Name: Sperimentale trasporto pneumococco umano (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: Impara a stabilire il trasporto sperimentale di pneumococco umano mediante inoculazione intranasale di Streptococcus pneumoniae e lavaggi nasali. Questo metodo sicuro supporta lo sviluppo di vaccini e lo studio dell'immunità.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Questo lavoro è stato finanziato dalla Bill e Melinda Gates Foundation (premio Grand Challenge esplorazione a SBG), il National Institutes for Health Research (NIHR), Centro di ricerca biomedica in Malattie microbiche, e il Comprehensive Research Network NIHR locale. Riconosciamo il NWDA per il supporto infrastrutturale. Ringraziamo il Prof. J. N Weiser, University of Pennsylvania e il Prof. P Hermans, Università di Nijmegen per i pneumococchi isolati. Grazie al Comitato per la sicurezza EHPC per il loro sostegno e consulenza, a tutti i nostri volontari per la loro partecipazione e per Mathieu Bangert per scattare le foto.

1. Volontari di selezione e screening <ol><li> Volontari sani sono reclutati attraverso poster pubblicitari e sul sito di Ateneo in base alla ricerca NHS ed etica orientamento Comitato. </li><li> I criteri di inclusione per la partecipazione sono: <ol><li> Adulti di età compresa tra 18-60 anni. </li><li> Parla correntemente l&#39;inglese ed è in grado di comunicare facilmente sia da telefono cellulare e messaggi di testo. </li></ol></li><li> I criteri di esclusione per la partecipazione sono: <ol><li> Stretto contatto con le persone a rischio (bambini, adulti immunodepressi, anziani, salute malattie croniche). </li><li> Attuale fumatore o significativa storia di fumo (&gt; 10 anni confezione). </li><li> Asma o di altre malattie respiratorie. </li><li> Gravidanza. </li><li> Allergia alla penicillina o amoxicillina. </li><li> Coinvolgimento ufficiale in un altro studio clinico osservazionale o in meno non interventistici fase. </li><li> Impossibile dare un consenso pienamente informato. </li></ol></li><li>Una visita di screening iniziale, circa una settimana prima dell&#39;inoculazione, include una storia clinica mirata e mirato esame clinico. </li><li> Se una sconosciuta anomalia viene trovato, il volontario saranno esclusi dallo studio e di indagine del caso, saranno organizzati tramite le cure primarie. </li><li> Durante la proiezione iniziale visitare un emocromo completo si ottiene per garantire che il numero di globuli bianchi è nel range di normalità prima della visita inoculazione. Un lavaggio nasale viene eseguita per escludere vettori pneumococco naturali (vedi 6.1). </li><li> Prima di inoculazione, i volontari sono istruiti sui rischi connessi con la partecipazione nello studio e sono dotati di un foglietto illustrativo di emergenza, termometro digitale, i numeri d&#39;emergenza e 3 giorni di corso di amoxicillina. </li></ol> 2. Preparazione degli stock di inoculazione <ol><li> Preparazione delle scorte inoculazione deve essere fatto in un ambiente pulito. Le pipette devono essere utilizzared per la preparazione dell&#39;inoculo. Tutto in vetro e oggetti in plastica devono essere sterili. Si raccomanda che le scorte di inoculazione essere preparato in una sala dedicata, con un fumehood dedicato e incubatore. </li><li> Ceppi di pneumococco sono inoculate su una piastra di agar sangue. Le piastre vengono incubate a 37 ° C in 5% CO 2 durante la notte. Il giorno dopo tutti i batteri viene raschiata dalla piastra di agar sangue e inoculata in un sistema di conservazione cordone magazzino. Queste scorte tallone vengono utilizzati per la preparazione inoculazione magazzino. Verificare le scorte tallone di contaminazione e l&#39;uniformità colonia prima di preparare uno stock inoculazione. </li><li> Per preparare il brodo inoculo, inoculare una piastra di agar sangue con due perle del magazzino desiderato sierotipo pneumococcico tallone, striature per coprire l&#39;intera piastra. Incubare le piastre a 37 ° C in 5% CO 2 durante la notte. Tutte le incubazioni altri utilizzeranno queste stesse condizioni. Anche i mezzi di comunicazione Vegitone incubare overnight per garantire la sterilità. </li><li> Il tampone mattina dopola metà del piatto, facendo attenzione a non rimuovere qualsiasi agar sangue, e aggiungere 12 ml di pre-riscaldato brodo Vegitone. Ripetere con l&#39;altra metà della piastra. Lasciare i due 12 fiale ml a 37 ° C per 2 ore o fino a quando un cambiamento di torbidità diventa evidente, quello che viene prima. </li><li> Aggiungere il 12 ml a 40 ml di pre-riscaldato Vegitone brodo e mescolare accuratamente. Ripetere l&#39;operazione per gli altri 12 ml Fiala. Questo punto è tempo = 0. Rimuovere 100 pl a leggere la densità ottica (OD) a 600 nm. Rimuovere 20 pl per la quantificazione dei batteri per unità formanti colonie (CFU) conteggio utilizzando una variante del metodo da Miles e Misra (M &amp; M) 7. Incubare entrambi i flaconcini. <ol><li> Per la M &amp; M, dividere una piastra di agar sangue in sei sezioni. Aggiungere 180 microlitri di PBS sterile a sei pozzetti di una piastra a 96 pozzetti (U-bottom). Aggiungere 20 ml di brodo al pozzo alto e mescolare. Serialmente diluire i campioni 1:10 sei volte ed eliminare 20 pl dal pozzo sesto. Inserire tre gocce 10 microlitri da ben superiore nella prima sezione delpiastra di agar sangue. Ripetere l&#39;operazione per gli altri cinque pozzi. Assicurarsi che la piastra sia asciutto prima che si inverte e si incuba. </li><li> Il giorno successivo contare il numero di colonie visibili in ogni sezione di diluizione e record. Utilizzando la sezione di diluizione con un conteggio tra 30 e 300, dividere il numero di colonie visibili per tre per ottenere una media. </li><li> Moltiplicare il numero medio di colonie per il fattore di diluizione e dividere per 10 (la quantità di caduta di 10 pl). Questo dà CFU / pl. </li><li> Moltiplicate questo numero per 1000 per ottenere CFU / ml. </li></ol></li><li> Eseguire OD 600 letture e quantificazione dei batteri da M &amp; M metodo ogni ora fino ai primi di metà-log fase viene raggiunto, un OD di 0,25. </li><li> Una volta che questo viene raggiunto OD, aggiungere sterilizzati glicerolo 10% ad un flaconcino e preparare aliquote da 1 ml. Aliquote Conservare a -80 ° C. </li><li> Per un magazzino più concentrato, centrifugare la fiala a 3345 xg per 15 minuti e rimuovere il surnatante. Risospendere il pellet in 22,5 ml di Vegitone medio e aggiungere il 10% di glicerolo. Preparare aliquote da 1 ml e conservare a -80 ° C. </li><li> Lasciare le scorte a -80 ° C per almeno 48 ore prima che lo scongelamento e la quantificazione. </li><li> Quantificare il brodo congelato batterica dalla M &amp; M metodo. Prova tre tubi di archivi fotografici singolarmente per garantire la riproducibilità. Usare il valore ottenuto per diluire il magazzino alla concentrazione desiderata inoculo in soluzione salina, come descritto di seguito. </li><li> Per un inoculo, la quantità di pneumococchi nel inoculo viene calcolato prima e dopo l&#39;inoculazione. Questa quantificazione dei batteri della M &amp; M metodo viene utilizzato per determinare il numero medio di pneumococchi nell&#39;inoculo che rappresenta il tempo necessario per completare l&#39;intera procedura. <ol><li> Preparare un inoculo, diluendo la concentrazione desiderata, ed eseguire quantificazione mediante il metodo M &amp; M per il conteggio &quot;pre-inoculo&quot;. </li><li> Nel nostro centro di ricerca clinica ci vuole la squadra 30 minuti per completare l&#39;intera procedura di inoculazione. Pnsospensioni