Name: Preparazione del Tumor Antigen-caricati mature cellule dendritiche per limmunoterapia (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-01T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 40 s
Description: Impara a preparare cellule dendritiche mature caricate con antigeni tumorali per l'immunoterapia. Questo metodo utilizza GM-CSF e IL-4 per differenziare i monociti, seguito da maturazione con poly ICLC.

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Gli autori desiderano ringraziare Andres Salazar (Oncovir, Inc.) per il dono della Poli-ICLC.

1. Isolamento e Crioconservazione di PBMC 4 <ol><li> Asetticamente Spike una delle porte di accesso nella borsa leucoaferesi utilizzando un set di trasferimento del plasma. Usando una siringa da 60 ml, trasferire il leucaferesi ottenute da pazienti in una bottiglia sterile da 500 ml. </li><li> Regolare il volume della leucaferesi a 2x il suo volume originale con temperatura ambiente RPMI. Mescolare accuratamente. </li><li> Mescolare delicatamente il flacone di Ficoll-Paque PLUS. Aggiungere 12 ml PLUS Ficoll-Paque in sterile da 50 ml tubo conico. </li><li> Strato delicatamente 30 ml di prodotto diluito leucaferesi per ogni tubo da 50 ml conica sterile contenente Ficoll. Fare attenzione a non disturbare l&#39;interfaccia tra il Ficoll e la sospensione cellulare. </li><li> Ripetere i passi 1.3 e 1.4 fino a quando tutta la leucaferesi è stato stratificato. </li><li> Centrifugare le provette coniche da 50 ml a 1.000 xg per 20 min a temperatura ambiente senza freno. </li><li> Raccolta accuratamente lo strato nuvoloso di PBMC da ciascuna provetta e transfer per nuovi ml provette sterili 50. </li><li> Aggiungere a ciascun tubo RPMI ad un volume finale di 50 ml. Mescolare delicatamente per inversione. </li><li> Centrifugare le cellule a 500 xg per 10 min a 4 ° C con freno pieno. </li><li> Rimuovere il surnatante da ogni provetta. Risospendere il pellet di cellule provenienti da ogni provetta e aggiungere RPMI ad un volume finale di 50 ml. Mescolare delicatamente per inversione. </li><li> Centrifugare le cellule a 500 g per 6 minuti a 4 ° C. </li><li> Rimuovere il surnatante da ogni provetta. Risospendere e piscina insieme le sospensioni di cellule in una provetta da 50 ml. </li><li> Portare il volume delle PBMC aggregati fino a 50 ml con più RPMI. Mescolare delicatamente per inversione. </li><li> Centrifugare le cellule a 300 g per 6 minuti a 4 ° C. </li><li> Rimuovere il surnatante. Risospendere il pellet di cellule in 50 ml di RPMI. Mescolare delicatamente per garantire la sospensione cellulare uniforme. </li><li> Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali. </li><li> Centrifugare le cellule a 300G per 6 minuti a 4 ° C. Preparare il supporto di congelamento. Congelamento dei media è costituito da 10% di dimetilsolfossido (DMSO; Miltenyi Biotec) in AB umana sierica (Valle Biomedica). </li><li> Rimuovere il surnatante. Risospendere le cellule ad una concentrazione finale di 2 x 10 8 cellule / ml in mezzi congelamento fredde. </li><li> Fai aliquote da 1 ml a 1,8 ml cryovials. </li><li> Trasferire i cryovials nel congelatore a velocità controllata e iniziare la corsa di congelamento, Programma 1. Al termine della corsa, trasferire le cryovials congelati immediatamente nella fase vapore del congelatore azoto liquido. </li></ol> 2. Giorno 0: la differenziazione delle cellule dendritiche da monociti <ol><li> Aggiungere 30 ml di RPMI / 1% di plasma autologo di una sterile 50 ml tubo conico. </li><li> Aliquote disgelo di PBMC congelati da parte di agitazione a 37 ° C bagnomaria. Quando completamente scongelati, trasferire il contenuto dei flaconi per la sterile da 50 ml tubo