazione di facile molti parametri ad ogni passo, in un contesto fondamentale e fisiologico. Solo per citare alcuni esempi, genomici e / o studi di proteomica può essere effettuata direttamente sulle co-culture. Inoltre, gli effetti pre-e post-sinaptica può essere specificamente e separatamente valutati a livello della giunzione neuromuscolare, perché entrambi i componenti provengono da diverse specie,ratto e umano, rispettivamente. Il nervo-muscolo co-coltura può essere eseguita anche con cellule muscolari umane isolate da pazienti affetti da patologie neuromuscolari muscolo o 3, e quindi può essere utilizzato come strumento di screening per farmaci candidati. Infine, nessuna attrezzatura speciale, ma un normale BSL2 struttura è necessaria per riprodurre un unità funzionale motore in un piatto di coltura. Questo metodo è quindi utile sia per il muscolo, nonché le comunità di ricerca neuromuscolari per studi fisiologici e meccanicistica della funzione neuromuscolare, in un contesto normale e malattia.

Cellule muscolari coltivate sono un modello inadeguato per ricapitolare muscolo innervato<em&gt; In vivo</em&gt;. Un&#39;unità motore funzionale può essere riprodotto<em&gt; In vitro</em&gt; Dalla innervazione del muscolo differenziate cellule umane primarie di ratto utilizzando espianti di midollo spinale degli embrioni. Questo articolo descrive come co-colture di espianti di midollo spinale e delle cellule muscolari sono stabiliti.

Un gruppo motore funzionale nella piastra di coltura: Co-coltura degli espianti midollo spinale e le cellule muscolari

Le cellule muscolari primarie umane coltivate in monostrato in condizioni aneurali contraggono raramente in modo spontaneo poiché, in assenza di una componente nervosa, le cellule...

L'obiettivo generale di questa procedura è riprodurre un'unità motoria funzionale in vitro. Questo risultato si ottiene coltivando cellule muscolari primarie umane in associazione con espianzioni di midollo spinale isolate da embrioni di ratto. Successivamente, si permette agli innesti di midollo spinale di innervare le cellule muscolari umane mantenendo l'espianto ancora attaccato.La coltura viene alimentata con attenzione con mezzo di crescita fino a quando le cellule muscolari si differenziano completamente. Il fenotipo molecolare e/o cellulare delle cellule muscolari differenziate può quindi essere valutato mediante una selezione di strumenti molecolari. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale perché, innanzitutto, è difficile imparare a isolare il midollo spinale.E soprattutto, è necessario essere molto delicati durante l’aggiunta del mezzo di coltura alle cellule muscolari innovative. Eutanasia un ratto gravido con embrioni compresi tra le fasi ED 12,5 e ED 13,5.Procedere con precisione poiché questa fase è cruciale per l'intero procedimento. Dissezionare l'utero e raccogliere l'intera catena di embrioni in mezzo HBSS con 10% FBS sotto un microscopio stereoscopico, isolare e decapitare ciascun embrione. Isolare il midollo spinale in un unico pezzo e rimuovere i tessuti muscolari e connettivi circostanti.Per fare ciò, fissare innanzitutto gli embrioni con forbici microchirurgiche. Effettuare un taglio lineare su ciascun lato del midollo spinale e sollevare con attenzione la pelle. Quindi posizionare l'embrione su un lato ed isolare con cura il midollo spinale, lasciando il ganglio della radice dorsale o DRG ancora attaccato.L'innervazione funzionale non si verificherà se i gangli della radice dorsale non rimangono attaccati al midollo spinale. Il midollo spinale è più chiaro rispetto ai tessuti connettivi e muscolari circostanti di colore rosa. Rimuovere con cura i tessuti circostanti senza disturbare i gangli della radice dorsale.Una volta isolato, utilizzare l'ago di una microsiringa per tagliare trasversalmente ciascun midollo spinale in cubi con almeno due gangli della radice dorsale (DRG) attaccati. Questi cubi avranno un volume di circa un millimetro cubo e sono ora pronti per essere coltivati insieme a una comune coltura di cellule muscolari umane. Questo protocollo richiede che le cellule muscolari umane vengano coltivate a partire da biopsie di tessuto.Consultare il protocollo scritto per i dettagli su questa procedura. Iniziare rimuovendo il mezzo di fusione dalla coltura cellulare muscolare, lasciando uno strato sottile di mezzo sul monolayer. Successivamente, posizionare con attenzione l'x explan sulla cellula muscolare.Su ogni piastra da 35 millimetri possono essere disposti in modo uniforme cinque espianti di X. Aggiungere lentamente il mezzo di fusione su ciascun espianto di X, goccia a goccia. Non aggiungere il mezzo di fusione troppo rapidamente o in un volume eccessivo.Altrimenti gli espianti x galleggeranno e non riusciranno a innervare le cellule muscolari. Quindi rimettere con molta attenzione le piastre nell'incubatrice. Continuare ad aggiungere il mezzo in modo lento.Quando vengono manipolati con attenzione, gli espianti di x smetteranno di galleggiare nel mezzo e aderiranno alle cellule in circa un'ora. Una volta avvenuta l'adesione, aumentare il volume del mezzo di fusione a due millilitri per ogni piastra da 35 millimetri. Se, dopo aver atteso tutta la notte, gli espianti di x galleggiano ancora nel mezzo, ciò indica che lo strato di cellule muscolari non era sufficientemente confluenziale oppure che il mezzo è stato aggiunto in modo inadeguato.Due, circa. Questi X explan non aderiranno mai due volte a settimana. Cambiare tutta la quantità di mezzo di fusione goccia a goccia molto lentamente per evitare il distacco delle cellule.Gli X explan sono piuttosto fragili durante la prima settimana e possono staccarsi facilmente. Questa è una tecnica molto utile perché, dopo l'innovazione, semplicemente misurando o raccogliendo il mezzo di coltura, è possibile misurare l'ome delle colture co-coltivate. E se si scelgono con attenzione gli strumenti molecolari, si può distinguere ciò che proviene dal muscolo da ciò che proviene dal nervo.Dopo due giorni, i neuriti di innervazione emergono da ciascun espianto e stabiliscono contatti con le cellule muscolari rappresentate da strutture simili a bottoni. Quando i neuriti non emergono, l'innervazione fallisce probabilmente a causa della mancata adesione del ganglio della radice dorsale (DRG). Già quattro-sei giorni dopo l'innervazione, alcune singole fibre iniziano a contrarsi.Le contrazioni sono persistite per molti mesi, mantenute semplicemente cambiando il mezzo di coltura due volte alla settimana. Dopo circa due settimane, come previsto, gli espianti di midollo spinale stessi sono degenerati, ma le innervazioni sono state conservate. Uno strato sottile di componenti nervosi è rimasto sulla superficie dello strato di cellule muscolari, e questa rete nervosa si è rivelata sufficiente a mantenere la funzionalità dell'unità motoria.Uno dei grandi vantaggi di questa tecnica è la possibilità di prelevare campioni dai pazienti e misurare o confrontare il fenotipo delle colture co-coltivate tra il campione di controllo e quello del paziente. Seguendo questa procedura, è possibile utilizzare tecniche classiche molto comuni come la PCR in tempo reale, il Western blot e l'immunohistochimica, e studiare effettivamente il fenotipo muscolare o nervoso delle colture disco.