eumococcal in soluzione salina di solito mostrano una ridotta conta in questo intervallo. Per tenere conto di questo, lasciare l&#39;inoculo diluito a temperatura ambiente per 30 minuti e quindi eseguire una quantificazione &quot;post-inoculazione&quot; dei batteri dalla M &amp; M metodo. </li><li> Fare la media della prima e dopo per determinare la concentrazione finale inoculato. Regolare il tempo di &quot;seduta&quot; in base al protocollo clinico, ma mantenere l&#39;intervallo più breve possibile. </li></ol></li><li> Tutti i supporti nuovi devono essere inviati ad un laboratorio di riferimento per la conferma della purezza stock e identità. </li></ol> 3. Preparazione dell&#39;inoculo <ol><li> Preparazione dell&#39;inoculo dovrebbe iniziare 30 minuti prima dell&#39;appuntamento in programma volontario inoculazione. </li><li> Prendete uno dei tubi di archivi precedentemente effettuati fuori dal congelatore a -80 ° C, scongelare e far girare il tubo in microcentrifuga a 17.000 xg per 3 min. </li><li> Warm piastre di agar sangue nel 37 ° C incubatore. Preparareuna piastra a 96 pozzetti per la quantificazione dei batteri con il metodo M &amp; M e preparare provette di diluizione in base alla dose desiderata. </li><li> Rimuovere il surnatante brodo dal tubo centrifugato e risospendere il pellet in 1 ml di soluzione salina. Questa fase rimuove il brodo dall&#39;inoculo. </li><li> Ripetere la fase di centrifugazione. </li><li> Rimuovere il surnatante salina e risospendere il pellet in 1 ml di soluzione salina. </li><li> Eseguire serie di diluizione per la concentrazione dell&#39;inoculo desiderato e quantificare da M &amp; M metodo. </li><li> Prendere l&#39;inoculo alla nomina volontario e dopo inoculando i volontari, ripetere la quantificazione al laboratorio. Etichettare la provetta con la data e la dose di inoculo e conservare a -80 ° C. </li><li> Per assicurare la coerenza dall&#39;inoculazione alla inoculazione, è importante usare le stesse pipette e apparecchiature di laboratorio dedicato ogni volta. </li></ol> 4. Inoculazione <ol><li> I volontari deve essere seduto comodamente in una posizione semi-sdraiata. </li><li&gt; Usando una pipetta P200 e puntali con filtro sterili elaborare 100 pl dell&#39;inoculo e inserire la punta appena dentro la cavità nasale. </li><li> Lentamente espellere l&#39;inoculo sulla mucosa nasale con un movimento circolare. </li><li> È fondamentale che la punta della pipetta non venga a contatto con la mucosa nasale come una rottura nel integrità dell&#39;epitelio potrebbe causare i batteri che entrano nel flusso sanguigno. </li><li> È inoltre indispensabile che l&#39;inoculo non è posizionato troppo lontano o si potrebbe scaricare la gola, che dovrebbe risiedere all&#39;interno della cavità nasale. </li><li> Ripetere l&#39;operazione per l&#39;altra narice. </li><li> Avere il volontario rimangono nella posizione semi-sdraiata per 10 minuti senza sniffing o soffiando il naso. Questo permette di tempo per i batteri per disperdere attraverso la mucosa. </li></ol> 5. Monitoraggio <ol><li> I volontari sono monitorati giornalmente dopo l&#39;inoculazione. Questo include un messaggio giornaliero di testo inviato dal volontario agli investigatori prima di 02:00. </li><li> Se il testo is non ricevuto dal 02:00 il volontario sarà contattato per assicurare la sua / il suo benessere. Se lui / lei non risponde, il prossimo assegnato parente sarà contattato per garantire il volontario benessere. </li><li> I volontari sono tenuti a segnalare in qualsiasi sintomo del tratto respiratorio superiore ad ogni appuntamento. Personale clinico chiederà al volontario di descrivere il suo / i suoi sintomi e seguirà eventuali reclami. </li><li> Gli antibiotici somministrati ai volontari sono solo da prendere in tre circostanze, nel caso in cui non sta bene e sono incaricati di portarli dal gruppo di ricerca, se si stanno portando pneumococco alla fine dello studio, o se non sta bene e in grado di contattare il team di ricerca. Il volontario è incoraggiato a mantenere questo gruppo di emergenza con loro in ogni momento nel corso dello studio, ed è invitato a contattare il team di ricerca su base giornaliera per i prossimi 7 giorni. </li><li> Il nostro team è disponibile 24/7 con contatto infermiere durante l&#39;orario di lavoro e due medici disponibili su hours. Tutte le query sono trattate da chiamata telefonica e / o revisione immediata. Le disposizioni sono disponibili per l&#39;immediata, ammissione diretta ad un reparto di malattie infettive, se necessario. </li></ol> 6. Lavaggio nasale (NW) Procedura <ol><li> Lavaggi nasali (NW) vengono eseguiti in una visita di screening iniziale, così come 48 ore, 7, e 14 giorni dopo l&#39;inoculazione. Il metodo utilizzato NW è tratto da Naclerio et al. 8 volontari colonizzata naturalmente, da S. pneumoniae sono esclusi dalla inoculazione e follow-up. </li><li> Il volontario è seduto comodamente e la testa è inclinata indietro di 30 ° rispetto alla verticale. </li><li> Chiedere al volontario di fare un respiro profondo e trattenere il respiro mentre spingendo la loro lingua su e indietro contro il tetto della bocca. Mentre in questa posizione, il volontario viene chiesto di segnalare che sono pronti. </li><li> Una siringa riempita con 20 ml di soluzione salina viene inserito nello spazio nasale anteriore e 5 ml di soluzione fisiologica viene espulso. Il volunteer poi si china in avanti immediatamente ed espelle il fluido da espirare rapidamente attraverso il naso in una ciotola di alluminio. </li><li> Ripetere questa procedura tre volte in modo che ciascuna narice è stato lavato due volte e l&#39;intero 20 ml è stato usato. </li><li> Pool insieme tutti i campioni in una provetta da centrifuga e inviare al laboratorio a temperatura ambiente per l&#39;elaborazione. </li></ol> 7. Lavaggio nasale Elaborazione <ol><li> Centrifugare i campioni per 10 minuti a 3345 x g. </li><li> Rimuovere il surnatante e negozio come aliquote da 1 ml in provette Eppendorf etichettati a -80 ° C. </li><li> Aggiungere 100 ml di STGG media 9 al pellet e mescolare accuratamente. Assicurarsi che il volume totale nel tubo a questo punto è determinato. Questa diluizione sarà utilizzato nel calcolo CFU di una carrozza positiva NW. </li><li> Piastra a 20 microlitri della goccia STGG contenente il sedimento risospeso su una piastra di agar sangue contenente gentamicina e strisciare l&#39;intera piastra. <ol><li> Se il NW è post-inoculazione, Rimuovere 10 ml dal STGG contenente il sedimento risospeso e l&#39;utilizzo per la quantificazione batterica da M &amp; M metodo. </li></ol></li><li> Aggiungere altri 800 ml di STGG al tubo NW e mescolare accuratamente. </li><li> Tavola 25 pl su una piastra di agar sangue e 25 pl su una piastra di agar cioccolato, striature l&#39;intera piastra. </li><li> Dividere i batteri quantità rimanenti sospese in STGG medio in 2 cryovials e conservare a -80 ° C. </li><li> Incubare le piastre a 37 ° C per una notte in 5% CO 2. </li><li> Esaminare le piastre il giorno successivo per pneumococco e altri patogeni respiratori potenziali. </li><li> Pneumococchi sono identificati su piastre da morfologia delle colonie. Alpha colonie emolitiche con morfologia relatore sono sub-coltura su agar sangue con un disco all&#39;optochina e incubate per una notte. </li><li> Presunti colonie pneumococco che sono all&#39;optochina sensibili Gram sono macchiati di confermare diplococchi Gram-positivi e sierotipizzato utilizzando il Statens Serum Institut Pneumotest-Latex kit. </li></ol>