conico. Mescolare accuratamente. </li><li> Centrifugare le cellule per 6 mina 500 xg a temperatura ambiente. Rimuovere il surnatante e risospendere le cellule pellet in un piccolo volume di RPMI / 1% di plasma autologo. Poi aggiungere più RPMI / 1% di plasma autologo ad un volume finale di 50 ml. Mescolare accuratamente. </li><li> Centrifugare nuovamente le cellule per 6 min a 500 xg a temperatura ambiente. Aspirare il surnatante e risospendere il pellet in 50 ml di RPMI / 1% di plasma autologo. Mescolare accuratamente. </li><li> Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali. </li><li> Piastra 1,40 x 10 8 cellule in 40 ml di RPMI / 1% di plasma autologo su 225 centimetri 2 EasyFlask. Ripetere l&#39;operazione fino a che tutte le celle sono stati placcati. </li><li> Incubare le EasyFlasks piatte sul suo lato per 1-2 ore a 37 ° C in coltura tissutale incubatore contenente il 5% di CO 2 per permettere ai monociti di aderire al pallone. </li><li> Quando l&#39;incubazione, rimuovere il EasyFlask dall&#39;incubatore e lavare due volte per rimuovere le cellule non aderenti USIng 30 ml di RPMI preriscaldata. </li><li> Dopo il secondo lavaggio, aggiungere 40 ml di RPMI / 1% di plasma autologo con 400-1,000 IU / ml di IL-4 e 100-1.000 UI / ml di GM-CSF 5-8. Per questo protocollo, stiamo utilizzando 400 UI / ml di IL-4 e 100 UI / ml di GM-CSF. </li><li> Incubare le EasyFlasks per 2 giorni a 37 ° C in incubatore coltura tissutale contenente il 5% di CO 2. </li></ol> 3. Giorno 2: Alimentazione delle cellule dendritiche con IL-4 e GM-CSF <ol><li> Aggiungere 4 ml di RPMI / 1% di plasma autologo con 400-1,000 IU / ml di IL-4 e 100-1.000 UI / ml di GM-CSF per ciascun EasyFlask. Mescolare accuratamente e dondolo su un fianco. </li><li> Incubare le EasyFlasks per ulteriori 3 giorni (fino al giorno 5) a 37 ° C in incubatore coltura tissutale contenente il 5% di CO 2. </li></ol> 4. Giorno 5: Raccolta di cellule dendritiche immature <ol><li> Raccogliere le culture vigorosamente vorticoso i palloni e pipettando su e giù per risospendere le cellule non aderenti e vagamente aderente. Trasferire ilcellule raccolte a nuove provette coniche da 50 ml. </li><li> Centrifugare le provette a 500 g per 6 minuti a temperatura ambiente. Rimuovere il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 50 ml RPMI / 1% di plasma autologo. Mescolare accuratamente. </li><li> Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali. </li><li> Centrifugare le provette a 500 g per 6 minuti a temperatura ambiente. Piastra di 1-2 x 10 6 cellule per pozzetto in 3 ml RPMI / 1% di plasma autologo con 400 IU / ml di IL-4 e 100 UI / ml di GM-CSF in piastre di coltura tissutale a 6 pozzetti. </li><li> Incubare le piastre a 37 ° C in coltura tissutale incubatore contenente il 5% di CO 2 durante la notte. </li></ol> 5. Giorno 6: Maturazione e Antigen Caricamento delle cellule dendritiche <ol><li> Aggiungere 10 mcg / ml KLH a 1/3 dei pozzetti nelle piastre di coltura a 6 pozzetti. Swirl le piastre per mescolare. KLH viene aggiunto solo a 1/3 dei pozzi perché KLH è usato solo per il primo vaccino DC. Successivamente DC vaccini conTain solo i peptidi antigeni tumorali. </li><li> DC può essere stimolato a maturare con stimoli diversi. Gli stimoli maturazione più comuni che è stato utilizzato in studi clinici è stato un cocktail di citochine (IL-1 β, TNFa e IL-6) e di prostaglandina E2 (PGE2) 9,10. Più di recente, l&#39;uso di agonisti dei recettori Toll-like (TLR) hanno guadagnato popolarità 11,12. In questo protocollo, aggiungere 2 mg / ml Polyinosinic-policitidilico Carbossimetilcellulosa acido poli-L-lisina (Poly-ICLC) ad ogni pozzetto e mescolare bene. Poli-ICLC è la formulazione clinico-grado