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Il micro-dissezionato tecnica espianti è un metodo robusto e affidabile per isolare proliferativa delle cellule del muscolo scheletrico da giovani, adulte o embrionali muscoli come fonte di cellule staminali del muscolo scheletrico. Unicamente, queste cellule sono state derivate clonazione per la produzione di muscolo scheletrico linee di cellule staminali utilizzate per trapianto in vivo.

Adulte e embrionali muscolo scheletrico Microexplant Cultura e isolamento di cellule staminali del muscolo scheletrico

Un modo alternativo di isolare motoneuroni embrionali di topo dal midollo spinale è descritto. Il metodo tiene conto del fatto che lectine possono legarsi a bassa affinità dei recettori nervosi p75NTR fattore di crescita. Questo lectina-based preplating permette una purificazione simile a quella con un anticorpo specifico contro il p75NTR.

Lectina a base di isolamento e la coltura del mouse motoneuroni embrionali

Dimostriamo come sezionare e cultura pulcino ganglio statoacoustic E4 ed E6 espianti midollo spinale. Espianti sono coltivate sotto siero senza condizioni in gel di collagene 3D per 24 ore. Reattività dei neuriti è testato con fattore di crescita integrata medie e con le proteine ​​rivestite perline.

Dissezione e Cultura della gangliari Chick Statoacoustic Espianti e del midollo spinale in gel di collagene per saggi crescita dei neuriti

Tessuto muscolare Engineered ha un grande potenziale nel campo della medicina rigenerativa, come modello di malattia e anche come una fonte alternativa per la carne. Qui si descrive la progettazione di un costrutto muscolare, in questo caso da cellule progenitrici mioblasti di topo, e la stimolazione da impulsi elettrici.

Ingegneria tessuti muscolo scheletrico di cellule murine progenitrici mioblasti e di applicazione di stimolazione elettrica

Culture fetta facilitare la manipolazione dello sviluppo embrionale di gene e perturbazioni farmacologiche. Tuttavia, le condizioni di coltura deve garantire che il normale sviluppo può procedere nell'ambiente ridotto della fetta. Illustriamo un protocollo che facilita il normale sviluppo del midollo spinale procedere per almeno 24 ore.

Embrione di pollo midollo spinale Fetta protocollo Cultura

Qui vi presentiamo un protocollo che si basa su fette midollo spinale coltivate su array multi-elettrodo per studiare la rigenerazione funzionale delle connessioni propriospinali in vitro.

Indagare rigenerazione funzionale in organotipiche midollo spinale Co-culture Grown in array multi-elettrodo

Il trasporto assonale è un meccanismo cruciale per la salute dei motoneuroni. In questo protocollo forniamo un metodo dettagliato per tracciare il trasporto assonale di compartimenti acidi e mitocondri negli assoni dei motoneuroni utilizzando camere microfluidiche.

Trasporto assonale di Organanelle nelle colture del motoneurone utilizzando il sistema di camere microfluidiche

In questo protocollo viene descritto un metodo di coltivazione e analisi funzionale in vitro per le cellule staminali muscolari, che conserva la maggior parte delle loro interazioni con la loro nicchia endogena.

Test di coltura di una singola miofibra per la valutazione della funzionalità delle cellule staminali muscolari adulte Ex Vivo

Questo manoscritto descrive un protocollo dettagliato per produrre matrici di microtessuti del muscolo scheletrico umano 3D e saggi di funzione minimamente invasivi a valle in situ, comprese le analisi della forza contrattile e della manipolazione del calcio.

Valutazione delle metriche funzionali della salute del muscolo scheletrico nei microtessuti muscolari scheletrici umani

Descriviamo un metodo per generare unità motorie umane in dispositivi microfluidici disponibili in commercio co-coltivando motoneuroni derivati da cellule staminali pluripotenti indotte umane con miotubi primari derivati da mesoangioblasti umani con conseguente formazione di giunzioni neuromuscolari funzionalmente attive.

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Un gruppo motore funzionale nella piastra di coltura: Co-coltura degli espianti midollo spinale e le cellule muscolari

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