<ol><li>Ferreira, D. M., Jambo, K. C., Gordon, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+human+pneumococcal+carriage+models+for+vaccine+research%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Experimental human pneumococcal carriage models for vaccine research.</a> Trends in Microbiology. 19, 464-470 (2011).</li>
<li>Mera, R., Miller, L. A., Fritsche, T. R., Jones, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serotype+replacement+and+multiple+resistance+in+Streptococcus+pneumoniae+after+the+introduction+of+the+conjugate+pneumococcal+vaccine%5BTitle%5D)+AND+%22Microbial+Drug+Resistance%22%5BJournal%5D)">Serotype replacement and multiple resistance in Streptococcus pneumoniae after the introduction of the conjugate pneumococcal vaccine.</a> Microbial Drug Resistance. 14, 101-107 (2008).</li>
<li>Tocheva, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Declining+serotype+coverage+of+new+pneumococcal+conjugate+vaccines+relating+to+the+carriage+of+Streptococcus+pneumoniae+in+young+children%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccine%22%5BJournal%5D)">Declining serotype coverage of new pneumococcal conjugate vaccines relating to the carriage of Streptococcus pneumoniae in young children.</a> Vaccine. 29, 4400-4404 (2011).</li>
<li>Weinberger, D. M., Malley, R., Lipsitch, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serotype+replacement+in+disease+after+pneumococcal+vaccination%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Serotype replacement in disease after pneumococcal vaccination.</a> Lancet. 378 (10), 1962-1973 (2011).</li>
<li>Wu, H. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+a+Streptococcus+pneumoniae+nasopharyngeal+colonization+model+in+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Microb.+Pathog%22%5BJournal%5D)">Establishment of a Streptococcus pneumoniae nasopharyngeal colonization model in adult mice.</a> Microb. Pathog. 23, 127-137 (1997).</li>
<li>Wright, A. K. A., Ferreira, D. M., Gritzfeld, J. F., Wright, A. D., Armitage, K., Jambo, K. C., Bate, E., Batrawy, S. E. l, Collins, A., Gordon, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Nasal+Challenge+with+Streptococcus+pneumoniae+is+Immunising+in+the+Absence+of+Carriage%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Human Nasal Challenge with Streptococcus pneumoniae is Immunising in the Absence of Carriage.</a> PloS Pathogens. 8 (4), e1002622(2012).</li>
<li>Miles, A. A., Misra, S. S., Irwin, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+estimation+of+the+bactericidal+power+of+the+blood%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Hygiene%22%5BJournal%5D)">The estimation of the bactericidal power of the blood.</a> The Journal of Hygiene. 38, 732-749 (1938).</li>
<li>Naclerio, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mediator+release+after+nasal+airway+challenge+with+allergen%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+Rev.+Respir.+Dis%22%5BJournal%5D)">Mediator release after nasal airway challenge with allergen.</a> Am. Rev. Respir. Dis. 128, 597-602 (1983).</li>
<li>O'Brien, K. L., Nohynek, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Report+from+a+WHO+working+group%3A+standard+method+for+detecting+upper+respiratory+carriage+of+Streptococcus+pneumoniae%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr.+Infect.+Dis+J%22%5BJournal%5D)">Report from a WHO working group: standard method for detecting upper respiratory carriage of Streptococcus pneumoniae.</a> Pediatr. Infect. Dis J. 22, 133-140 (2003).</li>
<li>Gritzfeld, J. F., Roberts, P., Roche, L., Batrawy, S. E. l, Gordon, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+between+nasopharyngeal+swab+and+nasal+wash%2C+using+culture+and+PCR%2C+in+the+detection+of+potential+respiratory+pathogens%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Research+Notes%22%5BJournal%5D)">Comparison between nasopharyngeal swab and nasal wash, using culture and PCR, in the detection of potential respiratory pathogens.</a> BMC Research Notes. 4, 122(2011).</li>
<li>McCool, T. L., Cate, T. R., Moy, G., Weiser, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+immune+response+to+pneumococcal+proteins+during+experimental+human+carriage%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">The immune response to pneumococcal proteins during experimental human carriage.</a> J. Exp. Med. 195, 359-365 (2002).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