di Poly-IC che viene stabilizzato con poli-L-lisina e *-carbossimetilcellulosa (fabbricato da Oncovir, Inc.). </li><li> Aggiungere 100 pg / ml antigeni peptidici lunghi (NY-ESO-1 e / o Melan-A/MART-1) nei pozzetti designati, ogni pozzetto riceve solo un singolo peptide per evitare la concorrenza 13. </li><li> Incubare le piastre a 37 ° C in coltura tissutale incubatore contenente il 5% di CO &lt;sub&gt; 2 O / N. </li></ol> 6. Giorno 7: Crioconservazione delle cellule dendritiche <ol><li> Preparare la soluzione di congelamento DC utilizzando plasma autologo e il 10% di DMSO. Centrifugare la soluzione di congelamento DC a 2.000 xg per 20 min a 4 ° C per rimuovere il materiale particolato. Trasferire il surnatante in una nuova etichetta da 15 ml tubo conico. Conservare a 4 ° C fino al momento dell&#39;uso. </li><li> Quando la notte di incubazione è terminata, il raccolto e la piscina tutti i pozzetti contenenti DC pulsate con i peptidi in provette coniche da 50 ml. </li><li> Centrifugare le provette a 500 g per 6 min. Rimuovere il surnatante. Risospendere il pellet in 5 ml di RPMI / 1% di plasma autologo. Portare il volume totale fino a 50 ml con RPMI / 1% di plasma autologo. Mescolare accuratamente. </li><li> Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali. </li><li> Centrifugare le provette a 500 × g per 6 min a temperatura ambiente. Rimuovere il surnatante e risospendere ogni pellet in 5 ml steriLe 0,9% NaCl, USP e trasferimento in nuovi tubi da 15 ml. Portare ogni sospensione cellulare a 14 ml con più sterile di NaCl 0,9%, USP. Cap e mescolare per inversione. </li><li> Ripetere il passaggio precedente per due volte. Dopo l&#39;ultima centrifugazione, rimuovere i surnatanti, ottenendo il più vicino possibile al pellet cellulari senza disturbare il pellet. </li><li> Risospendere il pellet di cellule in CC Solution congelamento a 4 - 20 x 10 6 cellule / ml e 1 ml aliquota ad ogni flacone CryoTube 1,8 ml. </li><li> Utilizzare il congelatore a velocità regolata, Programma 1, di congelare le aliquote di vaccini DC e trasferire immediatamente nella fase vapore di un congelatore azoto liquido per la conservazione a lungo termine. </li></ol> 7. Lotto controllo del rilascio <ol><li> Ogni lotto di vaccino DC deve essere valutato e rispettare determinati criteri di lotto specifico (Tabella 1) prima di essere rilasciato per iniezione in pazienti nello studio, in genere 5-6 settimane dopo la preparazione del vaccino. </li><li> Viabilità:Valutare la sostenibilità del vaccino DC utilizzando un contatore automatico di cellule. La specifica minima redditività accettabile è&gt; 70%. </li><li> Identità: Valutare l&#39;identità della DC mature (CD11c + CD14-CD83 +) in citometria a flusso. La percentuale di cellule + CD11c deve essere&gt; 50%. La percentuale di CD11c + e CD14 + cellule dovrebbe essere &lt;30% e la percentuale di CD11c +, CD14-, CD83 + e cellule devono essere&gt; 50%. </li><li> Sterilità: test del vaccino DC per la presenza di batteri anaerobici e aerobici e funghi di cultura diretta e colorazione di Gram. Valutare la presenza di micoplasma utilizzando un sistema di coltura diretta e DNA fluorocromo Assay colorazione con indicatore Cell Line. Per queste prove, il set minimo specifica è alcuna crescita viene osservato da tutte le culture. </li><li> Endotossina: valutare il contenuto di endotossine con il Kinetic-QCL cinetico cromogenico LAL test e deve essere &lt;50 EU / ml per soddisfare i criteri minimi. </li><li&gt; Funzione: Valutare la funzione DC in una reazione linfocitaria mista mediante incubazione con cellule T allogeniche. La presenza di proliferazione rispetto alle DC non stimolate viene riportato (figura 3). </li></ol>