La piattaforma EHPC ha una serie di potenziali utilizzi, compreso l&#39;uso come modello vaccino mucosale e come surrogato di protezione per testare vaccini nuova proteina. Il metodo dipende da una tecnica di inoculazione coerente e di alta qualità NW. La riproducibilità può essere un problema con l&#39;inoculo. A causa della natura variabile delle aliquote congelate batteriche, può essere difficile da replicare la dose desiderata. Un dimezzamento o raddoppio della dose desiderata viene considerato nel raggio d&#39;azione. È fondamentale che la quantificazione batterica essere fatto immediatamente prima e dopo l&#39;inoculazione, per determinare con precisione la quantificazione dei batteri da CFU conteggio. Per questo motivo può essere utile se appuntamenti volontari verificarsi simultaneamente in modo che solo un inoculo occorre elaborare e la placcatura quantificazione, prima e dopo l&#39;inoculazione avviene non più di 30 min a parte. Il metodo richiede la coope NWrazione del volontario e non sarebbe un metodo ideale nei bambini. Se la resa è inferiore a 5 ml, la procedura può essere ripetuta utilizzando fino a un extra 20 ml. Indossare protesi può ridurre la resa NW. Se il volontario ha un bloccata / naso congestionato e la soluzione salina sta per scadere anteriormente dopo l&#39;inserimento, soffiare il naso, inserire la siringa un po &#39;più indietro, e inclinare la testa indietro di più se necessario. Il NO è una tecnica che migliora con la pratica. Certo volume di solito essere perso così l&#39;obiettivo è per un ritorno di almeno 10 ml. Se il volontario può gustare salina durante il NW quindi la connessione tra il rinofaringe e dell&#39;orofaringe posteriore non è stato adeguatamente chiusa dalla lingua del volontario. Se il volontario ingoia la maggior parte della soluzione salina, spiegare di nuovo la procedura, sottolineando la spinta della lingua contro il palato. Ripetere la procedura per aumentare il volume restituito. Se il NW contiene un substantial quantità di muco, è consigliabile rimuoverla prima della centrifugazione. Vortex il campione in modo da allentare tutto ciò che potrebbe essere legato al muco e quindi rimuovere il maggior numero di pezzi di grandi dimensioni il più possibile durante la rimozione come soluzione salina meno possibile. Un precedente studio EHPC negli Stati Uniti è stato completato in modo sicuro e non ha avuto eventi avversi 11. Per garantirne la sicurezza permanente della piattaforma EHPC, abbiamo messo a punto un protocollo di emergenza che si basa intorno a 24 ore l&#39;accesso al gruppo di ricerca. I volontari sono date informazioni di contatto, consentendo loro l&#39;accesso al gruppo di ricerca 24 ore al giorno. Tutte le cure mediche necessarie sono fornite in la Royal Liverpool University Hospital. Come ulteriore misura di protezione, un comitato di sicurezza composto da medici e scienziati al di fuori del gruppo di ricerca riceve un rapporto settimanale di sicurezza. Il rapporto contiene la dose batterica ogni volontario ha ricevuto e se alcuni sintomi o malattia sono stati segnalati. Questo rapporto consente la sicurezza del secolostudio e di essere criticato dall&#39;esterno senza pregiudizi. Il comitato di sicurezza sono disponibili anche 24 ore al giorno nel caso improbabile di emergenza.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome </td><td> Azienda </td><td> Cat # </td></tr><tr><td> Glicerina </td><td> Pescatore </td><td> G/0650/08 </td></tr><tr><td> Cloruro di sodio 0,9% </td><td> B. Braun </td><td> 3627667 </td></tr><tr><td> Latte scremato in polvere </td><td> Fluka </td><td> 70166 </td></tr><tr><td> Tryptone Soya Broth </td><td> Becton Dickinson </td><td> 211768 </td></tr><tr><td> Glucosio </td><td> BDH </td><td> 284504S </td></tr><tr><td> Columbia Agar con sangue di cavallo chocolated </td><td> Oxoid </td><td> PB0124 </td></tr><tr><td> Pneumotest-latex kit </td><td> Statens Serum Institut </td><td> 51823 </td></tr></tbody></table>

sperimentale trasporto pneumococco umano

Experimental Human Pneumococcal Carriage

Sperimentale trasporto pneumococcica umano (EHPC) è scientificamente importante perché il trasporto nasofaringeo di Streptococcus pneumoniae è sia la fonte principale di trasmissione e la condizione di malattia invasiva. Un modello di trasporto permetterà accurata determinazione dei correlati immunologici della protezione, l&#39;effetto immunizzante di trasporto e l&#39;effetto della pressione host sul patogeno nella nicchia nasofaringeo. Inoltre, i metodi di rilevamento di trasporto utile per studi epidemiologici, compresi gli studi di vaccini, può essere paragonato. Puntare Il nostro obiettivo è sviluppare una piattaforma EHPC che è un metodo sicuro e utile riproducibile che potrebbe essere utilizzato per sotto-selezionare nuovi vaccini contro lo pneumococco candidati con la prevenzione di trasporto come un surrogato di immunità indotta dal vaccino. Essa si adopererà per la sperimentazione di vaccini e le descrizioni dei meccanismi alla base EHPC e protezione del vaccino da Carriage 1. Attuali vaccini coniugati contro lo pneumococco proteggere i bambini dalle malattie invasive, anche se i nuovi vaccini sono urgentemente necessari come l&#39;attuale vaccino non conferisce una protezione ottimale contro i non-batteriemica polmonite e non vi è stata evidenza di sostituzione sierotipo con sierotipi non contenuti nel vaccino 2-4. Metodo Abbiamo inoculare con S. pneumoniae sospesi in 100 pl di soluzione salina. La sicurezza è un fattore importante nello sviluppo del modello EHPC ed è realizzato attraverso lo screening volontario intensivo e monitoraggio. Un comitato di sicurezza composto da medici e scienziati che sono indipendenti dallo studio fornisce un feedback obiettivo su base settimanale. L&#39;inoculo batterico è standardizzato e richiede che i prodotti animali vengono inoculati in volontari (a base vegetale media e saline). Le dosi necessarie per la colonizzazione (10 4 -10 5) sono molto più bassi than quelli utilizzati in modelli animali (10 7) 5. Rilevamento di trasporto pneumococco è arricchita da un volume elevato (idealmente&gt; 10 ml) lavaggio nasale muco che è relativamente libera. Questo protocollo si occuperà delle parti più importanti del protocollo, a sua volta. Questi sono (a) selezione dei volontari, (b) la preparazione dell&#39;inoculo pneumococco, (c) inoculazione, (d) il follow-up e (e) individuazione trasporto. Risultati Il nostro attuale protocollo è stato sicuro in più di 100 volontari in un range di dosi utilizzando due diversi sierotipi batterici 6. Uno studio dose-ranging con S. pneumoniae 6B e 23F è attualmente in corso per determinare la dose ottimale inoculazione per il 50% il trasporto. Un tasso previsto del 50% di trasporto permetterà al modello EHPC di avere alta sensibilità per l&#39;efficacia del vaccino con numeri di studio di piccole dimensioni.