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Gli autori hanno ricevuto un sostegno finanziario dal seguente: NIH (AI061684, AI071078, AI044628 e K08 AI084578 (Miller)), la Bill and Melinda Gates Foundation, Doris Duke Charitable Foundation, Cancer Research Institute, Alliance for Lupus Research, e l&#39;Emerald Fondazione. Nina Bhardwaj è un coinventore su brevetti relativi alla preparazione e utilizzo di cellule dendritiche per manipolare l&#39;immunità. Gli autori non hanno altre affiliazioni rilevanti o coinvolgimento finanziario con qualsiasi organizzazione o ente con un interesse finanziario in conflitto o finanziaria con l&#39;oggetto o materiale discusso nel manoscritto oltre a quelle descritte.

Fase I e II di sviluppo clinico di DC derivate da monociti hanno dimostrato che inducono risposte immunitarie nei pazienti però il successo clinico è stato limitato 1. Ciò può essere dovuto in parte alla mancanza di consenso su come generare il DCS ottimali per uso immunotherapeutic tumore. Sebbene ci siano molti modi per generare DC ad uso clinico, questi metodi variano in termini di uso di citochine utilizzati per differenziare i monociti, stimoli usati per indurre la maturazione, e metodi di antigene caric...

<table><tbody><tr><td>RPMI-1640 terreno con L-glutammina</td><td>BioWhittaker</td><td>12-702F</td><td></td></tr><tr><td>1M HEPES soluzione salina tamponata</td><td>BioWhittaker</td><td>17-737E</td><td></td></tr><tr><td>soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)</td><td>BioWhittaker</td><td>17-516F</td><td></td></tr><tr><td>Albumina umana, soluzione al 25% USP</td><td>Aventis Behring</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Hypaque PREMIUM</td><td>GE Healthcare</td><td>17-5442-03</td><td></td></tr><tr><td>Siero AB umano</td><td>Valley Biomedical</td><td>HP1022</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione salina sterile USP</td><td>Hospira</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CryoMACS DMSO </td><td>Miltenyi Biotec</td><td>170-076-303</td><td></td></tr><tr><td>Leukine GM-CSF, 0,5 mg/ml</td><td>Berlex</td><td>A02266</td><td></td></tr><tr><td>MACS GMP IL-4</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>170-076-101</td><td></td></tr><tr><td>Hiltonol, Poly-ICLC, 2 mg/ml</td><td>Oncovir</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>VACMUNE KLH</td><td>Biosyn</td><td></td><td></td></tr><tr><td>225 cm² EasyFlasks</td><td>Nalgene Nunc</td><td>159934</td><td></td></tr><tr><td>Falcon piastre per coltura tissutale a 6 pozzetti</td><td>Becton Dickinson</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>Fiale CryoTube da 1,8 ml</td><td>Nalgene Nunc</td><td>377267</td><td></td></tr><tr><td>Congelatore a velocità controllata</td><td>Thermo</td><td>CryoMed</td><td></td></tr></tbody></table>

preparazione del tumor antigen-caricati mature cellule dendritiche per l&#39;immunoterapia