Abbiamo esperienza di inoculo 159 persone, di cui 35 hanno portato pneumococco. La dose più bassa abbiamo raggiunto il trasporto con l&#39;utilizzo di sierotipo 6B era 11.100 ufc/100 microlitri per narice, la dose massima è 313 mila ufc/100 microlitri per ogni narice. La dose più bassa abbiamo raggiunto il trasporto con l&#39;utilizzo di sierotipo 23F era 9000 ufc/100 microlitri per narice, la dose massima è 84.500 ufc/100 microlitri per ogni narice. Il nostro metodo di valutazione il trasporto è un lavaggio nasale, scelto perché un recente studio 10 ha mostrato che il 91% dei volontari trovato lavaggio nasale per essere più comodo di tampone nasofaringeo, il lavaggio nasale era anche più probabilità di rilevare gli agenti patogeni mediante coltura microbiologica. Flora microbica recuperati su piastre di agar sangue inoculati con NO può essere variabile e difficile da leggere. Gentamicina viene utilizzato sulla prima piastra di agar sangue per selezionare per pneumococco. La piastra di agar cioccolato e la seconda piastra di agar sangue sono utilizzati per rilevare altri potenziale percorso respiratoriaOgens che possono aiutare o ostacolare la colonizzazione da pneumococco. Un esempio di una piastra di agar sangue inoculato con NO che è facile da leggere è mostrato in Figura 1a; una piastra difficile contenente numerosi tipi di flora è mostrato in Figura 1b. Ad ogni appuntamento i volontari è stato chiesto di descrivere i sintomi del tratto respiratorio superiore, se presente, e il confronto tra vettori e non sono stati evidenziati vettori. Delle 145 persone recentemente inoculati con pneumococco, 28 lamentato sintomi (Tabella 1). Otto di questi erano portatori, 20 non erano. I sintomi più comuni sono stati i sintomi nasali non specifici (Tabella 1). Tra i casi in cui sono stati segnalati sintomi sistemici, quali febbre e / o malessere, nessuna delle indagini avviate hanno mostrato evidenza di malattie da pneumococco e sintomi erano coerenti con concomitante infezione virale, tranne in un caso di tonsillite. Due pneumococcica positivvolontari elettronici sono stati trattati con antibiotici. Uno si lamentava del mal di gola e mal di orecchio e, dopo l&#39;incontro con il medico dello studio, è stato consigliato di prendere antibiotici per precauzione. Il volontario altra è stata diagnosticata clinicamente con tonsillite. Tutti i volontari avevano una rapida risoluzione dei sintomi. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/50115/50115fig1.jpg" /> Figura 1. Agar sangue piastra inoculata con NW. Piastre di agar sangue inoculate con NO può essere difficile da leggere. 1a è un esempio di una piastra che è facile da leggere con ben visibile pneumococchi. 1b è una piastra con un sacco di co-colonizzatrici flora rendendo più difficile rilevare se è presente pneumococchi. <table border="1"><tbody><tr><td> Sintomi </td><td></td><td> Trasporto (n = 32) </td><td> No trasporto (n = 112) </td></tr><tr><td> Tuttisintomi </td><td></td><td> 24% </td><td> 18% </td></tr><tr><td> Sistemico </td><td> Febbre </td><td> 3% </td><td> 4% </td></tr><tr><td></td><td> Malessere * </td><td> 9% </td><td> 4% </td></tr><tr><td> Locale </td><td> Orecchie </td><td> 9% </td><td> 3% </td></tr><tr><td></td><td> Naso </td><td> 0 </td><td> 10% </td></tr><tr><td></td><td> Gola </td><td> 12% </td><td> 3% </td></tr></tbody></table> Tabella 1. Caratterizzazione dei volontari ha riferito sintomi dopo S. pneumoniae 6B inoculazione. Tutti i reclami sono stati esaminati dal comitato di sicurezza esterno e, a seguito di indagini complete, nessun sintomo sono stati attribuiti a malattie da pneumococco. I sintomi più comuni sono mal di gola, naso e farcito malattia simil-influenzale.

Sperimentale trasporto pneumococcica umana offre un modello naturale di trasporto e un possibile modello per l&#39;uso nello sviluppo dei vaccini. Questa tecnica è utile ancora complessa e comporta un rischio clinico introducendo un agente patogeno in un essere umano. Abbiamo sviluppato un protocollo dettagliato.

Sperimentale trasporto pneumococco umano

Experimental human pneumococcal carriage (EHPC) is scientifically important because nasopharyngeal carriage of Streptococcus pneumoniae is both the major ...

Lo scopo di questa procedura è quello di stabilire un trasporto sperimentale dello pneumococco umano. Ciò si ottiene diluendo e quantificando prima i batteri nell'inoculo. Nella seconda fase, il volontario viene inoculato per via intranasale con streptococcus pneumoniae.Successivamente, il volontario esegue un lavaggio nasale nei giorni due, sette e 14 dopo l'inoculazione. Infine, la microbiologia classica viene utilizzata per determinare se il volontario è portatore degli occupanti inoculati. In definitiva, il trasporto sperimentale dello pneumococco umano può essere ottenuto utilizzando questo metodo sicuro e riproducibile.Il vantaggio principale di questa tecnica rispetto ai modelli di trasporto murino esistenti è che questa tecnica offre un modello di trasporto nell'ospite naturale dello pneumococco umano. Inoltre, questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo dello pneumococco, come ad esempio quali sono i correlati immunologici della protezione? Qual è l'effetto immunizzante del trasporto e qual è l'effetto della pressione dell'ospite sull'agente patogeno nella nicchia nasofaringeo?Le applicazioni di questa tecnica includono il suo utilizzo come metodo per selezionare nuovi vaccini antipneumococcici. Abbiamo in programma di utilizzare la prevenzione del trasporto come surrogato dell'immunità indotta dal vaccino. A dimostrare la tecnica clinica saranno suor Angie Wright e l'infermiere David Shaw.30 minuti prima dell'appuntamento programmato per l'inoculazione volontaria attraverso una provetta di inoculo prelevata dal congelatore a meno 80 gradi Celsius. Quindi centrifugare l'inoculo in una microcentrifuga per tre minuti a 17.000 volte. G, mentre il tubo gira, scaldare alcune piastre di agar sanguigno in un'incubatrice a 37 gradi Celsius.Quindi rimuovere il brodo dall'inoculo di centrifuga e lavare il pellet in un millilitro di soluzione fisiologica. Ripetere la fase di centrifugazione e lavaggio. Eseguire una serie di diluizione per la concentrazione di inoculo desiderata, quindi quantificare la quantità di batteri nell'inoculo con un metodo simile a miglia e misra.Le colonie adulte diventeranno visibili il giorno seguente. Portare l'inoculo al volontario che dovrebbe essere seduto comodamente in una posizione semi sdraiata. Quindi utilizzando un perpe P 200 e puntali filtranti sterili.Aspirare 100 microlitri di inoculo nella punta del perpe e inserire la punta appena all'interno della cavità nasale. Espellere lentamente l'inoculo sulla mucosa nasale con un movimento circolare. Non posizionare la punta della pipetta troppo indietro, altrimenti l'inoculo scorrerà lungo la gola.Ripetere l'inoculazione per le altre narici per evitare che i batteri entrino nel flusso sanguigno. Fare attenzione a non danneggiare la mucosa con la pipetta. Quindi chiedi al volontario di rimanere in posizione semi sdraiata per 10 minuti per consentire ai batteri di disperdersi attraverso la mucosa.Dopo aver somministrato l'inoculo ai volontari, ripetere la quantificazione batterica in laboratorio. Quindi etichettare il tubo con la data e la dose di inoculo e conservare l'inoculo a meno 80 gradi Celsius. Prima di iniziare il lavaggio nasale, fai sedere comodamente il volontario con la testa inclinata all'indietro di 30 gradi rispetto alla verticale.Quindi chiedi al volontario di fare un respiro profondo mentre spinge la lingua su e indietro contro il palato. Fai in modo che il volontario segnali quando questa posizione è raggiunta. Ora lava la cavità nasale quattro volte con 20 millilitri di soluzione fisiologica, scaricando cinque millilitri di soluzione salina alla volta nello spazio nasale anteriore.Chiedi al volontario di piegarsi immediatamente in avanti ed espirare rapidamente attraverso il naso in una ciotola di alluminio per espellere il liquido dopo ogni lavaggio salino di cinque millilitri. Dopo aver lavato la cavità nasale con i quattro 20 millilitri, riunire tutti i campioni raccolti in una provetta da centrifuga. Ora centrifugare i campioni di lavaggio nasale volontario per 10 minuti a 3, 345 volte G.Rimuovere il supinato e conservarlo come aliquote da un millilitro in provette einor etichettate a meno 80 gradi Celsius.Aggiungere 100 microlitri di terreno STGG al pellet e mescolare accuratamente, quindi determinare il volume totale nel tubo. Successivamente, una goccia di 20 microlitri del pellet risospeso su una piastra di agar sanguigno contenente gentamicina e striare l'intera piastra. Se il lavaggio nasale è post inoculazione, utilizzare 10 microlitri di STGG contenente il pellet risospeso.Per la quantificazione batterica con il metodo miles e Misra, aggiungere altri 800 microlitri di STGG al tubo di lavaggio nasale e mescolare accuratamente. Quindi impiattare 25 microlitri della soluzione di cellule batteriche STGG su un'altra piastra di agar sanguigno e 25 microlitri su una piastra di agar di cioccolato, strisciando l'intera entrambe le piastre. Quindi congelare i batteri rimanenti in due fiale criogeniche a meno 80 gradi Celsius.Incubare le piastre a 37 gradi Celsius per una notte in anidride carbonica al 5%. Il giorno successivo, esaminare le piastre per lo pneumococco e altri potenziali agenti patogeni respiratori. Le piastre di agar sanguigno, inoculate con lavaggi nasali, possono essere difficili da leggere.Questa immagine mostra un esempio di una lastra facile da leggere con gli pneumococchi ben visibili. Questa piastra, tuttavia, contiene molta flora cocolonizzante che rende più difficile determinare se gli pneumococchi sono presenti ad ogni appuntamento. Ai volontari è stato chiesto di descrivere eventuali sintomi del tratto respiratorio superiore, se presenti, ed è stato evidenziato il confronto tra portatori e non portatori.Delle 145 persone a cui è stato recentemente somministrato lo pneumococco, 28 hanno lamentato sintomi come riassunto in questa tabella. Otto di questi volontari erano portatori, 20 no. Tutti i reclami sono stati esaminati dal comitato per la sicurezza esterno e a seguito di indagini approfondite.Nessun sintomo è stato attribuito alla malattia pneumococcica. I sintomi più comuni erano mal di gola, naso chiuso e malattia simil-influenzale. Durante il tentativo di questa procedura, è importante disporre di un piano di sicurezza molto approfondito, che copra ogni fase del metodo, soprattutto per la sicurezza dei volontari.Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come stabilire il trasporto sperimentale dello pneumococco umano e rilevare il trasporto utilizzando un lavaggio nasale.