Preparation of Tumor Antigen-loaded Mature Dendritic Cells for Immunotherapy

Mentre gli studi clinici hanno dimostrato che i vaccini DC antigene-caricati sono al sicuro e promettente terapia per i tumori 1, la loro efficacia clinica rimane da stabilire. Il metodo descritto di seguito, redatto in conformità con buon processo di fabbricazione (GMP), è una ottimizzazione del metodo di preparazione ex vivo più comuni per la generazione di un gran numero di cellule dendritiche per gli studi clinici 2. Il nostro metodo utilizza il TLR sintetico 3 agonista Polyinosinic-policitidilico Carbossimetilcellulosa acido poli-L-lisina (Poly-ICLC) per stimolare i PVS. Nostro studio precedente stabilito che Poly-ICLC è il più potente stimolo maturazione individuale per DCs umane valutata da una sovraregolazione di CD83 e CD86, induzione di interleuchina-12 (IL-12), fattore di necrosi tumorale (TNF), interferone gamma-indotta proteina 10 (IP-10), interleukmin 1 (IL-1), e interferoni di tipo I (IFN), e minimale interleuchina 10 (IL-10) di produzione. </p&gt; DC sono differenziati da cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC congelati) ottenuti da leucaferesi. PBMC vengono isolati mediante centrifugazione su gradiente Ficoll e congelati in aliquote. Il giorno 1, PBMC vengono scongelati e piastrate su fiasche di coltura tissutale di selezionare per i monociti che aderiscono alla superficie plastica dopo 1-2 ore di incubazione a 37 ° C in incubatore coltura tissutale. Dopo l&#39;incubazione i linfociti vengono lavati via ed i monociti aderenti sono coltivate per 5 giorni in presenza di interleuchina-4 (IL-4) e granulociti macrofagi fattore stimolante le colonie (GM-CSF) per differenziare a DC immature. Il giorno 6, DC immature vengono pulsate con l&#39;emocianina di patella (KLH) keyhole proteina che serve come un controllo per la qualità del vaccino e può aumentare l&#39;immunogenicità del vaccino 3. Le cellule dendritiche sono stimolati a maturare, caricati con antigeni peptidici, e incubate per una notte. Il giorno 7, le cellule vengono lavate, e congelati in aliquote da 1 ml contenente4 - 20 x 10 6 cellule usando un congelatore a velocità controllata. Controllo del rilascio del lotto per i lotti di DCS viene eseguito e deve soddisfare requisiti minimi prima di essere iniettati nel paziente.

Tra il 10 - 20% delle PBMC partire differenziarsi in cellule dendritiche al termine del periodo di coltura. DC mature sono CD11c +, CD14-, CD83 +, CD40 +, e CCR7 + (Figura 1). Essi esprimono alti livelli di MHC di classe I e II e le molecole di molecole co-stimolatorie CD80 e CD86. Poli-ICLC anche indotto livelli inferiori di PDL-1 rispetto ad altri agonisti TLR 14. Inoltre, questi Poly-IC-maturati dendritiche secernono grandi quantità di IL-12 (Figura 2 e 15,16) e...

Il metodo più comunemente utilizzato per generare un elevato numero di cellule dendritiche autologhe (DC) per uso in immunoterapia tumore è descritto. Il metodo utilizza IL-4 e GM-CSF per differenziare DC da monociti. Le DC immature sono stimolati a maturo e poi caricato con antigeni prima di essere iniettati nel paziente.

Preparazione del Tumor Antigen-caricati mature cellule dendritiche per l&#39;immunoterapia

While clinical studies have established that antigen-loaded DC vaccines are safe and promising therapy for tumors 1, their clinical efficacy remains to be ...