Research

Ricerca

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Viene descritta la colonizzazione del nasofaringe murino con streptococco pneumoniae e la successiva estrazione di cellule aderenti o reclutate. Questa tecnica prevede il lavaggio del nasofaringe e la raccolta del fluido attraverso i nares ed è adattabile per varie letture, tra cui la quantificazione differenziale delle cellule e l'analisi dell'espressione dell'mRNA in situ.

Caratterizzazione delle risposte infiammatorie durante la colonizzazione intranasale con streptococco pneumoniae

In vitro aderenza possono essere utilizzati per studiare l'attaccamento di Streptococcus pneumoniae di monostrati di cellule epiteliali e di indagare potenziali interventi quali l'uso di probiotici per inibire la colonizzazione pneumococcica.

Indagare gli effetti dei probiotici sul pneumococcico colonizzazione utilizzo di un<em&gt; In Vitro</em&gt; Aderenza Assay

Streptococcus pneumoniae è il patogeno principale che causa una grave polmonite acquisita in comunità e responsabile per oltre 2 milioni di decessi in tutto il mondo. L'impatto dei fattori batterici implicati in palestra o virulenza può essere monitorato in tempo reale in un mouse polmonite o batteriemia modello acuta con batteri bioluminescenti.

A seguito in tempo reale l&#39;impatto dei fattori di virulenza pneumococco in un acuto mouse Polmonite modello tramite batteri bioluminescenti

Lo Streptococcus pneumoniae forma lesioni microscopiche discrete non purulente nel cuore. Viene delineato il protocollo per un modello murino di formazione di microlesioni cardiache. Vengono fornite istruzioni sulla visualizzazione delle microlesioni mediante microscopia, sulla discriminazione tra microlesioni precoci e tardive e sui metodi per rilevare il rimodellamento cardiaco nei cuori degli animali convalescenti.

Visualizzazione<em&gt; Streptococcus pneumoniae</em&gt; Entro cardiache microlesioni e successive rimodellamento cardiaco

Diversi metodi sono stati descritti in letteratura per modellare la polmonite batterica nei topi. Qui, descriviamo un non invasivo, economico, rapido metodo per indurre la polmonite tramite aspirazione (vale a dire, l'inalazione) di un inoculo batterico pipettati in orofaringe. metodi di valle per la valutazione della risposta immunitaria innata polmonare sono anche dettagliata.

Un metodo non invasivo e tecnicamente non intensiva per l&#39;induzione e Fenotipizzazione Sperimentale polmonite batterica nei topi

Viene descritto un metodo per stabilire infezioni polmonari in roditori immunocompetenti. Con competenza, questo metodo può essere eseguito rapidamente e facilmente per indurre un'infezione stabile con molti isolati di S. pneumoniae, H. influenzae, P. aeruginosa, K. pneumoniae e A. baumannii.

Una polmonite Modello robusto in immunocompetenti roditori per valutare antibatterico efficacia contro<i&gt; S. pneumoniae</i&gt;,<i&gt; H. influenzae</i&gt;,<i&gt; K. pneumoniae</i&gt;,<em&gt; P. aeruginosa</em&gt; o<em&gt; A. baumannii</em

È presentato un protocollo ottimizzato per l'esecuzione di un'ampia caratterizzazione biochimica e strutturale di una proteina carboidrato substrato da Streptococcus pneumoniae .

Caratterizzazione biochimica e strutturale del carboidrato trasporto substrato-proteina-SP0092

Questo studio descrive il monitoraggio microscopico dell'aderenza allo pneumococco alle stringhe del fattore von Willebrand prodotte sulla superficie di cellule endoteliali primarie umane differenziate sotto stress da taglio in condizioni di flusso definite. Questo protocollo può essere esteso alla visualizzazione dettagliata di specifiche strutture cellulari e alla quantificazione dei batteri applicando procedure di immunostaining differenziale.

Infezione da pneumococco delle cellule primarie endoteliali nel flusso costante

Qui, descriviamo un sierotipo 1 di S. pneumoniae ceppo 519/43 che può essere geneticamente modificato utilizzando la sua capacità di acquisire naturalmente DNA e un plasmide suicida. Come prova di principio, è stato creato un mutante isogeno nel gene della pneumolisina (compensato).

Costruzione di mutanti nel sierotipo 1 Streptococcus pneumoniae ceppo 519/43

Questo articolo descrive un nuovo modello murino per la transizione dello pneumococco da colonizzatore asintomatico a patogeno che causa malattie durante l'infezione virale. Questo modello può essere facilmente adattato per studiare le interazioni polimicrobiche e ospite-patogeno durante le diverse fasi della progressione della malattia e tra vari ospiti.

Un modello murino per la transizione di Streptococcus pneumoniae da colonizzatore a patogeno in seguito a co-infezione virale ricapitola la malattia esacerbata dall'età

Impara a stabilire il trasporto sperimentale di pneumococco umano mediante inoculazione intranasale di Streptococcus pneumoniae e lavaggi nasali. Questo metodo sicuro supporta lo sviluppo di vaccini e lo studio dell'immunità.

Sperimentale trasporto pneumococco umano

Esplora altri video