L'obiettivo generale di questa procedura è dimostrare la preparazione di cellule dendritiche di grado clinico per l'immunoterapia. Questo viene ottenuto innanzitutto congelando cellule mononucleate del sangue periferico isolate mediante leucaferesi. Nel secondo passaggio, gli aliquote congelati di pbmc vengono scongelati e i monociti vengono differenziati in cellule dendritiche in presenza di G-M-C-S-F e IL-4 per cinque giorni.Successivamente, le cellule dendritiche vengono raccolte, trattate con peptidi e mature durante la notte con l'agonista del TLR3 poli ICLC. Nell'ultima fase, le cellule dendritiche mature vengono raccolte e congelate in aliquote. Queste aliquote congelate di cellule dendritiche mature possono essere scongelate, trasferite in siringhe e iniettate nuovamente nei pazienti come parte della loro immunoterapia.La procedura sarà dimostrata da Merited Sedia e Farra Hassan, entrambi tecnici di ricerca nel mio laboratorio. Utilizzando un set per il trasferimento del plasma, iniziare inserendo in modo asettico uno dei porti di accesso nel sacchetto di leucoplaferesi. Successivamente, utilizzare una siringa da 60 millilitri per trasferire la leucoplaferesi in una bottiglia sterile da 500 millilitri. Quindi, utilizzando RPMI a temperatura ambiente, regolare il volume della leucoplaferesi a due volte il volume originale e mescolare accuratamente. Dopo aver mescolato delicatamente un flacone di Ficoll, aggiungere 12 millilitri della soluzione in provette coniche sterili da 50 millilitri, quindi stratificare con attenzione 30 millilitri del prodotto di leucoplaferesi diluito in ciascuna provetta contenente Ficoll.Attenzione a non disturbare l'interfaccia tra la chiamata FI e la sospensione cellulare. Centrifugare i tubi per 20 minuti a 1000 ×g e a temperatura ambiente senza frenata. Successivamente, raccogliere con attenzione lo strato torbido di PBMC da ciascun tubo e trasferirlo in nuovi tubi sterili da 50 millilitri.Successivamente, aggiungere RPMI in ogni tubo fino a un volume finale di 50 millilitri, quindi mescolare delicatamente le sospensioni cellulari per inversione. Dopo aver centrifugato le cellule per 10 minuti a 500 G e a 4 gradi Celsius, rimuovere i soprannatanti da ogni tubo e risospendere i pellet cellulari di ogni tubo in RPMI fino a un volume finale di 50 millilitri. Dopo aver mescolato delicatamente i tubi per inversione, determinare il numero e la vitalità delle cellule.Successivamente, centrifugare le cellule e risospendere il pellet in un mezzo di congelamento appena preparato a una concentrazione finale di due volte 10 alla otto cellule per millilitro. Trasferire un millilitro di soluzione cellulare in provette criogeniche da 1,8 millilitri. Quindi, trasferire le provette criogeniche in un congelatore a velocità controllata e avviare il programma di congelamento. Al termine del programma, trasferire immediatamente le provette criogeniche congelate nella fase vapore di un congelatore a azoto liquido.Il giorno successivo, scongelare gli aliquote di pBMC congelati in un bagno d'acqua a 37 gradi Celsius mediante agitazione delicata. Una volta completamente scongelati, trasferire il contenuto delle provette in tube coniche sterili da 50 millilitri contenenti 30 millilitri di RPMI e plasma autologo. Centrifugare quindi le cellule e risospendere con attenzione il pellet cellulare in un piccolo volume di RPMI aggiunto di plasma autologo.Quindi aggiungere ulteriore RPMI più plasma autologo fino a un volume finale di 50 millilitri. Dopo aver mescolato accuratamente le sospensioni, piastrare 1,4 volte 10 alla ottava cellule in 40 millilitri di RPMI più plasma autologo in un flacone Easy da 225 centimetri quadrati; incubare il flacone Easy in posizione orizzontale per uno-due ore a 37 gradi Celsius nell'incubatore per colture cellulari contenente il 5% di anidride carbonica, per consentire ai monociti di aderire al flacone. Al termine dell'incubazione, lavare il flacone Easy due volte con 30 millilitri di RPMI preriscaldato per rimuovere le cellule non aderenti.Dopo il secondo lavaggio, aggiungere 40 millilitri di RPMI con plasma autologo contenente IL-4 e G-M-CSF alle cellule, quindi incubare il flacone EASI per due giorni a 37 °C e 5% di anidride carbonica. Cinque giorni dopo, agitare vigorosamente i flaconi e pipettare su e giù per risospendere. Trasferire le cellule non aderenti e quelle debolmente aderenti in nuovi tubi conici da 50 millilitri.Dopo aver centrifugato le cellule, sospendiamo i pellet cellulari in 50 millilitri di RPMI aggiungendo plasma autologo. Dopo aver mescolato e lavato nuovamente le sospensioni cellulari, si piastrano da una a due volte 10 alla sesta cellule per pozzetto in tre millilitri di RPMI con plasma autologo, IL-4 e G-M-CSF, in piastre per colture cellulari a sei pozzetti. Successivamente, si incubano le piastre a 37 gradi Celsius nell'incubatore per colture cellulari contenente il 5% di anidride carbonica, durante la notte. Il giorno seguente, si aggiungono 10 microgrammi per millilitro di KLH a un terzo dei pozzetti nelle piastre a sei pozzetti e si mescolano le piastre ruotandole delicatamente.Quindi aggiungere due microgrammi per millilitro di poli ICLC nei pozzetti e mescolare accuratamente. Successivamente, aggiungere 100 microgrammi per millilitro di antigeni peptidici lunghi nei rispettivi pozzetti designati, assicurandosi che ogni pozzetto riceva un solo peptide per evitare competizione incrociata. Incubare quindi le piastre tutta la notte a 37 gradi Celsius in un incubatore per colture cellulari contenente il 5% di anidride carbonica; al settimo giorno, raccogliere ed unire tutti i pozzetti contenenti cellule dendritiche.Aggiungere in modo pulsato i peptidi al giorno sei in nuovi tubi conici da 50 millilitri. Dopo aver centrifugato le cellule, risospendere i pellet cellulari aspirati in cinque millilitri di RPMI aggiunto di plasma autologo, quindi portare il volume totale a 50 millilitri con RPMI aggiunto di plasma autologo e mescolare accuratamente le sospensioni cellulari. Dopo aver calcolato il numero totale di cellule vitali, centrifugare i tubi, risospendere ogni pellet in cinque millilitri di cloruro di sodio sterile e quindi lavare ogni sospensione cellulare altre due volte in 14 millilitri di cloruro di sodio sterile.Dopo ogni lavaggio, agitare i tubi dopo il secondo lavaggio. Sospendere nuovamente i pellet cellulari in soluzione di congelamento per cellule dendritiche a una concentrazione di quattro-venti volte 10 alla sesta cellule per millilitro e aliquotare un millilitro di ciascuna sospensione cellulare in provette criogeniche da 1,8 millilitri. Infine, utilizzando un congelatore a velocità controllata, congelare le aliquote di vaccini a base di cellule dendritiche e quindi trasferire immediatamente le aliquote nella fase vapore di un congelatore a azoto liquido per la conservazione a lungo termine.Da 10 a 20% dei BMC iniziali si differenziano in cellule dendritiche al termine del periodo di coltura. La maturazione delle cellule dendritiche in risposta al poli ICLC, rappresentata dalle linee in grassetto, è stata valutata in base all'espressione di CD83, CD40 e CCR7, e confrontata con celle dendritiche non stimolate, rappresentate dalle tonalità grigie. Come mostrato in questi istogrammi, le cellule dendritiche mature trattate con poli ICLC in questo esperimento, differenziate da tre donatori sani, secernono elevate quantità di IL-6, IL-8, IL-12 e TNF-alfa. Queste cellule mature trattate con poli ICLC inducono inoltre la proliferazione di linfociti T allogenici, evidenziata dall'espressione di CFSE, nonché la produzione di interferone gamma dopo il loro sviluppo.Questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo dell'immunologia per esplorare l'uso delle cellule dendritiche nell'immunoterapia contro il cancro e le malattie infettive.

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